GuilherMed
Theme ▾

Hipoplasias Pontocerebelares e Hipoplasia Cerebelar

26 October 2026 · 183 min read · 0 views

Neurogenetics

Hipoplasias Pontocerebelares e Hipoplasia Cerebelar

Classe de doenças monogénicas, sobretudo autossómicas recessivas e de início pré-natal ou neonatal, definidas pela hipoplasia e/ou atrofia do cerebelo e da ponte (PCH1A–PCH17, PHRINL por ATAD3A), com as entidades ligadas ao X e autossómicas recessivas que reproduzem o mesmo padrão de imagem (MICPCH por CASK, CAMRQ1–4, OPHN1) e a abordagem geral da hipoplasia e da atrofia cerebelares.

Atualização da literatura e da informação regulamentar: 26 de outubro de 2026.

0. Tabela de Referência Inicial

Parâmetro Dados
Designação Hipoplasias pontocerebelares (PCH, pontocerebellar hypoplasia); sinónimos Orphanet: atrofia ou hipoplasia pontoneocerebelar. Entidades associadas tratadas no artigo: deficiência intelectual com microcefalia e hipoplasia pontina e cerebelar (MICPCH, CASK); ataxia cerebelar com deficiência intelectual e síndrome de desequilíbrio (CAMRQ1–4, VLDLR, WDR81, CA8, ATP8A2); deficiência intelectual ligada ao X com hipoplasia cerebelar (OPHN1); hipoplasia pontocerebelar com hipotonia e insuficiência respiratória letal neonatal (PHRINL, ATAD3A); hipoplasia cerebelar global isolada [1, 2]
Identificadores do grupo OMIM, série fenotípica PS607596 (27 entradas, PCH1A a PCH17, todas autossómicas recessivas com base molecular conhecida, em 26 de outubro de 2026, sem PCH18; PCH1F, PCH2C, PCH5 e PCH15 marcadas como provisórias); ORPHA:98523 (grupo; categoria ORPHA:728528); CID-10 Q04.3; CID-11 LD20.01 [1–3]
Genes Mais de 25 genes numerados: VRK1, EXOSC3, EXOSC8, EXOSC9, SLC25A46, EXOSC1 (PCH1A–1F); TSEN54, TSEN2, TSEN34, SEPSECS, VPS53, TSEN15 (PCH2A–2F); PCLO (PCH3); TSEN54 (PCH4, PCH5); RARS2 (PCH6); TOE1 (PCH7); CHMP1A (PCH8); AMPD2 (PCH9); CLP1 (PCH10); TBC1D23 (PCH11); COASY (PCH12); VPS51 (PCH13); PPIL1 (PCH14); CDC40 (PCH15); MINPP1 (PCH16); PRDM13 (PCH17); ATAD3A (PHRINL); CASK (MICPCH); VLDLR, WDR81, CA8, ATP8A2 (CAMRQ1–4); OPHN1 [2]
Herança Autossómica recessiva (AR) em todas as PCH numeradas; ligada ao X (XL) na MICPCH (variantes quase sempre de novo, sobretudo em raparigas) e na deficiência intelectual por OPHN1; recessiva ou autossómica dominante (AD) no espetro de ATAD3A; dominante de novo em casos isolados por FTH1 [4–7]
GeneReviews TSEN54 Pontocerebellar Hypoplasia (NBK9673; atualização de 28 de maio de 2020); EXOSC3 Pontocerebellar Hypoplasia (NBK236968; 24 de setembro de 2020); VLDLR Cerebellar Hypoplasia (NBK1874; 27 de fevereiro de 2020); CASK Disorders (NBK169825; 21 de maio de 2020) [5, 8–10]
Prevalência Desconhecida para o grupo; a maioria dos subtipos tem prevalência Orphanet inferior a 1/1 000 000. A PCH2A é o tipo mais frequente, com incidência estimada inferior a 1/200 000; frequência de portadores de TSEN54 p.(Ala307Ser) de 0,004 em neerlandeses e alemães; portadores de EXOSC3 p.(Gly31Ala) em cerca de 4% dos ciganos checos; portadores da deleção de VLDLR em 1/15 huteritas [1, 4, 8, 10, 11]; no centro de referência francês (260 doentes), CASK explica 21% e TSEN54 17% dos casos, e 34% ficam sem diagnóstico [12]
Idade de início Pré-natal ou neonatal na maioria (polidrâmnio, contraturas, clónus, incoordenação da sucção-deglutição, insuficiência respiratória central); lactância nas formas de início pós-natal (PCH2D, PCH2E, PCH10); infância nas formas não degenerativas (PCH8, PCH11, CAMRQ) [1, 4]
Manifestações cardinais Microcefalia progressiva, atraso grave ou ausência de desenvolvimento motor e cognitivo, dificuldades alimentares, coreia/distonia e espasticidade (PCH2), degenerescência do corno anterior com hipotonia e fraqueza (PCH1), epilepsia, apneia; na imagem, cerebelo e ponte pequenos, com padrão em «libélula» na PCH2A/PCH4 e hipoplasia proporcional de vérmis e hemisférios na MICPCH [4, 5, 8]
Teste de primeira linha Ressonância magnética (RM) cerebral; perante padrão em «libélula» com disfagia e doença do movimento, pesquisa dirigida de TSEN54 c.919G>T; nos restantes, exoma ou genoma com análise de variações do número de cópias (CNV), ou painel multigénico com CNV e microarray cromossómico; SMN1 para exclusão na suspeita de PCH1 [4, 5, 13, 14]; o PNDS francês de 2026 propõe, depois da RM, a pesquisa da variante maioritária de TSEN54 por sequenciação de Sanger quando o quadro é muito sugestivo de PCH2 e, nos restantes casos, um painel NGS dirigido (genes dos 17 tipos, CASK, SPTAN1, VLDLR e genes das tubulinopatias), com rendimento próximo de 60%, seguido de exoma ou genoma em trio com pesquisa de CNV [12]
Tratamento específico Nenhum. Gestão sintomática e multidisciplinar: alimentação por gastrostomia, fundoplicatura, antiepiléticos (fenobarbital e topiramato com a maior proporção de respostas na coorte PCH2A), tratamento da espasticidade e da distonia, vigilância da apneia do sono, hidratação na febre para prevenir rabdomiólise, cuidados paliativos [4, 8, 15]; o PNDS da HAS de 2026, primeiro protocolo nacional dedicado, acrescenta a prevenção da fragilidade óssea, o tratamento da sialorreia e a avaliação cardíaca nas formas por genes do exossoma [12]
Rede europeia ERN-ITHACA (malformações raras e deficiência intelectual); ERN-RND (doenças neurológicas raras); ERN EpiCARE (epilepsias raras); EURO-NMD (PCH1 e neuronopatias motoras); em França, centro de referência de malformações e doenças congénitas do cerebelo (Paris-Trousseau, Lille, Lyon) com cinco centros de competência, na filière DéfiScience [12]

0.1. Tabela de todos os tipos da classe

Tipo Gene (citobanda) OMIM ORPHA Herança Traços distintivos
PCH1A VRK1 (14q32.2) 607596 2254 AR PCH com degenerescência do corno anterior (atrofia muscular espinal, AME, não 5q); extremo mais ligeiro da PCH1, morte entre os 5 e os 18 anos; forma alélica sem PCH: neuronopatia motora hereditária distal [14, 16]
PCH1B EXOSC3 (9p13.2) 614678 2254 AR Cerca de metade dos casos de PCH1; vérmis e hemisférios afetados por igual; p.(Asp132Ala) homozigótica com curso prolongado e ponte preservada; p.(Gly31Ala) fundadora cigana, grave [9, 17]
PCH1C EXOSC8 (13q13.3) 616081 2254 AR Hipomielinização, hipoplasia do corpo caloso, espasticidade proeminente, défice visual e auditivo; morte entre os 3 meses e os 5 anos [14, 18]
PCH1D EXOSC9 (4q27) 618065 2254 AR Atrofia cerebelar com neuronopatia motora tipo AME; fraturas congénitas dos ossos longos num doente; ponte pode ser normal [19, 20]
PCH1E SLC25A46 (5q22.1) 619303 2254 AR Letal neonatal com apneia; atrofia ótica; alélica da neuropatia sensitivo-motora hereditária 6B com atrofia ótica [21, 22]
PCH1F EXOSC1 (10q24.1) ?619304 2254 AR Duas famílias, ambas com variantes bialélicas: atraso, microcefalia, hipotonia, atraso de mielinização; a segunda criança tinha também cardiomiopatia dilatada, escleróticas azuladas e atraso de crescimento [23, 24]
PCH2A TSEN54 (17q25.1) 277470 2524 AR Tipo mais frequente; c.919G>T p.(Ala307Ser) em cerca de 88–90%; «libélula»; clónus neonatal, coreoatetose, epilepsia, apneia, crises distónicas, rabdomiólise febril [8, 15]
PCH2B TSEN2 (3p25.2) 612389 2524 AR Rara; fenótipo PCH2; alélica: síndrome TRACK com síndrome hemolítico-urémico atípico [25, 26]
PCH2C TSEN34 (19q13.42) ?612390 2524 AR Uma família com p.(Arg58Trp) homozigótica [27, 28]
PCH2D SEPSECS (4p15.2) 613811 2524; 247198 AR Atrofia cerebelo-cerebral progressiva (PCCA1); ponte envolvida em menos de metade; três cursos; fundadoras em judeus de origem iraquiana e marroquina [29, 30]
PCH2E VPS53 (17p13.3) 615851 247198 AR PCCA2; RM inicial normal; fundadoras em judeus marroquinos (portadores cerca de 1/37); espetro até paraparesia espástica [31, 32]
PCH2F TSEN15 (1q25.3) 617026 2524 AR Forma mais ligeira de PCH2, sem falência visual central [33]
PCH3 PCLO (7q21.11) 608027 97249 AR Atrofia cerebelar com microcefalia progressiva (CLAM), baixa estatura, atrofia ótica, crises, sem doença do movimento [4, 34]
PCH4 TSEN54 225753 166063 AR Extremo grave do espetro TSEN54: polidrâmnio, contraturas, hipoventilação central, morte neonatal; p.(Ala307Ser) em trans com alelo nulo [4, 8]
PCH5 TSEN54 ?610204 166068 AR Uma família; atividade fetal semelhante a crises e vérmis mais afetado; mesmo genótipo que a PCH4 [4, 35]
PCH6 RARS2 (6q15) 611523 166073 AR Encefalopatia mitocondrial neonatal, acidose láctica, epilepsia refratária; PCH pode faltar no início [36, 37]
PCH7 TOE1 (1p34.1) 614969 284339 AR PCH com diferenças do desenvolvimento sexual (DSD) 46,XY e regressão testicular [38, 39]
PCH8 CHMP1A (16q24.3) 614961 324569 AR Não degenerativa; microcefalia, distonia/coreia, alguns andam [4, 40]
PCH9 AMPD2 (1p13.3) 615809 369920 AR Mesencéfalo em «8» e agenesia do corpo caloso; alélica da paraplegia espástica hereditária 63 (SPG63) [41, 42]
PCH10 CLP1 (11q12.1) 615803 411493 AR Fundadora turca p.(Arg140His); neuropatia motora-sensitiva, epilepsia refratária, atrofia cerebelar ligeira [43, 44]
PCH11 TBC1D23 (3q12.1-q12.2) 617695 611247 AR Não degenerativa; cerebelo pequeno de proporções normais; alguns andam [45–47]
PCH12 COASY (17q21.2) 618266 611256 AR Início pré-natal, artrogripose, letal; alélica da neurodegenerescência associada a COASY (CoPAN); rastreio neonatal pode imitar défice de CPT1A [48, 49]
PCH13 VPS51 (11q13.1) 618606 613267 AR Disfunção hepática, edema, défice visual cortical [50]
PCH14 PPIL1 (6p21.2) 619301 613274 AR Microlisencefalia com PCH; epilepsia farmacorresistente; doença hematopoiética em 44%; fundadora egípcia [51, 52]
PCH15 CDC40 (6q21) ?619302 — AR Uma família (e um caso por reanálise): microcefalia com giros simplificados, anemia e trombocitopenia [51, 53]
PCH16 MINPP1 (10q23.2) 619527 728514 AR Hipoplasia marcada dos gânglios da base; gestalt facial; cerca de 26 doentes [54, 55]
PCH17 PRDM13 (6q16.2) 619909 728521 AR Disfunção perinatal fatal do tronco cerebral, hipoplasia olivar; alélica de hipoplasia cerebelar com hipogonadismo hipogonadotrófico [56, 57]
PHRINL ATAD3A (1p36.33) 618810 615954 AR Deleções bialélicas do agrupamento ATAD3: PCH letal pré-natal com polidrâmnio e contraturas; espetro até síndrome de Harel-Yoon dominante [4, 6]
MICPCH CASK (Xp11.4) 300749 163937 Ligada ao X Sobretudo raparigas com variante de novo; hipoplasia proporcional de vérmis e hemisférios («borboleta»), microcefalia até −10 desvios-padrão (DP), corpo caloso normal; rapazes mais graves ou mosaicos [5, 58]
CAMRQ1 (VLDLR-CH) VLDLR (9p24.2) 224050 1766 AR Não progressiva; ataxia axial, giros simplificados, ponte pequena; deleção fundadora huterita [10, 59]
CAMRQ2 WDR81 (17p13.3) 610185 1766 AR Hipoplasia cerebelar, ataxia congénita, deficiência intelectual [10]
CAMRQ3 CA8 (8q12.1) 613227 1766 AR Ataxia congénita, deficiência intelectual, marcha quadrúpede [10, 60]
CAMRQ4 ATP8A2 (13q12.13) 615268 1766 AR Atrofia cerebelar, ataxia congénita, deficiência intelectual [2, 10]
XLID com hipoplasia cerebelar OPHN1 (Xq12) 300486 137831 Ligada ao X Deficiência intelectual moderada a grave, hipotonia neonatal, hipoplasia vermiana, cisterna magna dilatada [61]
Hipoplasia cerebelar global isolada — — 727803 Variável Anomalia morfológica sem gene definido; risco de recorrência empírico até 25% quando isolada [3, 62]

A tabela segue a série fenotípica PS607596 do OMIM consultada em 26 de outubro de 2026; o prefixo «?» assinala as entradas que o OMIM classifica como provisórias. As entidades fora da série (PHRINL, MICPCH, CAMRQ1–4, OPHN1) têm números de fenótipo próprios. A revisão de van Dijk e colaboradores de 2018 designava SLC25A46 como PCH1D; no OMIM atual, PCH1D corresponde a EXOSC9, SLC25A46 passou a PCH1E e PCH1F corresponde a EXOSC1 [2, 4]. A Orphanet não lista PCH5 nem PCH15 entre os descendentes de ORPHA:98523 na classificação 156; a PCH5 tem código próprio (ORPHA:166068) classificado como síndrome malformativa [1, 3].

1. Introdução

1.1. Hipoplasia, atrofia e entidades vizinhas

A expressão «hipoplasia cerebelar» designa um cerebelo congenitamente pequeno, de forma normal e estático, enquanto «atrofia cerebelar» designa a redução progressiva do volume cerebelar com alargamento dos espaços entre as folhas e agravamento das sequelas neurológicas [4, 62]. O Oxford Desk Reference sublinha que a distinção entre o não desenvolvimento primário e o processo atrófico é difícil sem RM seriadas e, por isso, trata as duas situações em conjunto; o papel do geneticista é estabelecer um diagnóstico específico, rever as imagens com o neurorradiologista, determinar se a anomalia se restringe ao cerebelo ou envolve o córtex cerebral e outros tecidos e, dentro do cerebelo, se a hipoplasia se limita ao vérmis ou envolve os hemisférios [62]. A mesma fonte define as hipoplasias pontocerebelares como condições genéticas raras, sobretudo autossómicas recessivas, com subdesenvolvimento do cerebelo e do tronco cerebral, e reúne num glossário as entidades vizinhas: a malformação de Dandy-Walker (tríade de dilatação quística do quarto ventrículo, agenesia completa ou parcial do vérmis e fossa posterior alargada com deslocação do tentório), a aplasia do vérmis (defeito mediano entre os hemisférios sem fossa posterior alargada), o sinal do dente molar (fossa interpeduncular profunda, pedúnculos cerebelares superiores espessos e alongados e vérmis superior hipoplásico, característico da síndrome de Joubert e de outras ciliopatias) e as malformações de Chiari I a IV, sendo a de tipo IV uma forma de hipoplasia cerebelar [62]. A designação «hipoplasia dos hemisférios cerebrais» surge por vezes associada a este grupo; as fontes consultadas não descrevem uma entidade genética com essa designação, e o conteúdo clínico correspondente é a hipoplasia dos hemisférios cerebelares, central no padrão em «libélula» das PCH2 e PCH4, e a atrofia cortical cerebral que acompanha cerca de 40% dos doentes com PCH2 [63]. As malformações da fossa posterior com fossa alargada (Dandy-Walker, bolsa de Blake, megacisterna magna), a síndrome de Joubert, as lisencefalias com hipoplasia cerebelar e as ataxias de início precoce entram no diferencial.

1.2. Da descrição neuropatológica à classificação moderna

O primeiro relato de PCH data de 1917, com a designação «hypoplasia ponto-neocerebellaris», que traduzia a preservação relativa do vérmis (paleocerebelo) face aos hemisférios [4]. Krause descreveu em 1928 uma criança atrófica de 16 meses com disfagia, espasticidade e movimentos bruscos, quadro compatível com a PCH2; em 1961 foi publicado o primeiro doente com PCH e degenerescência dos neurónios motores do tipo Werdnig-Hoffmann, protótipo da PCH1; Peiffer e Pfeiffer referiram em 1977 a hipercinesia extrapiramidal; e Barth e colaboradores descreveram em 1990 sete crianças de cinco famílias de um isolado genético neerlandês com PCH, microcefalia, discinesia extrapiramidal grave e ausência de movimento voluntário [4]. A primeira classificação, de 1993, separou a PCH1, definida pela degenerescência do corno anterior com fraqueza e hipotonia, da PCH2, definida por tremor neonatal («jitteriness»), incoordenação da sucção-deglutição, ausência de desenvolvimento motor voluntário e quase ausência de desenvolvimento cognitivo [4]. Em 1995, Barth e colaboradores reuniram 16 doentes de 10 genealogias não relacionadas (seis neerlandesas, duas suecas e duas alemãs) com o mesmo perfil de marcos de desenvolvimento praticamente ausentes, coreia grave de início precoce, microcefalia e hipoplasia pontocerebelar, e uma distribuição familiar compatível com herança autossómica recessiva, consolidando a PCH2 como entidade [64].

1.3. Marcos moleculares

A era molecular começou em 2008, quando Budde e colaboradores identificaram variantes em três das quatro subunidades do complexo endonuclease de splicing do tRNA (TSEN) nas PCH2 e PCH4, mostrando que o processamento do RNA é um mecanismo de base em doenças neurológicas [27]. No mesmo ano, Najm e colaboradores associaram variantes de CASK a um fenótipo malformativo ligado ao X com microcefalia e hipoplasia do tronco cerebral e do cerebelo, a MICPCH [5, 65]. Seguiram-se RARS2 na PCH6 (2007), VRK1 na associação de AME com PCH (2009), SEPSECS na atrofia cerebelo-cerebral progressiva (2010), EXOSC3 na PCH1 (2012), CHMP1A na PCH8 (2012), AMPD2 na PCH9 (2013), CLP1 na PCH10 (2014), EXOSC8 (2014), VPS53 (2014), PCLO (2015), TSEN15 e SLC25A46 (2016), TOE1 e TBC1D23 (2017), COASY e EXOSC9 (2018), VPS51 (2019), MINPP1 (2020), PPIL1 e CDC40 (2021), EXOSC1 (2021) e PRDM13 (2022) [16, 18, 19, 21, 23, 29, 31, 33, 34, 36, 38, 40, 41, 43–46, 48, 50, 51, 54, 56, 66]. Em 2005, Boycott e colaboradores tinham associado a deleção homozigótica de VLDLR a uma hipoplasia cerebelar autossómica recessiva com simplificação dos giros cerebrais na população huterita, base da CAMRQ1 [59, 67].

1.4. Contagem de subtipos e reclassificações

O número de subtipos acompanhou a descoberta dos genes. A revisão de Namavar e colaboradores de 2011 reconhecia sete subtipos (PCH1–7), com incidência desconhecida, tratamento sintomático e morte na infância da maioria dos doentes [68]. O Oxford Desk Reference (2017) referia pelo menos oito genes e o tratado de Saudubray (2022) nove subtipos [62, 63]. A revisão de van Dijk e colaboradores de 2018 descrevia 11 tipos e 17 genes no OMIM, a maioria com função no processamento do RNA ou na tradução, e alertava que a inclusão de fenótipos não degenerativos (PCH8, PCH11) e de início pós-natal (PCH2D, PCH2E, PCH10) contrariava a definição original de doença degenerativa de início pré-natal, tornando a classificação confusa [4]. Em 2023, Sakamoto e colaboradores contavam 16 subgrupos com variantes patogénicas em até 24 genes, e a revisão de Škarica e colaboradores de 2025 refere 17 variantes (tipos) distinguidas pela clínica, radiologia e bioquímica [69, 70]. Na data deste artigo, o OMIM regista PCH1A a PCH17 em 27 entradas, sem PCH18, quatro delas provisórias (PCH1F, PCH2C, PCH5 e PCH15) [2]. Três reclassificações ilustram a evolução: a PCH2D e a PCH2E correspondiam à atrofia cerebelo-cerebral progressiva dos tipos 1 e 2 (PCCA1 e PCCA2), e a PCH3 à atrofia cerebelar com microcefalia progressiva (CLAM) [4]; a PCH5, definida numa única família por crises pré-natais e maior envolvimento do vérmis, tem o mesmo genótipo TSEN54 que a PCH4, o que torna a distinção redundante [4]; e a coorte internacional de Killam e colaboradores de 2026 propõe renomear a PCH2D como «perturbação do neurodesenvolvimento relacionada com SEPSECS», porque o envolvimento pontino surge em menos de metade dos doentes [30].

1.5. Classificações em vigor

Coexistem três formas de classificar estes doentes. A classificação numerada do OMIM e da Orphanet (PCH1–PCH17, com subtipos por letra conforme o gene) assenta no fenótipo clínico e de imagem e, dentro de cada fenótipo, no gene; os subtipos PCH2 foram designados pela ordem cronológica de identificação dos genes [8, 9, 63]. A classificação do desenvolvimento e genética de Barkovich, Millen e Dobyns (2009) agrupa as malformações do mesencéfalo e do rombencéfalo em quatro categorias: defeitos precoces da padronização anteroposterior e dorsoventral ou da especificação das zonas germinativas; malformações associadas a perturbações generalizadas do desenvolvimento que afetam o tronco cerebral e o cerebelo; malformações localizadas (proliferação, especificação, migração, orientação axonal); e hipoplasia e atrofia combinadas de doenças degenerativas de provável início pré-natal, categoria onde se inserem as PCH [71, 72]. Por fim, a coorte canadiana de Zakaria e colaboradores (2024) mostrou que, num conjunto de 38 crianças com PCH na imagem, apenas uma tinha variantes num gene PCH listado no OMIM e 21% tinham causa cromossómica, e propôs usar «PCH» como termo radiológico que não implica doença neurodegenerativa [13]. Esta proposta separa a PCH como achado de imagem, de causa heterogénea, da PCH como grupo de doenças monogénicas numeradas.

O protocolo nacional francês de diagnóstico e cuidados (PNDS) publicado pela Haute Autorité de Santé (HAS) em 2026 adota uma divisão prática em três grupos [12]. O primeiro reúne as PCH da classificação histórica em 17 tipos, na maioria neurodegenerativas e autossómicas recessivas; o próprio protocolo assinala duas exceções à definição, a PCH11 (TBC1D23), forma do desenvolvimento não degenerativa, e a PCH2D (SEPSECS), que corresponde a uma atrofia cerebelo-cerebral progressiva sem hipoplasia prévia. O segundo agrupa as PCH do neurodesenvolvimento, sem regressão e de evolução mais estável, que o OMIM não classifica como PCH: CASK (a mais frequente), SPTAN1 (muito mais rara), VLDLR e RELN. O terceiro corresponde às doenças em que a hipoplasia do tronco cerebral e do cerebelo é inconstante e se insere num quadro sindrómico, cujo diagnóstico assenta no contexto global ou numa análise pangenómica, e às doenças metabólicas genéticas que podem acompanhar-se de PCH na imagem (CDG, defeitos do ciclo da ureia, defeitos da β-oxidação dos ácidos gordos, doenças com hiperlactacidemia) [12]. O PNDS apresenta a PCH1F como exceção à herança autossómica recessiva, mas os dois relatos que cita descrevem variantes bialélicas de EXOSC1, homozigóticas no segundo caso, e o OMIM regista a PCH1F como recessiva; a herança recessiva é a que tem suporte nas fontes primárias [2, 12, 23, 24].

1.6. Definição das entidades do âmbito

A PCH1 é definida pela associação de hipoplasia ou atrofia pontocerebelar com degenerescência dos neurónios motores do corno anterior da medula, fraqueza e hipotonia; as manifestações neuromusculares podem apresentar-se como esclerose lateral amiotrófica, neuropatia motora hereditária, AME não 5q ou neuropatia sensitivo-motora hereditária, e as formas neuromusculares isoladas têm início mais tardio e melhor evolução [70]. A PCH2 é definida por clónus generalizado, deglutição comprometida, distonia, coreia e microcefalia progressiva, com padrão em «libélula» na RM; a PCH4 é a sua forma grave com contraturas congénitas e polidrâmnio [4]. As PCH3 e PCH6 a PCH17 definem-se por traços adicionais (atrofia ótica, acidose láctica, DSD, mesencéfalo em «8», neuropatia, artrogripose, gânglios da base hipoplásicos, disfunção do tronco) resumidos na tabela 0.1 [4]. A MICPCH é uma perturbação ligada ao X com deficiência intelectual, microcefalia pós-natal grave e hipoplasia pontina e cerebelar de vérmis e hemisférios em proporção semelhante; a CAMRQ (síndrome de desequilíbrio) agrupa ataxias cerebelares congénitas não progressivas com deficiência intelectual e, por vezes, locomoção quadrúpede [5, 10, 62].

2. Genética Molecular e Fisiopatologia

2.1. Mecanismos comuns da classe

Os genes das PCH participam no desenvolvimento e na sobrevivência dos neurónios e no processamento das moléculas de RNA [62]. A revisão de 2018 sublinha a questão central da classe: desconhece-se por que razão defeitos em processos ubíquos, como o splicing do tRNA, a degradação do mRNA ou a síntese de selenoproteínas, produzem um fenótipo restrito ao cérebro [4]. Uma hipótese é a vulnerabilidade do cerebelo durante o terceiro trimestre, período de crescimento cerebelar muito rápido, a mesma janela que explica a lesão cerebelar do grande prematuro [4, 73]. Os mecanismos agrupam-se em processamento do tRNA (TSEN54, TSEN2, TSEN34, TSEN15, CLP1), aminoacilação mitocondrial (RARS2), síntese da selenocisteína (SEPSECS), degradação e maturação do RNA pelo exossoma (EXOSC3, EXOSC8, EXOSC9, EXOSC1), processamento dos snRNA (TOE1), splicing pelo spliceossoma major (PPIL1, CDC40), metabolismo das purinas e síntese de GTP (AMPD2), síntese da coenzima A (COASY), metabolismo dos fosfatos de inositol (MINPP1), tráfego vesicular e endossómico (VPS53, VPS51, CHMP1A, TBC1D23), dinâmica mitocondrial (SLC25A46, ATAD3A), organização sináptica (CASK, PCLO), migração neuronal pela via da reelina (VLDLR) e especificação neuronal (PRDM13) [4, 63].

2.2. Complexo TSEN e CLP1: PCH2A–2C, PCH2F, PCH4, PCH5 e PCH10

O genoma humano tem 506 genes de tRNA; só cerca de 6% dos pré-tRNA têm um intrão, mas para alguns aminoácidos a maioria dos tRNA é intrónica (tRNA-Tyr GTA, tRNA-Ile TAT) [4, 8]. O intrão é removido pela endonuclease TSEN, um tetrâmero com duas subunidades catalíticas (TSEN2 e TSEN34) e duas estruturais (TSEN15 e TSEN54); o complexo participa também na formação da extremidade 3' do mRNA, porque o knockdown de TSEN2 compromete esse processo in vitro [8, 74]. A CLP1 é uma cinase de polinucleótidos que interage com o complexo TSEN e fosforila a extremidade 5' da metade 3' do tRNA após o corte, permitindo a ligação [4, 63]. Os neurónios são particularmente sensíveis aos defeitos de splicing do tRNA, que alteram a tradução proteica [63]. O mecanismo das variantes TSEN54 é perda ou redução de função, e os doentes com variantes sem sentido são mais gravemente afetados do que os doentes com variantes missense [8]. Os resultados funcionais da p.(Ala307Ser) são ambíguos: Budde e colaboradores não encontraram produtos de tRNA-Tyr não processados em fibroblastos [4]. Estudos estruturais mostraram que os complexos com TSEN34 p.(Arg58Trp) e TSEN15 mutada se montam, mas com destabilização térmica e montagem defeituosa do tetrâmero e redução da clivagem do pré-tRNA [28]. A variante CLP1 p.(Arg140His) impede a interação com o complexo TSEN e reduz a clivagem do pré-tRNA; os neurónios induzidos de doentes mostram depleção de tRNA maduros e acumulação de pré-tRNA não processados, e fragmentos de tRNA agravam a perda de sobrevivência por stress oxidativo [43, 44]. A TSEN15 p.(Tyr152Cys), p.(Trp76Gly) e p.(His116Tyr) causam perda quase completa da atividade de clivagem in vitro [33].

2.3. Exossoma do RNA: PCH1B, PCH1C, PCH1D e PCH1F

O exossoma é um complexo de exorribonuclease 3'→5' com um núcleo de nove subunidades, responsável pela maturação de rRNA, snRNA e snoRNA, pela degradação de mRNA defeituosos e com elementos ricos em AU e pela vigilância citoplasmática [4, 9]. EXOSC3 (RRP40) é a unidade de ligação ao RNA do «capuz» do complexo; EXOSC8 (RRP43) pertence ao anel central [4]. A EXOSC3 foi o primeiro componente nuclear do exossoma associado a doença humana: Wan e colaboradores identificaram variantes recessivas em quatro irmãos com doença do neurónio motor espinal infantil, atrofia cerebelar, microcefalia progressiva e atraso global profundo, e noutras 8 de 12 famílias com PCH1; o knockdown em peixe-zebra reproduziu o fenótipo e foi resgatado pelo mRNA selvagem [66]. As variantes EXOSC8 aumentam os mRNA com elementos ricos em AU que codificam proteínas da mielina, o que explica a hipomielinização [18]. Variantes do exossoma aumentam também a p53 e fatores de biogénese ribossómica, com paragem em G2/M e apoptose, o que levou a propor as doenças do exossoma como ribossomopatias [75]. Na PCH1D, fibroblastos e músculo mostram redução do complexo inteiro e o peixe-zebra exosc9 reproduz a ausência de partes do cerebelo e do rombencéfalo e a falha dos motoneurónios [19]. Na PCH1F, a variante EXOSC1 p.(Ser35Leu) reduz EXOSC1 e o complexo EXO9 [23].

2.4. VRK1 e SLC25A46: PCH1A e PCH1E

A VRK1 é uma cinase nuclear serina/treonina que fosforila a p53 e o CREB, é essencial para a formação do invólucro nuclear e participa na divisão celular e nos corpos de Cajal; o knockdown murino compromete a migração neuronal cortical [4, 16]. A SLC25A46 é uma proteína da membrana mitocondrial externa, homóloga de Ugo1 da levedura, que promove a fissão mitocondrial e a organização das cristas; o seu espetro vai da atrofia ótica com atrofia cerebelar até à PCH letal [4, 22]. As variantes letais destabilizam fortemente a proteína, enquanto as que causam atrofia ótica não letal não o fazem, de modo que a gravidade se correlaciona inversamente com a estabilidade da proteína mutante [21, 76]. A família PCH1 neerlandesa original, descrita por Barth, tinha variantes em SLC25A46, primeira base genética do extremo mais grave da PCH1 [4, 77].

2.5. Aminoacilação, selenocisteína, purinas e coenzima A: PCH6, PCH2D, PCH9 e PCH12

A RARS2 codifica a arginil-tRNA sintetase mitocondrial; a variante intrónica da família sefardita original produzia um transcrito curto anómalo e redução acentuada do tRNA(Arg) mitocondrial em fibroblastos, com moléculas restantes quase todas carregadas [4, 36]. Nos 31 doentes publicados até 2018 nenhum tinha dois alelos nulos, o que sugere que a abolição completa é letal [4]. Nos defeitos de aminoacil-tRNA sintetases não há marcadores bioquímicos específicos e os ensaios de aminoacilação são de investigação [63]. A SEPSECS catalisa o último passo da síntese da selenocisteína, a conversão de Sep-tRNA em Sec-tRNA, de que depende todo o selenoproteoma; a sua perda suprime a única via de síntese da selenocisteína [4, 29]. A coorte de 2026 encontrou aumento do glutatião e dos metabolitos do enxofre no plasma, sinal de stress oxidativo [30]. A AMPD2 converte AMP em IMP; o seu défice deplete os nucleótidos de guanina e compromete a iniciação da tradução dependente de GTP, defeito resgatável in vitro por precursores de purinas; a AMPD2 é o parálogo predominante no cerebelo [4, 41]. A COASY é a sintase bifuncional da coenzima A que realiza os dois últimos passos da síntese a partir do pantotenato; défices parciais causam CoPAN, uma neurodegenerescência com acumulação de ferro, e a perda de função quase completa causa PCH12 letal com artrogripose [48, 78].

2.6. Spliceossoma, fosfatos de inositol, tráfego e sinapse

A PPIL1 é uma ciclofilina do spliceossoma major que isomeriza a CDC40 (PRP17), proteína do segundo passo catalítico do splicing; variantes bialélicas nos dois genes comprometem sobretudo o splicing de intrões curtos e ricos em GC, e ratinhos knock-in PPIL1 mostram apoptose neuronal específica, o que fundamentou o conceito de «spliceossomopatias major» [51]. A MINPP1 é a única fosfatase humana que hidrolisa os fosfatos de inositol InsP5 e InsP6 no lúmen do retículo endoplasmático; a sua perda acumula InsP6 intracelular, que quela ferro e cálcio, e as células estaminais pluripotentes induzidas MINPP1-nulas diferenciam-se mal em neurónios [54]. A VPS53 e a VPS51 são subunidades dos complexos GARP (transporte retrógrado do endossoma para o trans-Golgi) e EARP; as variantes VPS51 reduzem os dois complexos [31, 50]. A CHMP1A pertence ao complexo ESCRT-III e regula a repressão de INK4A pela BMI1; a sua perda reduz a proliferação dos progenitores cerebelares [40]. A TBC1D23 participa no transporte vesicular intracelular; uma variante truncante homozigótica escapa parcialmente ao decaimento mediado por codões sem sentido (NMD) e produz proteína truncada estável e citotóxica [4, 79]. A TOE1 é uma desadenilase não convencional dos corpos de Cajal que apara as extremidades 3' dos pré-snRNA; desconhece-se por que a sua perda afeta o cérebro e as gónadas [4, 38]. O piccolo, codificado por PCLO, é uma proteína da citomatriz pré-sináptica da zona ativa; a sua perda leva à degradação de proteínas sinápticas e à desmontagem da sinapse [4, 34]. A ATAD3A organiza o ADN mitocondrial e participa no metabolismo do colesterol; o locus tem três parálogos em tandem (ATAD3C, ATAD3B, ATAD3A), o que facilita deleções recorrentes e dificulta a sequenciação de leituras curtas [4, 6]. O PRDM13 é um regulador do destino GABAérgico cerebelar; os ratinhos mutantes têm progenitores PAX2+ reduzidos, expressão ectópica de TLX3 e redução dos neurónios de kisspeptina do hipotálamo, o que explica a associação de hipoplasia cerebelar com hipogonadismo hipogonadotrófico [56, 57].

2.7. CASK, VLDLR e OPHN1

A CASK é uma serina proteína cinase dependente de cálcio/calmodulina da família MAGUK (membrane-associated guanylate kinase), com domínios CaMK N-terminal, dois L27, PDZ, SH3 e guanilato cinase C-terminal, amplamente distribuída no cérebro; controla a organização pré-sináptica e a libertação de neurotransmissores, a morfologia das espinhas dendríticas, o tráfego de recetores de glutamato e a transcrição de genes do desenvolvimento cortical [5]. A maioria das variantes na MICPCH são alelos nulos previstos; algumas missense heterozigóticas em raparigas com MICPCH comprometem especificamente a ligação à Mint1 ou à neurexina [5, 80]. O VLDLR é um recetor de 873 aminoácidos da família dos recetores das lipoproteínas de baixa densidade que, com o ApoER2, liga a reelina, fosforila a Dab1 e ativa a cascata que permite aos neuroblastos completar a migração no córtex cerebral e no cerebelo; sem o recetor, a migração não se completa, e não há alteração do lipidograma [10, 62]. A oligofrenina-1, codificada por OPHN1, causa deficiência intelectual ligada ao X com hipotonia neonatal e hipoplasia cerebelar variável [61].

2.8. Espetro de variantes, transcritos e fundadores

As variantes foram normalizadas no VariantValidator com o transcrito MANE (Matched Annotation from NCBI and EMBL-EBI) Select e confirmadas no ClinVar; a numeração histórica é indicada quando diverge [81, 82]. A TSEN54 NM_207346.3:c.919G>T p.(Ala307Ser) explica cerca de 88% dos casos de PCH2 segundo o GeneReviews, que usa a versão NM_207346.2, e cerca de 90% na coorte alemã [8, 15]. Na CASK e na TBC1D23, a numeração MANE difere da literatura, que usa NM_003688.3 e NM_018309.5, respetivamente [81].

Gene / contexto HGVS (MANE Select) Proteína Coordenada GRCh38 Nota
TSEN54, fundadora PCH2A/PCH4 NM_207346.3:c.919G>T p.(Ala307Ser) NC_000017.11:g.75522000G>T GeneReviews usa NM_207346.2 [8, 81]
TSEN54, PCH4 italiana NM_207346.3:c.1172_1185del p.(Gln391ProfsTer39) — Publicada como c.1170_1183del p.V390fs39X; normalizada com deslocamento 3'; ClinVar patogénica [81, 83]
TSEN54, outras patogénicas c.736C>T p.(Gln246Ter); c.1027C>T p.(Gln343Ter); c.468+2T>C; c.940del — — ClinVar patogénicas [82]
EXOSC3, fundadora cigana NM_016042.4:c.92G>C p.(Gly31Ala) NC_000009.12:g.37784953C>G Grave [11, 81]
EXOSC3 NM_016042.4:c.238G>T p.(Val80Phe) NC_000009.12:g.37784807C>A Curso mais ligeiro [9]
EXOSC3, ancestral mais comum NM_016042.4:c.395A>C p.(Asp132Ala) NC_000009.12:g.37783993T>G Frequência alélica de 0,1% em europeus-americanos; curso prolongado [9, 84]
EXOSC3 NM_016042.4:c.572G>A p.(Gly191Asp) NC_000009.12:g.37782040C>T Curso ligeiro em trans com p.(Asp132Ala) [9, 85]
EXOSC9 NM_005033.3:c.41T>C p.(Leu14Pro) NC_000004.12:g.121801465T>C Recorrente em três etnias [19]
EXOSC9 NM_005033.3:c.481C>T p.(Arg161Ter) NC_000004.12:g.121804718C>T Em trans com p.(Leu14Pro) [19]
EXOSC1 NM_016046.5:c.104C>T p.(Ser35Leu) NC_000010.11:g.97445775G>A PCH1F [23]
TSEN2 NM_025265.4:c.926A>G p.(Tyr309Cys) NC_000003.12:g.12516627A>G Grave em homozigotia e em heterozigotia composta [25]
TSEN2 NM_025265.4:c.1048C>T p.(Arg350Ter) NC_000003.12:g.12519146C>T Nova em 2025 [25]
TSEN34 NM_001077446.4:c.172C>T p.(Arg58Trp) — ClinVar patogénica; base da PCH2C [27, 82]
VPS53, fundadora judaica marroquina NM_001128159.3:c.2084A>G p.(Gln695Arg) NC_000017.11:g.532843T>C Portadores cerca de 1/37 [31]
VPS53, fundadora judaica marroquina NM_001128159.3:c.1556+5G>A p.? NC_000017.11:g.562498C>T Em heterozigotia composta com p.(Gln695Arg) [31]
CLP1, fundadora turca NM_006831.3:c.419G>A p.(Arg140His) NC_000011.10:g.57659895G>A Todos os doentes turcos homozigóticos [43, 86]
COASY NM_025233.7:c.1486-3C>G p.? (RNA: salto do exão 7, p.(Ala496IlefsTer20)) NC_000017.11:g.42565656C>G PCH12 [48]
COASY NM_025233.7:c.1549_1550del p.(Ser517ProfsTer61) NC_000017.11:g.42565722_42565723del Publicada como c.1549_1550delAG [48]
PPIL1, fundadora egípcia NM_016059.5:c.295G>A p.(Ala99Thr) NC_000006.12:g.36856019C>T Haplótipo partilhado [52]
CDC40 NM_015891.3:c.1505T>G p.(Phe502Cys) — ClinVar patogénica/provavelmente patogénica [51, 82]
VRK1 NM_003384.3:c.1160G>A p.(Arg387His) — Neuronopatia motora distal do adulto, sem PCH [82, 87]
VLDLR NM_003383.5:c.1256G>A p.(Cys419Tyr) NC_000009.12:g.2645026G>A Domínio EGF-B; fenótipo menos grave [10, 88]
VLDLR, fundadora huterita Deleção de cerca de 199 kb que inclui todo o gene — — ClinVar 12200; as coordenadas GRCh38 exatas não constam das fontes consultadas [59, 82]
CASK NM_001367721.1:c.2561T>C p.(Val854Ala) NC_000023.11:g.41523994A>G Histórica NM_003688.3:c.2546T>C p.(Val849Ala) [81, 89]
CASK, rapaz com mosaico NM_001367721.1:c.316C>T p.(Arg106Ter) NC_000023.11:g.41745564G>A Publicada em NM_003688.3 com a mesma numeração c.316C>T p.(Arg106Ter) [58, 81]
TBC1D23 NM_001199198.3:c.1903C>T p.(Arg635Ter) NC_000003.12:g.100320856C>T Histórica NM_018309.5:c.1858C>T p.(Arg620Ter) [47, 81]
MED29 c.416T>C p.(Leu139Pro) — Como publicada; não coincide com a referência de NM_017592.4 (o artigo usa outro transcrito) [90]

As variantes fundadoras com dados populacionais são a TSEN54 p.(Ala307Ser) nos Países Baixos e na Alemanha, a EXOSC3 p.(Gly31Ala) nas populações ciganas da Europa Central e de Leste, as SEPSECS em judeus de origem iraquiana e marroquina, as VPS53 em judeus marroquinos, a CLP1 p.(Arg140His) na Turquia, a PPIL1 p.(Ala99Thr) no Egito, a deleção de VLDLR nos huteritas e a variante intrónica profunda NM_176096.3:c.334+243G>A de CDK5RAP3 em populações do Sul da Ásia (secção 9) [8, 10, 11, 29, 31, 44, 52, 91].

2.9. Correlações genótipo-fenótipo, penetrância e expressividade

No espetro TSEN54, a homozigotia p.(Ala307Ser) dá PCH2 com sobrevivência até à infância, e a heterozigotia composta de p.(Ala307Ser) com uma variante sem sentido, de frameshift ou de splicing dá o extremo PCH4/PCH5, com mais sintomas perinatais, dependência de ventilador e morte precoce [4, 8, 92]. Na EXOSC3, a homozigotia p.(Asp132Ala) associa-se a curso prolongado, com sobrevivência possível até à puberdade, alguns doentes a andar ou a dizer palavras isoladas, ponte de tamanho normal e hipoplasia cerebelar ligeira; as combinações p.(Asp132Ala)/p.(Val80Phe) e p.(Asp132Ala)/p.(Gly191Asp) são igualmente ligeiras [9, 17]. A p.(Asp132Ala) em trans com um alelo sem sentido ou com p.(Tyr109Asn), e a homozigotia p.(Gly31Ala) ou p.(Gly135Glu), dão curso rapidamente progressivo, morte na lactância e atenuação da ponte ventral; dois irmãos homozigóticos p.(Gly31Ala) tiveram restrição de crescimento grave, acinesia fetal, microlisencefalia e malformações compatíveis com romboencefalossinapse [17, 93]. Na SLC25A46 a gravidade acompanha a instabilidade da proteína [76]. Na AMPD2 o fenótipo é uniformemente grave, sem correlação genótipo-fenótipo nem hotspot [94]. Na RARS2 e na TOE1 as variantes distribuem-se ao longo do gene sem correlação clara [4, 39]. Na CASK, as raparigas com MICPCH têm variantes heterozigóticas de perda de função, e as variantes hipomórficas (missense, splicing) dão deficiência intelectual ligada ao X com ou sem nistagmo; nos rapazes, a perda de função germinativa dá MICPCH com encefalopatia epilética grave, os mosaicos somáticos e as variantes de penetrância parcial dão MICPCH sem epilepsia grave, e as hipomórficas dão deficiência intelectual com ou sem nistagmo [5, 95]. A penetrância da MICPCH é aparentemente completa nas raparigas e nos rapazes descritos; nos mosaicos, o nível de mosaicismo pode determinar a variabilidade, e nas portadoras de variantes hipomórficas a penetrância é incompleta [5]. Na série de Burglen e colaboradores não houve correlação genótipo-fenótipo clara: uma rapariga com p.(Trp657Ter) andava e corria aos 3 anos e usava palavras aos 8, enquanto outra com p.(Trp656Ter) não adquiriu linguagem nem marcha [58]. Na VLDLR não há correlações clinicamente relevantes, exceto um fenótipo menos grave com a p.(Cys419Tyr) num domínio menos essencial [10].

2.10. Doenças alélicas

Várias PCH têm formas alélicas fora da classe. A VRK1 causa também neuronopatia motora hereditária distal autossómica recessiva 10 (OMIM 620542), com fraqueza e atrofia distal lentamente progressiva dos membros inferiores e início juvenil ou adulto; Stoll e colaboradores descreveram irmãos com AME distal do adulto e uma criança com doença do neurónio motor sem PCH, e Greenbaum e colaboradores dois doentes judeus marroquinos homozigóticos p.(Arg387His) com neuropatia motora dependente do comprimento iniciada aos 48 e aos 40 anos [4, 87, 96]. A SLC25A46 causa neuropatia sensitivo-motora hereditária 6B (atrofia ótica precoce com neuropatia axonal do tipo Charcot-Marie-Tooth 2) [22]. A AMPD2 causa SPG63, descrita numa família homozigótica para uma variante de frameshift [97, 98]. A COASY causa CoPAN (neurodegenerescência com acumulação de ferro cerebral 6), com epilepsia, surdez, perturbação da linguagem, perturbação do espetro do autismo (PEA), atrofia e microcefalia, e uma miopatia de depósito lipídico responsiva à riboflavina [99–101]. A TSEN2 causa a síndrome TRACK (TSEN2-Related Atypical hemolytic uremic syndrome, Craniofacial malformations, Kidney failure) [26]. A VPS53 tem um extremo ligeiro de paraparesia espástica hereditária complicada com deficiência intelectual ligeira a moderada, perímetro cefálico e RM normais, e irmãos com os mesmos alelos foram diagnosticados como síndrome PEHO (encefalopatia progressiva com edema, hipsarritmia e atrofia ótica) [32, 102]. A EXOSC3 tem relatos de paraplegia espástica hereditária complicada e de hipoplasia cerebelar isolada com envolvimento do corno anterior [9, 103]. O PRDM13 causa, além da PCH17, uma síndrome recessiva com deficiência intelectual, ataxia com hipoplasia cerebelar, escoliose e puberdade atrasada por hipogonadismo hipogonadotrófico (OMIM 619761), e, por regulação em cis, a distrofia macular de North Carolina, autossómica dominante e não detetada por exoma [57, 104]. O espetro de ATAD3A vai da PCH recessiva letal neonatal à síndrome de Harel-Yoon dominante e à cardiomiopatia dominante letal neonatal [6]. A CASK tem como fenótipo alélico a deficiência intelectual ligada ao X com ou sem nistagmo, que integra a antiga síndrome FG4 [5, 105].

2.11. Neuropatologia

Na PCH2, o cerebelo mostra hipoplasia com redução da ramificação das folhas, degenerescência segmentar do córtex cerebelar e do núcleo denteado, degenerescência variável das células de Purkinje e preservação relativa do flóculo e do vérmis; a ponte tem morte neuronal ventral com preservação relativa do tegmento; o bolbo tem hipoplasia e degenerescência segmentar dos núcleos olivares inferiores e perda dos núcleos arqueados; a mielina não está envolvida [8, 106]. Os achados combinam traços de hipoplasia («crescimento folial atrofiado») e de degenerescência, e o termo «hipoplasia» é histórico [4]. Na PCH4 há atraso da maturação e do crescimento cortical, acumulação de líquido pericerebral, gliose extensa e perda neuronal no tálamo e no caudado, hemisférios cerebelares muito hipoplásicos sem células de Purkinje, restos do denteado, vérmis mais afetado do que na PCH2 e olivas inferiores sem pregueamento, em forma de ferradura [4]. Na PCH1B há atrofia agrupada e atrofia das fibras tipo II no músculo, perda de motoneurónios do corno anterior, perda de células de Purkinje, atrofia das folhas, degenerescência dos núcleos denteados e perda dos núcleos pontinos ventrais e das fibras pontinas transversas [9]. Na PCH7, a neuropatologia mostrou atrofia cerebral com redução profunda da substância branca, hemisférios cerebelares quase ausentes, vérmis relativamente poupado, ponte ventral sem núcleos pontinos e olivas inferiores não identificáveis [4, 107]. Na PCH17, a RM e a fetopatologia mostram hipoplasia acentuada das olivas inferiores, displasia do núcleo denteado e camada de Purkinje rarefeita e desorganizada [56]. A primeira descrição neuropatológica da hipoplasia cerebelar por VLDLR, num feto de termo do terceiro trimestre, mostrou hipoplasia cerebelar com hipoplasia marcada do vérmis e simplificação cortical sem lisencefalia [108]. Segundo o PNDS francês, nas PCH2, PCH4 e PCH5 a camada granular interna é pouco densa, os núcleos denteados são hipoplásicos e fragmentados, as olivas têm muito poucas células e o corno anterior da medula é normal, ao passo que a perda dos motoneurónios do corno anterior caracteriza a PCH1 [12]. Num rapaz com variante de CASK, a neuropatologia mostrou perda neuronal na ponte, folhas cerebelares pouco profundas, malformadas e não ramificadas, camada granular externa anormalmente espessa, camada granular interna praticamente ausente, camada de Purkinje desorganizada e hipercelularidade da camada molecular. Em dois fetos e num doente com PCH por PRDM13, a hipoplasia grave do vérmis acompanhava-se de foliação anómala, núcleos denteados displásicos e fragmentados, olivas muito hipoplásicas com feixes piramidais preservados, camada de Purkinje desorganizada com densidade celular decrescente ao longo da evolução e heterotopias de células de Purkinje na substância branca cerebelar [12].

3. Espectro Clínico e Manifestações por Sistema

3.1. Traços comuns da classe

As características partilhadas pelas PCH são a hipoplasia e/ou atrofia do cerebelo e da ponte, a microcefalia progressiva, o envolvimento cerebral variável, os défices cognitivos e motores graves e as crises epiléticas frequentes; o tratamento é sintomático e a maioria dos doentes morre na infância [1, 68]. A maioria dos sinais neurológicos reflete disfunção do córtex e dos gânglios da base (deficiência intelectual grave, défice motor central, epilepsia), e os sinais cerebelares evidentes são referidos muito raramente, apesar do envolvimento cerebelar grave na imagem [4]. O Oxford Desk Reference descreve o fenótipo como neurodegenerativo, com microcefalia e atraso grave, problemas de alimentação e deglutição típicos e, por vezes, fraqueza compatível com AME infantil [62]. A Orphanet acrescenta a grande variação clínica entre formas e dentro de cada forma, e refere como complicações potencialmente fatais na PCH2 a morte no berço, a apneia do sono, a rabdomiólise e a hipertermia maligna [1]. Na coorte canadiana de 38 crianças com PCH na imagem (21 rapazes e 17 raparigas, dos 8 dias aos 15 anos, Montreal), todas tinham hipoplasia da ponte e do vérmis, 63% hipoplasia dos hemisférios cerebelares e 71% anomalias supratentoriais; nenhuma teve regressão; cerca de um terço morreu (mediana de 8 meses); todas tinham atraso global, 50% eram não verbais, 64% não andavam e 45% tinham gastrostomia [13]. Esta coorte mede a PCH como achado radiológico de qualquer causa e não a história natural das PCH monogénicas numeradas.

As manifestações extraneurológicas são, na maioria, consequência da polideficiência e não específicas das PCH [12]. As alterações neuro-ortopédicas (cifoescoliose por hipotonia axial e alterações do tónus, luxação da anca) instalam-se depressa, por vezes desde o período neonatal, e os defeitos de mineralização óssea são multifatoriais (falta de carga, imobilização, desnutrição, carência de cálcio e de vitamina D, corticoides e antiepiléticos), com risco de fraturas patológicas, dor óssea e perturbação do sono. A vulnerabilidade respiratória (apneias, infeções de repetição, insuficiência respiratória) resulta da combinação de défice de desenvolvimento do parênquima pulmonar, perturbação neurológica do comando respiratório, caixa torácica estreita e rígida, escoliose, tosse ineficaz, aspiração alimentar ou salivar e refluxo. A disfunção vesicoesfincteriana pode traduzir-se por bexiga instável, infeções urinárias de repetição e bexiga de luta (parede espessada e com divertículos), com possível repercussão no aparelho urinário superior. As perturbações do sono têm causas orgânicas (dor, desconforto, epilepsia, apneias) e/ou alteração do ritmo vigília-sono, com repercussão importante na pessoa e na família. A dor procura-se pela entrevista dos próximos (alteração invulgar do comportamento), pela observação minuciosa e pelo exame, com escalas de pontuação, e as causas são digestivas, estomatológicas, otorrinolaringológicas, neurológicas, ósseas, cutâneas ou psicológicas. Estão descritas malformações viscerais raras, cardíacas (comunicação interventricular, tetralogia de Fallot) e renais (hidronefrose), e, na PCH2, CK elevada com rabdomiólise ocasional durante infeções [12].

3.2. PCH2A (TSEN54 p.(Ala307Ser) em homozigotia)

A gravidez decorre habitualmente sem intercorrências; os recém-nascidos não têm dismorfias externas nem anomalias viscerais e nascem de termo com peso e comprimento normais, com perímetro cefálico normal mas sempre abaixo do percentil 50, e a microcefalia progride no primeiro ano para valores inferiores a −2 desvios-padrão (DP) [8]. O recém-nascido tem incoordenação bucofaríngea (preensão fraca do mamilo, incoordenação sucção-deglutição) e clónus generalizado («jitteriness»); não há desenvolvimento motor voluntário, e sentar sem apoio ou alcançar e agarrar voluntariamente raramente são alcançados; a coreia grave surge com frequência nos primeiros 6 meses, habitualmente com espasticidade, e os doentes que nunca desenvolvem coreia permanecem tetraespásticos; a visão central está comprometida sem atrofia ótica primária; e há miopatia subclínica com creatina cinase (CK) elevada que pode evoluir para rabdomiólise após infeções graves [8].

A história natural mais completa é a coorte alemã e suíça de Sánchez-Albisua e colaboradores, recrutada entre abril e novembro de 2012 através do grupo de apoio PCH2 da Alemanha e da Suíça, com questionário padronizado, entrevista telefónica de 1 a 2 horas e registos médicos: 33 doentes (17 rapazes e 16 raparigas) nascidos entre 1991 e 2011, com RM típica e homozigotia p.(Ala307Ser), sem casais consanguíneos e com avós de origem alemã (78 de 101), polaca (10), suíça (7) e russa (6) [15]. Nove doentes tinham morrido (três raparigas e seis rapazes), com idade média de 6 anos e 7 meses (7 meses a 15 anos e 6 meses); considerando as crianças com seguimento possível até aos 10 anos, 8 de 15 (53%) tinham morrido, 3 antes dos 6 anos e 5 entre os 6 e os 10 anos [15]. O resumo do artigo e algumas fontes secundárias referem «53% aos 11 anos»; o texto integral fixa o denominador em 15 crianças e o limite em 10 anos [15]. As causas de morte foram morte súbita inesperada noturna em cinco, falência multiorgânica, crise com apneia, pneumonia e hipotermia progressiva refratária (aos 15 anos) em um cada [15].

Manifestação na PCH2A (coorte de 33) n/N (%) Pormenor
Atraso grave do desenvolvimento 33/33 (100%) Nenhum gatinhou, ficou de pé, andou ou falou; cerca de dois terços com algum progresso
Coreoatetose 29/33 (88%) Início ao nascer ou nos primeiros 6 meses (média 3,8 meses); 62% com sinais piramidais associados
Espasticidade pura 4/33 (12%) Sem coreia
Epilepsia 27/33 (82%) Os 6 sem crises tinham menos de 28 meses; primeira crise em média aos 2 anos e 5 meses
Estado de mal epilético 13/33 (39%) Primeiro episódio em média aos 46,9 meses
Crises distónicas não epiléticas 11/33 (33%) Postura em «C» durante horas, mal-estar e vómitos
Dificuldades alimentares 33/33 (100%) Início nos primeiros 6 meses; cessaram em 2
Doença do refluxo gastroesofágico (DRGE) 24/33 (73%) Inibidor da bomba de protões (IBP) em 18; fundoplicatura de Nissen em 12 (36%)
Gastrostomia endoscópica percutânea (PEG) 22/33 (67%) Idade média 3 anos e 8 meses
Perturbação do sono 32/33 (96%) Latência média 70 minutos; 3 despertares por noite
Apneia 22/33 (67%) Sobretudo noturna; oximetria em 13; traqueostomia em 5
Infeções recorrentes 17/33 (52%) Cerca de 2 internamentos por ano
Hipertermia sem infeção 20/33 (60%) Hipotermia em 2

Fonte da tabela: Sánchez-Albisua e colaboradores, texto integral; o GeneReviews reproduz as mesmas percentagens [8, 15]. A frequência da epilepsia difere entre fontes: 82% nesta coorte com seguimento até à infância e cerca de 50% na descrição clínica geral do GeneReviews; a diferença reflete provavelmente a idade dos doentes observados, porque nenhum dos seis doentes sem crises tinha mais de 28 meses [8, 15].

Os sinais pré-natais ocorreram em 10 crianças (microcefalia na ecografia às 32–35 semanas em 4, polidrâmnio em 4, movimentos fetais trémulos percebidos por 6 mães) e não se associaram à sobrevida a 1, 5 ou 10 anos; 20 recém-nascidos (61%) foram internados em neonatologia, com dificuldades alimentares em 85%, tónus anómalo em 70%, «jitteriness» em 64%, sonolência excessiva em 58% e dificuldade respiratória ou apneia em 27% [15]. O perímetro cefálico médio passou de −1,24 DP ao nascer para −5,58 DP aos 5 anos (−2,95 a −8,84), com comprimento de −2,14 DP e peso de −2,51 DP aos 5 anos [15]. As crises epiléticas foram tónico-clónicas, ausências atípicas, mioclónicas, tónicas, focais, atónicas e associadas a apneia, com convulsões febris frequentes; 25 doentes tomavam antiepiléticos, 15 com dois ou mais, e só 3 estavam livres de crises; o eletroencefalograma (EEG) mostrava atividade lenta difusa e descargas multifocais progressivas com a idade [15]. As crises distónicas tinham frequência de duas por semana a duas por ano, início médio aos 15 meses, cessaram em 5 de 11 entre os 2 e os 8 anos e, em 8 de 11, só terminavam com o sono natural [15]. Os ganhos motores e sociais foram fixar e seguir (76%), tentativa de preensão (76%), controlo cefálico moderado (73%), sorriso social (70%), rolar de ventral para dorsal (58%) e sentar sem apoio (9%); 10% perderam aquisições, e a linguagem era ausente em 10 e rudimentar em 19 [15]. Os autores interpretam o curso como degenerescência de início precoce que depois estabiliza [15].

O estudo de história natural alemão de Herrmann e colaboradores (2026), com 65 crianças (33 raparigas e 32 rapazes), mostrou início dos sintomas com mediana de 0 meses (0 a 6), muitas vezes sugerindo doença aguda e não congénita, e um intervalo mediano de 5 meses entre os primeiros sintomas e a confirmação genética nos nascidos depois de 2008 [109]. No mesmo grupo, as curvas de crescimento específicas construídas com dados retrospetivos de dezembro de 2020 a setembro de 2022 (idade média de 8 anos e 7 meses), comparadas com a referência alemã KiGGS, mostraram altura e peso normais ao nascer, altura significativamente menor a partir dos 6 meses, peso a partir dos 3 meses e índice de massa corporal a partir dos 4 meses, com perímetro cefálico abaixo da média desde o nascimento e microcefalia grave e progressiva em todos; a falência do crescimento foi frequente apesar de uma ingestão calórica dentro ou acima dos valores de referência [110]. A esperança de vida na PCH2 é habitualmente inferior a 10 anos, embora estejam descritas sobrevivências além dos 20 anos; a melhoria dos cuidados, sobretudo a alimentação por gastrostomia, terá prolongado a sobrevida, e as complicações típicas são a morte súbita durante o sono no lactente e a morte em crises hipertérmicas [8]. Na série italiana de Cassandrini e colaboradores, 9 de 12 crianças com clínica e RM de PCH2/PCH4 tinham p.(Ala307Ser) e dois irmãos sem variante TSEN tinham uma tubulopatia semelhante à síndrome de Bartter [83].

3.3. PCH4 e PCH5

A PCH4, antes designada hipoplasia olivopontocerebelar, apresenta-se no período pré-natal com polidrâmnio em muitas gestações e, ao nascer, com insuficiência respiratória central por provável falência do tronco cerebral, dependência prolongada ou definitiva de ventilação mecânica, microcefalia habitualmente já presente, contraturas (artrogripose) em cerca de 50% dos recém-nascidos, hipertonia e clónus generalizado provocado pela manipulação ou pelo ruído, por vezes extremo; a morte ocorre habitualmente no período neonatal e a sobrevivência além dele é rara [4, 8]. A PCH5 foi descrita em três irmãos com forma grave de início fetal, atividade fetal semelhante a crises e degenerescência predominante no vérmis, com morte muito pouco depois do nascimento [8, 35].

3.4. Outros subtipos PCH2

A PCH2B (TSEN2) é rara e reproduz o fenótipo PCH2; a doente publicada em 2025, uma rapariga japonesa de 7 anos, tinha microcefalia progressiva, epilepsia, atraso, atrofia cerebelar e distonia [25, 111]. Na mesma TSEN2, uma variante intrónica fundadora com salto do exão 10 causou, em seis doentes de quatro famílias consanguíneas, a síndrome TRACK: microcefalia, malformações craniofaciais múltiplas, anomalias do sistema nervoso central e défice cognitivo variável, com síndrome hemolítico-urémico atípico em todos (microangiopatia trombótica, anemia hemolítica microangiopática, trombocitopenia, proteinúria, hipertensão grave) e doença renal terminal precoce [26]. A PCH2C (TSEN34) assenta numa única família homozigótica p.(Arg58Trp) [27]. A PCH2F (TSEN15) foi descrita em três famílias consanguíneas (paquistanesa, saudita e síria) com cinco afetados: microcefalia progressiva (de normal ou quase normal ao nascer até −3,0 a −9,7 DP), atraso, deficiência intelectual ligeira a grave, linguagem expressiva pobre ou ausente, crises em 2 de 4 (início aos 8 e 11 meses), nenhum com falência visual central e só um com o défice motor extenso típico [33].

A PCH2D (SEPSECS) tem uma forma precoce grave, com irritabilidade e opistótono neonatais ou nos primeiros meses, microcefalia progressiva, deficiência intelectual profunda, espasticidade ou tetraplegia distónica, perda de aquisições motoras, défice visual e atrofia cerebelar progressiva seguida de atrofia cerebral, e uma forma tardia ligeira com atraso infantil ligeiro, ataxia e espasticidade lentamente progressivas até à adolescência ou idade adulta, sem atrofia pontina [4, 29]. A coorte internacional de 27 doentes bialélicos (13 variantes novas) distinguiu três cursos: início precoce grave com atrofia cerebelar ou cerebral, início precoce mais ligeiro com deterioração gradual e início tardio ligeiro; só 1 de 8 doentes estudados tinha hormonas tiroideias sugestivas de defeito da conversão de T4 em T3 [30]. Os casos precoces concentram-se nos países árabes e na Finlândia [112]. A PCH2E (VPS53), descrita em 10 doentes de quatro famílias judias marroquinas não consanguíneas, tem gravidez e perímetro cefálico normais ao nascer, atraso nos primeiros meses, espasticidade progressiva até tetraplegia espástica, contraturas múltiplas, microcefalia progressiva, crises, deficiência intelectual profunda, osteoporose e escoliose; a RM é inicialmente normal e a atrofia cerebelar surge no primeiro ano, seguida de atrofia cerebral [4, 31].

3.5. PCH1

Os relatos iniciais de PCH1 descreviam doença letal neonatal com polidrâmnio, contraturas congénitas, insuficiência respiratória e hipotonia grave; estudos posteriores incluíram doentes com ponte poupada e sobrevida até à puberdade [4]. Na PCH1B (EXOSC3), descrita em 82 indivíduos de 58 famílias, a gravidez é habitualmente normal, com acinesia fetal, contraturas pré-natais e polidrâmnio em apenas 1–2%; peso e comprimento ao nascer são normais e o perímetro cefálico normal ou pequeno [9]. A hipotonia é o achado inicial mais comum, presente ao nascer na maioria e evidente só aos 3–6 meses nos restantes; seguem-se sinais de atrofia muscular neurogénica (atrofia, reflexos diminuídos, fasciculações e potenciais de unidade motora aumentados no eletromiograma), insuficiência respiratória e dificuldades de deglutição no primeiro ano e, nos sobreviventes, espasticidade, distonia e crises (em cerca de 25% dos sobreviventes prolongados), estrabismo e nistagmo [9]. Os marcos motores são atrasados ou ausentes; poucos gatinham, se sentam ou andam sem apoio, e estas aquisições perdem-se muitas vezes; a fala é habitualmente ausente, com frases curtas em poucos; a insuficiência da deglutição obriga à alimentação por sonda na maioria, entre o nascimento e alguns anos; as causas de morte são infeções e insuficiência respiratória por fraqueza muscular, com idade de morte entre poucas semanas e a adolescência [9].

Na série de Rudnik-Schöneborn e colaboradores (37 doentes de 27 famílias de etnia mista), EXOSC3 explicou 10 de 27 famílias (37%), a p.(Asp132Ala) correspondeu a 11 de 20 alelos (55%), três doentes sobreviveram para além da adolescência, e as anomalias intrauterinas, a hipoventilação pós-natal, as contraturas e a morte neonatal foram raras nos doentes EXOSC3-positivos e típicas nos negativos [84]. A idade média à morte foi de 9 meses com EXOSC3 e de 3 meses sem EXOSC3 [4]. Na série de Eggens e colaboradores, de 99 doentes de 90 famílias negativos para TSEN, RARS2, VRK1 e CASK, EXOSC3 foi identificado em 12 famílias, todas com PCH1 [17]. A proporção de PCH1 explicada por EXOSC3 é de cerca de metade segundo o GeneReviews e Eggens e colaboradores, e de 30–40% na série de Rudnik-Schöneborn; as estimativas dependem da seleção das coortes [9, 17, 84]. A revisão de Ivanov e colaboradores de todos os PCH1 geneticamente confirmados encontrou sinais de início pré-natal em todos os subtipos exceto na homozigotia p.(Asp132Ala); morte precoce (1 dia a 17 meses) com p.(Gly31Ala) e com SLC25A46, com quadro de AME tipo 1, atraso global, défice visual e auditivo, microcefalia, nistagmo e atrofia ótica variáveis; formas mais ligeiras (p.(Asp132Ala) homozigótica e VRK1) com sinais de primeiro neurónio motor, distonia ou ataxia e morte entre os 5 e os 18 anos; EXOSC3 restante e EXOSC8 intermédias, com morte entre os 3 meses e os 5 anos; nenhuma correlação entre a idade de início neurológico e a duração da vida; e acrescentou a pele marmórea e o estridor laríngeo congénito ao fenótipo [14]. Na coorte iraniana de 10 doentes com subtipos PCH, a EXOSC3 c.395A>C foi recorrente em 40% [113].

Uma manifestação renal foi acrescentada em 2026: a revisão de 34 crianças europeias com PCH1B identificou 13 casos de microangiopatia trombótica (MAT) associada a EXOSC3 (8 rapazes e 5 raparigas), com incidência no Reino Unido de 0,004 por milhão por ano; três crianças receberam eculizumab a longo prazo, uma sem resposta e duas com recidiva sob tratamento [114].

A PCH1A (VRK1) foi descrita numa família judia asquenaze consanguínea com AME e PCH, com microcefalia grave desde o nascimento e cognição apenas ligeiramente afetada; depois, a VRK1 associou-se sobretudo a doença do neurónio motor sem PCH [4, 16]. A PCH1C (EXOSC8) foi descrita em 22 lactentes de três linhagens consanguíneas com hipoplasia do cerebelo e do corpo caloso, mielinização anómala, doença do neurónio motor espinal, atraso de crescimento, fraqueza grave, espasticidade, atraso psicomotor e défice visual e auditivo [18]; um doente espanhol de 16 anos, heterozigótico composto, tinha atrofia cerebelar e muscular espinal, espasticidade, nistagmo, oftalmoparesia e epilepsia, com supratentorial normal e sobrevida longa [115], e uma quinta família tinha também hérnia diafragmática e lobos temporais hipoplásicos [116]. A PCH1D (EXOSC9) apresenta-se ao nascer ou na lactância com hipotonia generalizada grave, insuficiência respiratória e atrofia cerebelar; uma criança tinha fraturas congénitas dos ossos longos [19]; duas famílias japonesas tinham desenvolvimento intelectual relativamente maior e ponte estruturalmente normal [20], e até 2022 estavam descritos 9 doentes [117]. A PCH1E (SLC25A46) é letal: irmãos de duas famílias morreram pouco depois do nascimento com PCH e apneia [21]. A PCH1F (EXOSC1) foi descrita num rapaz de 8 meses com atraso, microcefalia, dismorfia subtil e hipotonia, cujo irmão com quadro semelhante morreu aos 4 anos e 6 meses [23].

3.6. PCH3, PCH6 a PCH17 e PHRINL

A PCH3 (PCLO) foi identificada numa fratria de Omã com atraso global grave e crises no primeiro ano, microcefalia progressiva, baixa estatura, dismorfia facial e atrofia ótica em alguns, sem doença do movimento extrapiramidal; a RM mostrava atrofia difusa do cérebro, do cerebelo e do tronco [4, 34, 118]. A PCH6 (RARS2) tem como fenótipo canónico a epilepsia precoce grave, a atrofia global progressiva incluindo ponte e cerebelo e a acidose láctica e/ou os defeitos da cadeia respiratória; todos os sobreviventes do período neonatal têm atraso grave e quase todos epilepsia refratária, o lactato está elevado no plasma ou no líquido cefalorraquidiano (LCR) na maioria e o défice da cadeia respiratória nem sempre se confirma [4, 36]. O fenótipo alarga-se a encefalopatias epiléticas e do desenvolvimento com imagem inicial normal, e alguns autores defendem a designação de encefalopatia mitocondrial de início precoce [37, 119, 120].

A PCH7 (TOE1) associa PCH a DSD. Nos 46,XY, a subvirilização varia de genitais externos femininos quase completos até micropénis com escroto hipoplásico, com restos uterinos ou ováricos em alguns e testículos atróficos ou ausência de tecido gonádico noutros; nos 46,XX, os genitais são habitualmente normais [4]. Nas 12 famílias de Lardelli e colaboradores, o atraso global ocorreu em 13 de 13, a microcefalia progressiva em 12 de 13 e a hipoplasia pontina em 12 de 12 [38]. A revisão sistemática de 2026 de 28 casos 46,XY encontrou envolvimento neurológico em todos exceto um, genitais externos anómalos em 17 de 23, testículos não localizados em 5 de 5, útero ausente em 4 de 7, hormona folículo-estimulante (FSH) elevada em 7 de 7 e testosterona baixa em 3 de 3, com fenótipo gonadal de síndrome de regressão testicular ou disgenesia gonadal parcial com regressão mülleriana [39]. O caso índice foi um rapaz com genitais hipoplásicos e testículos impalpáveis que morreu às 24 semanas de vida («PCH com testículos evanescentes») [107], e está descrita uma forma ligeira sem microcefalia nem volume cerebelar reduzido [121].

A PCH8 (CHMP1A) cursa com microcefalia, atraso grave (alguns com marcha independente), postura distónica e/ou coreia, contraturas e crises em alguns, sem progressão nas RM seriadas [4, 40]; a heterozigotia composta e a homozigotia por dissomia uniparental segmentar alargaram o espetro mutacional [69, 122]. A PCH9 (AMPD2) tem microcefalia pós-natal progressiva, atraso profundo, défice visual cortical, disfagia, espasticidade com clónus neonatal, hipotonia axial e, nos doentes mais velhos, neuropatia axonal; o curso é largamente não progressivo, com algumas mortes na primeira década; a série de Kortüm e colaboradores reuniu 25 doentes [4, 42, 123, 124]. A PCH10 (CLP1) foi descrita em famílias turcas com atraso grave, crises tipicamente refratárias, espasticidade progressiva, dismorfia, microcefalia e neuropatia axonal motora e sensitiva grave; até 2022 havia 21 doentes de 10 famílias turcas homozigóticos para a mesma variante, e uma família sudanesa foi a primeira não turca [4, 86]. A PCH11 (TBC1D23) é não degenerativa, com deficiência intelectual moderada a grave, microcefalia, hipotonia, ataxia em cerca de metade, crises em 2 de 13 e alguns doentes com marcha autónoma; a revisão de 2026 de 21 casos com 12 variantes acrescentou problemas comportamentais e psiquiátricos [4, 45–47].

A PCH12 (COASY) tem início pré-natal com PCH, microcefalia e artrogripose, e morte no lactente; até 2026 estavam descritos 14 fetos ou recém-nascidos de 8 famílias com perda de função completa, e uma combinação p.(Ala214Val)/p.(Arg339Ter) produziu um fenótipo letal perinatal semelhante, sugerindo um contínuo entre PCH12 e CoPAN [48, 125, 126]. A PCH13 (VPS51) foi descrita numa criança de 6 anos com atraso global grave, microcefalia, hipotonia, epilepsia, défice visual cortical, má progressão ponderal, disfunção hepática, edema dos membros inferiores e dismorfia, e depois em irmãos com deleção intragénica, em irmãos com surdez e disfagia e numa criança com transaminases elevadas recorrentes, ceruloplasmina baixa e esteatose com fibrose [50, 127–129]. A PCH14 (PPIL1) tem microcefalia progressiva, desenvolvimento psicomotor pobre ou ausente, tetraplegia espástica e crises precoces; na série egípcia de nove doentes de oito famílias, todos tinham epilepsia farmacorresistente precoce, atraso profundo e défice visual, três tinham malformação de Dandy-Walker e 4 de 9 (44%) uma perturbação hematopoiética [51, 52]. A PCH15 (CDC40) associa PCH e microcefalia com anemia crónica e trombocitopenia numa família consanguínea multiplex; uma segunda doente, identificada por reanálise de exoma numa coorte britânica de suspeita de doença mitocondrial, tinha envolvimento muscular e do sistema nervoso central, acidose láctica e défice secundário dos complexos I e IV [51, 53]. A PCH16 (MINPP1) tem hipotonia e atraso global grave desde a lactância, movimentos estereotipados, espasticidade e microcefalia progressiva; a série egípcia de 2026 elevou o total publicado para cerca de 26 doentes de 17 famílias e descreveu, em todos, atraso global, microcefalia, hipotonia, nistagmo, défice motor grave, crises, deficiência intelectual e uma gestalt facial (fronte alta, filtro longo e liso, lábio superior fino, queixo largo, orelhas de implantação baixa) [55, 130]. A PCH17 (PRDM13) apresenta-se com hipotonia neonatal, dificuldades alimentares e respiratórias, apneia central e bradicardia, com morte habitualmente na lactância; os doentes com variantes truncantes homozigóticas são os mais graves [56]. A PHRINL por ATAD3A é uma doença letal de início pré-natal com polidrâmnio, contraturas, PCH grave, microcefalia, gânglios da base anómalos e alterações da giração quando há deleções bialélicas; quatro doentes heterozigóticos compostos p.(Leu77Val)/deleção dos exões 3–4 tiveram curso menos grave e sobrevida mais longa, com défice combinado da fosforilação oxidativa num deles [4, 6].

3.7. MICPCH (CASK)

O GeneReviews reúne 130 indivíduos (45 rapazes e 85 raparigas) [5]. Nas 85 raparigas com MICPCH (a mais velha com 25 anos), o perímetro cefálico ao nascer é normal ou normal-baixo em cerca de dois terços; a microcefalia torna-se invariavelmente grave (−3,5 a −10 DP) no primeiro ano, habitualmente nos primeiros 4 meses; o controlo cefálico e o contacto visual surgem entre os 2 e os 24 meses, a maioria senta-se sem apoio entre os 7 e os 36 meses e só 20–25% andam (entre os 18 e os 72 meses); a linguagem é quase ausente na maioria; e o desenvolvimento intelectual está gravemente comprometido em quase todas [5]. Há perturbações do sono, estereotipias manuais e automordedura; hipotonia axial com hipertonia dos membros que pode progredir para espasticidade, distonia e outras perturbações do movimento; crises de vários tipos em cerca de 40%, com início entre o nascimento e os 10 anos; baixa estatura aos 4 anos e escoliose frequentes; hipoplasia do nervo ótico, retinopatia, nistagmo e estrabismo; surdez neurossensorial em cerca de 28%; anomalias viscerais congénitas raras e sem padrão recorrente; e um fenótipo facial com sobrancelhas arqueadas bem desenhadas, raiz e ponta nasais largas, nariz curto, filtro longo ou maxila proeminente, queixo pequeno e orelhas grandes [5, 131]. A gravidade da PCH na RM não tem valor prognóstico, e a mortalidade nas raparigas não está descrita [5]. As três mulheres japonesas com 31, 43 e 50 anos descritas em 2026 mostram a evolução adulta: duas sem posição de pé, com escoliose grave e alimentação por sonda, e uma com marcha, escoliose ligeira e alimentação oral, com dissociação entre gravidade radiológica e clínica [132].

Os 45 rapazes distribuem-se por três grupos. A MICPCH com encefalopatia epilética grave tem microcefalia pós-natal rápida (−2,7 a −9 DP), desenvolvimento ausente ou profundamente atrasado, crises precoces e intratáveis (síndrome de Ohtahara, síndrome de West, epilepsia mioclónica) com surto-supressão, RM com PCH difusa grave, giros simplificados, atrofia cortical e hipomielinização, anomalias minor múltiplas, defeitos septais, tetralogia de Fallot ou hidronefrose, e letalidade perinatal ou precoce (mortes aos 2, 7 e 21 meses) [5, 133, 134]. A MICPCH sem epilepsia grave, em seis rapazes, é comparável à feminina, com uma morte às 2 semanas [5]. A deficiência intelectual ligada ao X com ou sem nistagmo, o maior grupo (29 rapazes), tem deficiência intelectual ligeira a grave, epilepsia, nistagmo congénito, estrabismo, palidez ligeira do disco ótico e RM sem PCH na minoria estudada [5, 95]. As heterozigóticas para variantes hipomórficas têm habitualmente inteligência normal [5].

O espetro alarga-se com o teste genómico: no projeto britânico BINGO (31 crianças e jovens, comparados com 151 indivíduos publicados), a prevalência das alterações do tónus, da surdez neurossensorial e da epilepsia foi semelhante, mas a da deficiência intelectual grave ou profunda, da MICPCH, da atrofia ótica e do nistagmo foi menor; as perturbações do sono e o défice visual cerebral foram frequentes e a epilepsia associou-se à gravidade da deficiência intelectual [135]. Na série chinesa de 21 doentes (18 raparigas), as raparigas foram mais frequentes e mais ligeiras do que os rapazes, e as crises iniciaram-se mais cedo do que noutras coortes [136]. Num centro búlgaro, um rapaz com uma missense herdada provavelmente patogénica tinha deficiência intelectual grave, epilepsia farmacorresistente e quadro de tipo paralisia cerebral sem microcefalia nem PCH [137]. Os fenótipos pré-natais descritos são microcefalia, hipoplasia cerebelar, fossa posterior aumentada e polidrâmnio [138], e a doença do movimento pode ser complexa [139].

3.8. CAMRQ, VLDLR-CH e OPHN1

A hipoplasia cerebelar por VLDLR (CAMRQ1) caracteriza-se por ataxia congénita não progressiva, predominantemente axial, com marcha muito tardia (frequentemente depois dos 6 anos) ou nunca adquirida, deficiência intelectual moderada a profunda, disartria, estrabismo e crises [10]. Mais de 50 indivíduos foram identificados [10].

Manifestação na VLDLR-CH n/N (%)
Hipoplasia cerebelar 44/44 (100%)
Hipoplasia pontina 36/44 (81,8%)
Giração cortical simplificada 43/44 (97,7%)
Ataxia cerebelar (predominantemente axial) 53/53 (100%)
Hipotonia 28/37 (75,7%)
Disartria 34/42 (81,0%)
Nistagmo 11/47 (23,4%)
Estrabismo 40/51 (78,4%)
Défice cognitivo (moderado a profundo) 53/53 (100%)
Marcha atrasada (independente, se adquirida, a meio da infância) 53/53 (100%)
Epilepsia 7/53 (13,2%)
Reflexos vivos 31/40 (77,5%)
Microcefalia (−2 a −4 DP) 8/38 (21,1%)
Baixa estatura 19/42 (45,2%)
Dismorfia 1/53 (1,9%)

Fonte: GeneReviews VLDLR Cerebellar Hypoplasia, tabela 2 [10]. A marcha é de base alargada e sem tandem; doentes da Turquia apresentavam locomoção quadrúpede, adaptação comportamental provavelmente dependente de influências ambientais [10, 140]. A maioria segue ordens simples e alguns comunicam por frases curtas; os adultos não vivem de forma independente; as crises ocorreram em 40% dos afetados huteritas e são menos frequentes nos não huteritas; a esperança de vida não foi estudada formalmente, mas a experiência huterita sugere que não está reduzida de forma significativa [10, 67]. A primeira família africana com CAMRQ1, de quatro irmãos com gravidade variável, tinha uma variante nova homozigótica retida no retículo endoplasmático [141]. A CAMRQ2 (WDR81), a CAMRQ3 (CA8) e a CAMRQ4 (ATP8A2) cursam com ataxia cerebelar congénita e deficiência intelectual, e a CA8 associa-se a predisposição para marcha quadrúpede [10, 60]. O Oxford Desk Reference grafa «ATP6A2» na CAMRQ, um erro de impressão; o gene correto é ATP8A2 [2, 142]. Na deficiência intelectual ligada ao X por OPHN1, a deficiência intelectual é moderada a grave, com hipotonia neonatal, hipoplasia vermiana e dilatação quística da cisterna magna [61].

3.9. Genes recentes com fenótipo semelhante a PCH

Entre outubro de 2025 e outubro de 2026 foram publicados genes com fenótipo semelhante a PCH ainda sem número no OMIM. Dois irmãos homozigóticos para MED29 (complexo Mediator) p.(Leu139Pro) tinham atraso global profundo, microcefalia grave, cataratas, crises variáveis e hipoplasia cerebelar e pontina marcadas [90]. Uma mulher de 25 anos com uma variante de novo c.510_511delTC em FTH1 teve atraso e PCH estáveis durante anos e deterioração aos 20 anos (hipertonia, ataxia, distonia, disartria, apatia), com acumulação de ferro nos núcleos da base, tálamo, pedúnculos cerebrais e hipocampo, num quadro de atrofia cerebelar de início pré-natal com neuroferritinopatia tardia [7]. Três doentes de duas famílias homozigóticos para a variante fundadora sul-asiática intrónica profunda de CDK5RAP3 (adaptador da UFMilação) tiveram restrição de crescimento fetal, acinesia fetal, PCH, artrogripose, patologia hepática e evolução letal [91].

4. Reconhecimento Clínico e Sinais de Alerta

4.1. Quando suspeitar, por idade

No período pré-natal, a suspeita surge perante polidrâmnio, contraturas ou acinesia fetal, microcefalia no terceiro trimestre, movimentos fetais trémulos referidos pela mãe ou diâmetro cerebelar transverso pequeno [8, 15, 143]. A ecografia falha com frequência: na coorte PCH2A de 65 crianças, só 4 de 21 ecografias especializadas entre as 12 e as 32 semanas mostraram anomalias cerebelares, e estas eram inespecíficas, e a deteção falha muitas vezes na ecografia morfológica das 20 semanas [4, 109]. No recém-nascido, os sinais de alerta são o clónus generalizado e a incoordenação da sucção-deglutição (PCH2), a insuficiência respiratória central com artrogripose e hipertonia (PCH4, PCH12, PHRINL, PCH17), a hipotonia com fraqueza, arreflexia e insuficiência respiratória de tipo AME num doente sem deleção de SMN1 (PCH1), a acidose láctica com crises intratáveis (PCH6) e a ambiguidade genital ou os testículos não palpáveis num lactente com encefalopatia (PCH7) [4, 8, 9, 39]. Na PCH2A, o início é habitualmente ao nascer e sugere muitas vezes uma doença aguda e não congénita, o que atrasa o diagnóstico [109]. No lactente, a microcefalia progressiva com atraso grave, a coreia ou distonia nos primeiros 6 meses, as crises e os espasmos infantis devem fazer pedir RM cerebral [5, 8]. Numa rapariga com deficiência intelectual, microcefalia pós-natal progressiva e hipoplasia pontocerebelar sem coreoatetose, sobretudo com atrofia ótica, glaucoma ou surdez, o primeiro gene a considerar é CASK [5, 58]. Na criança mais velha, uma ataxia congénita não progressiva com marcha muito tardia, deficiência intelectual e estrabismo sugere CAMRQ; os sinais de ataxia só se tornam evidentes entre 1 e 2 anos, quando a criança começa a andar, e os lactentes apresentam-se com hipotonia, sucção fraca e atraso motor [10, 142]. A paralisia cerebral atáxica é um diagnóstico de exclusão e exige RM de alta resolução antes do aconselhamento [142].

O PNDS francês organiza os sinais por idade [12]. Até aos 3 meses: hipotonia com ausência de controlo cefálico aos 3 meses, mau seguimento ocular e alterações oculomotoras, microcefalia congénita ou progressiva, artrogripose, perturbações da sucção-deglutição e respiratórias, epilepsia, movimentos anormais e opistótono por hipertonia dos músculos posteriores, neuropatia axonal motora e défices visuais (atrofia ótica, retinopatia) ou auditivos. Depois dos 3 meses: perturbação grave do neurodesenvolvimento motor e cognitivo, microcefalia progressiva, coreia, discinesia ou distonia, síndrome tetrapiramidal, perturbações do sono com ou sem síndrome de apneia obstrutiva do sono (SAOS) e insuficiência respiratória. Na idade adulta: deficiência intelectual moderada a profunda, défice motor grave, epilepsia, movimentos anormais, défices sensoriais e neuropatia periférica. Estes sinais justificam consulta de neuropediatria para investigação etiológica, e o diagnóstico de PCH é radiológico, por RM cerebral num serviço com experiência pediátrica [12].

4.2. Pistas da anamnese e do exame

A anamnese inclui árvore genealógica de três gerações com consanguinidade, exposições na gravidez (ácido retinoico, citomegalovírus, álcool em excesso), ventilação episódica (hiperventilação alternada com hipoventilação, sugestiva de Joubert), perda de aquisições, problemas visuais, dificuldades de deglutição e infeções recorrentes (sugestivas da síndrome de Hoyeraal-Hreidarsson) [62]. No exame, a macrocefalia é rara e orienta para SNX14 ou PIGT; a microcefalia orienta para as PCH e a MICPCH; procuram-se fraqueza muscular (distrofias por alfa-distroglicano, doenças mitocondriais), nistagmo e apraxia oculomotora (ciliopatias), quistos linguais e freios orais excessivos (síndromes orofaciodigitais, Joubert), aniridia (síndrome de Gillespie) e polidactilia [62]. A origem étnica orienta o teste dirigido: ascendência cigana e quadro de AME com SMN1 normal (EXOSC3 p.(Gly31Ala)), ascendência neerlandesa ou alemã com padrão em «libélula» (TSEN54 p.(Ala307Ser)), ascendência judaica marroquina ou iraquiana (SEPSECS, VPS53), turca (CLP1), egípcia (PPIL1, MINPP1) ou huterita (VLDLR) [4, 10, 14, 29, 31, 44, 52].

4.3. Sinais de alerta e de urgência

Sinal Contexto Conduta imediata Fonte
Apneia, sobretudo noturna PCH2A (67%); causa provável das mortes súbitas noturnas Monitorização do sono e oximetria; estimulação tátil; considerar suporte respiratório e discutir objetivos de cuidados [4, 15]
Estado de mal epilético PCH2A (39%); epilepsias refratárias na PCH6, PCH10, PCH14 e MICPCH masculina Plano escrito de emergência com benzodiazepina de resgate [15, 144]
Hipertermia sem infeção ou febre prolongada com urina escura PCH2 (hipertermia em 60%; rabdomiólise após infeções) Hidratação adequada; CK durante a doença febril [8, 15]
Hipotermia progressiva PCH2A (causa de morte aos 15 anos) Reaquecimento e avaliação hospitalar [15]
Anemia hemolítica, trombocitopenia, hipertensão, proteinúria MAT na PCH1B; síndrome TRACK (TSEN2) Hemograma com esfregaço, função renal; a MAT-EXOSC3 não responde de forma consistente ao eculizumab [26, 114]
Engasgos, recusa alimentar, pneumonias de repetição Disfagia em todas as PCH Estudo da deglutição; sonda ou gastrostomia [5, 8]
Insuficiência respiratória neonatal com artrogripose PCH4, PCH1, PCH12, PCH17, PHRINL Suporte ventilatório e decisão partilhada precoce, incluindo cuidados paliativos [8, 56]
Descompensação respiratória aguda Todas as PCH com polideficiência; primeira causa de morte Internamento com cuidados proporcionais ao projeto de cuidados definido antecipadamente; ficha de urgência pediátrica (ficha SAMU ou de «doente notável») com o nível de cuidados acordado [12]
Síncope, bradicardia ou perturbação da condução Doença por EXOSC5 (não PCH); risco não demonstrado nos outros genes do exossoma ECG e avaliação cardiológica; pacemaker se indicado [12]

4.4. Rastreio neonatal

Não existe rastreio neonatal dirigido às PCH. O rastreio por espectrometria de massa em tandem pode, contudo, levantar a suspeita de doença associada a COASY: três doentes com CoPAN, dois dos quais irmãos falecidos na lactância com PCH na RM, tinham um perfil de acilcarnitinas que imitava o défice de carnitina palmitoiltransferase 1A (CPT1A), com razão C0/(C16+C18) elevada [49]. A revisão de cinco casos no projeto CLIR (Collaborative Laboratory Integrated Reports) encontrou 25 metabolitos ou razões fora dos intervalos, sobretudo carnitina livre elevada e acilcarnitinas de cadeia longa reduzidas, e recomenda considerar doença COASY perante rastreio sugestivo de défice de CPT1A, sobretudo quando a bioquímica confirmatória é normal [145].

5. Diagnóstico: Critérios, Testes e Algoritmos

5.1. Critérios

Não existem critérios clínicos formais publicados por uma sociedade para as PCH. O diagnóstico é clínico-radiológico e confirma-se pela genética molecular [1]. Nas formas autossómicas recessivas, o diagnóstico estabelece-se pela identificação de variantes patogénicas ou provavelmente patogénicas bialélicas no gene; duas variantes de significado incerto (VUS), ou uma variante patogénica com uma VUS, não estabelecem nem excluem o diagnóstico, segundo os critérios do American College of Medical Genetics and Genomics e da Association for Molecular Pathology (ACMG/AMP) [8, 9]. Na MICPCH, o diagnóstico estabelece-se numa rapariga com variante heterozigótica, num rapaz com variante hemizigótica ou, raramente, num rapaz com variante em mosaico [5]. A suspeita de TSEN54-PCH assenta num défice neurológico grave com imagem sugestiva e história familiar compatível com herança recessiva; a ausência de história familiar não exclui o diagnóstico [8, 106, 146]. Ivanov e colaboradores propuseram, para a PCH1, orientar o teste pela avaliação clínica detalhada e pela origem étnica; estas orientações são de autores e não de sociedade científica [14].

5.2. Neuroimagem

A RM é o exame de referência: na coorte PCH2A de 65 crianças, a neurossonografia pós-natal foi sugestiva em 26 de 54 e a RM confirmou a PCH em 62 de 63 [109]. Uma única RM não distingue com segurança hipoplasia de atrofia; a hipoplasia corresponde a um cerebelo de forma normal mas pequeno e a atrofia a uma perda progressiva com alargamento dos espaços interfoliares [4, 62]. Nas PCH, o vérmis é relativamente poupado face aos hemisférios, ao contrário da síndrome de Joubert e da malformação de Dandy-Walker, em que o vérmis é o mais afetado; a hipoplasia da base da ponte (perda dos neurónios pontinos ventrais e das fibras transversas) restringe muito o diferencial [4]. Uma fossa posterior pequena sugere síndromes genéticas (variante de Dandy-Walker, romboencefalossinapse, PCH, atrofia cerebelar), enquanto uma fossa posterior grande sugere sobretudo perturbações esporádicas (malformação de Dandy-Walker clássica, bolsa de Blake, megacisterna magna, quisto aracnoideu) [147].

Padrão de imagem Descrição Entidade sugerida Fonte
«Libélula» em corte coronal Hemisférios cerebelares planos e muito reduzidos («asas»), vérmis relativamente poupado («corpo»), ponte ventral plana; atrofia cortical em cerca de 40% PCH2A (correlação com TSEN54, P < 0,0005); também alguns PCH1 [4, 63, 92]
Hipoplasia grave sem poupança do vérmis, ponte muito aplanada, atrofia supratentorial profunda, LCR pericerebral Forma extrema do espetro TSEN54 PCH4 [4, 8]
Vérmis e hemisférios igualmente afetados, ponte normal ou reduzida sem aplanamento, quistos intracerebelares bilaterais em alguns Hipoplasia ligeira com hiperintensidades no hilo do denteado na p.(Asp132Ala) homozigótica PCH1B [4, 9, 17]
«Borboleta»: hipoplasia difusa proporcional de vérmis e hemisférios, hemisférios por vezes assimétricos, ponte pequena com poupança relativa da saliência superior, quarto ventrículo aberto, corpo caloso normal ou normal-baixo Estável em RM sucessivas MICPCH (CASK) [5, 58, 148]
Mesencéfalo em «8» no corte axial, agenesia ou hipoplasia grave do corpo caloso, hipomielinização Pedúnculos cerebrais hipoplásicos PCH9 (AMPD2) [4, 98]
Atrofia supratentorial rapidamente progressiva, atrofia cerebelar ligeira, ponte normal; RM inicial por vezes normal — PCH6 (RARS2) [4]
PCH grave igual em hemisférios e vérmis, corpo caloso muito fino, ventriculomegalia profunda de contorno irregular — PCH7 (TOE1) [4]
RM inicial normal, atrofia cerebelar no primeiro ano e depois cerebral — PCH2E (VPS53) [4]
Atrofia cerebelar progressiva seguida de atrofia cerebral; ponte envolvida em menos de metade — PCH2D (SEPSECS) [4, 30]
Cerebelo pequeno de proporções normais, não progressivo, anomalias do corpo caloso — PCH11 (TBC1D23); PCH8 (CHMP1A) [4, 45, 46]
Hipoplasia marcada dos gânglios da base com PCH, corpo caloso fino — PCH16 (MINPP1) [54, 55]
Microlisencefalia com paquigiria posterior, lobo frontal hipoplásico, agenesia do corpo caloso com colpocefalia — PCH14 (PPIL1) [52]
Hipoplasia do vérmis inferior e dos hemisférios, giros simplificados com córtex minimamente espessado, ponte pequena Espetro das lisencefalias com hipoplasia cerebelar VLDLR-CH [10]
Disgenesia cortical com giros simplificados, atrofia pontina, perda vermiana ligeira — PCH10 (CLP1) [4]
Hipoplasia olivar inferior acentuada, displasia do denteado Fetopatologia PCH17 (PRDM13) [56]

A ausência destes sinais não exclui o diagnóstico. Na PCH1, a hipoplasia cerebelar e pontina pode faltar no início da lactância [14]; a ponte é estruturalmente normal em algumas famílias EXOSC9 [20]; na MICPCH, duas raparigas com microcefalia progressiva e deficiência intelectual tinham ponte e cerebelo normais [5, 149]; na PCH7, uma forma ligeira tinha apenas ventrículo lateral aumentado e sulcos cerebelares aprofundados [121]; e na PCH2E a RM inicial é normal [4]. A RM de lactente de 2 meses com PCH2 publicada por Budde e colaboradores e reproduzida no GeneReviews mostra, no corte sagital mediano, vérmis hipoplásico e ponte ventral plana e, no sagital lateral, hemisfério cerebelar hipoplásico com espaço vazio na fossa posterior [8].

O PNDS francês define o protocolo de RM perante suspeita de PCH: cortes sagitais, axiais e coronais em T2, sequência 3D T1 e FLAIR axial ou 3D a partir de 1 ano; conforme o contexto, sequências de suscetibilidade magnética (úteis para distinguir as lesões isquémico-hemorrágicas da fossa posterior), imagem de tensor de difusão e tractografia [12]. O T2 nos três planos analisa a morfologia do tronco, do vérmis, dos hemisférios cerebelares e do corpo caloso (o sagital para o vérmis, o axial para a substância branca, a mielinização e os núcleos da base), e o T1 avalia melhor as biometrias e o grau de atrofia; o 3D T2 serve para os fluxos de LCR, mas é menos adequado ao sinal das substâncias branca e cinzenta. O corte sagital mediano mostra a redução de volume da ponte, muitas vezes aplanada e com perda do relevo protuberancial, do tronco e do vérmis; os coronais mostram a hipoplasia dos hemisférios e os axiais a forma do mesencéfalo. Como o diagnóstico radiológico é subjetivo, as normas biométricas pediátricas do vérmis e do tronco cerebral publicadas por Jandeaux e colaboradores em 2019, obtidas em 718 crianças, servem de referência. Pode predominar o envolvimento cerebeloso ou o do tronco, e várias PCH têm anomalias supratentoriais (giração, mielinização, corpo caloso, núcleos da base, atrofia cerebral, dilatação ventricular, quistos aracnoideus). A relação entre a gravidade da hipoplasia e a evolução clínica continua discutida; estudos longitudinais mostram agravamento com atrofia cerebral nas formas degenerativas, enquanto outras PCH são estáveis. A RM de controlo, que exige muitas vezes sedação ou anestesia geral, discute-se perante evolução clínica ou sinais novos e não é indispensável ao seguimento [12].

5.3. Investigações complementares

Exame Achado procurado Indicação Fonte
Eletromiografia e estudos de condução nervosa Envolvimento do neurónio motor inferior (PCH1); neuropatia axonal (PCH9, PCH10, PCH1E) Hipotonia com fraqueza ou arreflexia; os sinais podem faltar na PCH1E [9, 14, 62]
Pesquisa de deleção de SMN1 Exclusão de AME 5q Suspeita de PCH1 [9, 14]
CK Miopatia subclínica, rabdomiólise na PCH2; distrofias por alfa-distroglicano Doença febril na PCH2; fraqueza [8, 62]
Lactato plasmático e no LCR Elevado na PCH6; lactato no LCR elevado numa PCH1 deve fazer pensar em RARS2 Encefalopatia neonatal com crises [4, 92]
Focagem isoelétrica das transferrinas Défices congénitos da glicosilação (CDG) Todas as PCH sem diagnóstico [4, 62]
Fosfatase alcalina; 7-desidrocolesterol Defeitos de âncora GPI; síndrome de Smith-Lemli-Opitz Diferencial [62]
Selénio plasmático, glutatião, metabolitos do enxofre, atividade da glutationa peroxidase (GPX), selenoproteína P (SELENOP) Défice de SEPSECS: diagnóstico diferencial e monitorização de tentativas terapêuticas PCH2D [30]
FSH, testosterona, ecografia pélvica, cariótipo DSD 46,XY com regressão testicular Genitais atípicos ou testículos não palpáveis [39]
Hemograma Doença hematopoiética (PCH14, PCH15); anemia aplástica na síndrome de Hoyeraal-Hreidarsson PCH com microlisencefalia; infeções recorrentes [51, 52, 62]
Função renal, proteinúria, pressão arterial, esfregaço (esquizócitos), marcadores de hemólise MAT-EXOSC3; síndrome TRACK PCH1B; PCH2B; dismorfia craniofacial [26, 114]
Provas hepáticas Disfunção hepática (PCH13) — [50, 129]
Perfil de acilcarnitinas Padrão semelhante ao défice de CPT1A Suspeita de doença COASY [49, 145]
EEG Surto-supressão, hipsarritmia, descargas multifocais Crises; MICPCH masculina [5, 15]
Oftalmologia (fundo, potenciais evocados visuais) e audiologia Atrofia ótica, retinopatia, glaucoma, surdez neurossensorial Todas, sobretudo MICPCH e PCH1 [5, 9, 58]
Ecocardiograma e ecografia renal Anomalias cardíacas e renais raras MICPCH, sobretudo rapazes graves [5]
Ecografia abdominal, renal e cardíaca Malformações associadas (comunicação interventricular, tetralogia de Fallot, hidronefrose) Avaliação inicial de todas as PCH (PNDS) [12]
Eletrorretinograma e imagem da retina Retinopatia pauci- ou assintomática Avaliação oftalmológica completa no diagnóstico (acuidade, oculomotricidade, lâmpada de fenda, fundo do olho) [12]
Gasometria ao despertar, oximetria e capnografia do sono, polissonografia Hipoventilação e apneias do sono Apneias no lactente ou sono de má qualidade [12]
Cromatografia dos aminoácidos e dos ácidos orgânicos, amoniemia, perfil de acilcarnitinas, lactato Aminoacidopatias e acidúrias orgânicas, defeitos do ciclo da ureia e da β-oxidação, doença mitocondrial Contexto clínico sugestivo de doença metabólica [12]

Nos defeitos de aminoacil-tRNA sintetases e nas doenças do processamento dos ácidos nucleicos não há marcadores metabólicos específicos, e o diagnóstico é molecular [63, 150]. A dosagem plasmática de InsP6 na PCH16 é um método de investigação [151].

5.4. Estratégia de teste genético

Perante um lactente com padrão em «libélula», disfagia e doença do movimento extrapiramidal, a pesquisa da variante TSEN54 c.919G>T deve ser feita prontamente, porque é de longe a mais frequente [4, 8]. Fora deste cenário, os painéis dirigidos ficam rapidamente desatualizados e alguns painéis de hipoplasia cerebelar não incluem TSEN54 ou EXOSC3 [4, 8, 9]. Na PCH radiológica, a coorte de Zakaria e colaboradores identificou etiologia em 68% (cromossómica 21%, monogénica 34%, adquirida 13%) e recomenda microarray cromossómico associado a exoma ou painel multigénico [13]. Na suspeita de MICPCH, o teste de gene único raramente é útil; recomenda-se painel de deficiência intelectual, malformação cerebral ou PCH com análise de deleções e duplicações, ou exoma/genoma, e, se nada for detetado, análise de CNV por exoma-array ou microarray; o cariótipo pode ser apropriado se a sequenciação e a análise de CNV forem negativas e a suspeita for elevada, porque duas raparigas tinham inversões equilibradas de Xp que interrompiam CASK [5, 65]. Em ascendência huterita, a pesquisa dirigida da deleção fundadora de VLDLR é o primeiro passo [10].

Gene Método Proporção de variantes patogénicas detetadas pelo método Fonte
TSEN54 Sequenciação 100% (sem deleções ou duplicações causais descritas) [8]
EXOSC3 Sequenciação; del/dup dirigida Cerca de 99%; uma deleção parcial descrita [9]
VLDLR Sequenciação; del/dup dirigida 85%; 15% [10]
CASK (probandos femininos) Sequenciação; del/dup dirigida; microarray; cariótipo Cerca de 70%; cerca de 30%; cerca de 28%; raro [5]

Estas percentagens descrevem a proporção das variantes conhecidas que cada método deteta e não a sensibilidade clínica do teste [5, 8]. Na série de Moog e colaboradores de 2011, 11 das 20 alterações CASK das novas doentes eram CNV submicroscópicas (deleções de cerca de 11 kb a 4,5 Mb e duas duplicações) [131], e na série de Burglen três das 13 alterações eram deleções Xp11.4 detetadas por hibridação genómica comparativa em microarray (array-CGH), com gravidade semelhante à das variantes intragénicas mesmo quando a deleção abrangia nove genes [58].

O PNDS francês de 2026 propõe uma estratégia sequencial [12]. Depois do diagnóstico positivo por RM e da consulta de genética com consentimento, um quadro muito sugestivo de PCH2 justifica a pesquisa da variante maioritária de TSEN54 por sequenciação de Sanger; nos restantes, prescreve-se um painel NGS dirigido que inclui os genes dos 17 tipos, CASK, SPTAN1, VLDLR e os genes das tubulinopatias, com rendimento próximo de 60% na coorte de 260 doentes do centro de referência. Perante painel negativo e diferenciais afastados, ou de imediato num quadro muito atípico, segue-se exoma ou genoma em trio com pesquisa de CNV; o genoma deteta também os grandes rearranjos estruturais e, se a análise pangenómica não tiver avaliado as variantes estruturais, faz-se microarray cromossómico. O resultado é entregue em consulta, e um painel conclusivo pode exigir estudos complementares (segregação nos pais, validação por análise do transcrito) e informação sobre o diagnóstico pré-natal. Segundo o protocolo, o diagnóstico molecular é conclusivo em mais de 70% dos doentes em França [12]. Esta estratégia difere da proposta de Zakaria e colaboradores, que recomendam microarray associado a exoma ou painel desde o início, e do GeneReviews da CASK, que prefere painel com CNV ou exoma/genoma; a diferença reflete as populações estudadas (PCH radiológica de qualquer causa no Canadá; coorte de centro de referência com predomínio de CASK e TSEN54 em França) [5, 12, 13].

5.5. Limites dos testes

Um resultado negativo não exclui o diagnóstico. A sequenciação de leituras curtas tem dificuldade nos loci com parálogos, como o agrupamento ATAD3, em que a deleção recorrente dos exões 3–4 e as variantes pontuais exigem análise dirigida de sequência e de CNV [6]. As variantes intrónicas profundas escapam ao exoma: a variante fundadora de CDK5RAP3, que ativa um dador críptico com inclusão de um pseudoexão e NMD, só foi detetada por genoma com sequenciação de RNA ou reanálise do exoma [91]. A análise de CNV é obrigatória na CASK e as grandes deleções podem incluir genes adjacentes cujos pontos de quebra a del/dup dirigida não deteta [5]. O mosaicismo somático ocorre nos rapazes com MICPCH (três de oito rapazes novos na série de Moog de 2015, e o rapaz com variante sem sentido em linfócitos e mucosa jugal na série de Burglen), e o sangue parental negativo não exclui mosaicismo parental [5, 58, 95]. As variantes de novo são raras nas doenças recessivas, mas existem; por isso recomenda-se testar os progenitores para confirmar a fase [8]. A reanálise do exoma aumenta o rendimento, como mostrou o segundo caso de PCH15 numa coorte de suspeita de doença mitocondrial [53], e as variantes em genes novos beneficiam da partilha em plataformas como o GeneMatcher [4].

5.6. Conteúdo do relatório, VUS e segregação

O relatório deve identificar o gene, o transcrito com versão (MANE Select, com a correspondência para o transcrito histórico quando a literatura usa outro, como na CASK e na TBC1D23), a nomenclatura HGVS c. e p., a zigosidade, a fase confirmada nos progenitores e a classe ACMG/AMP [8, 81]. Nas VUS, a segregação familiar, a concordância do fenótipo com o padrão de imagem do subtipo e, nalguns genes, estudos funcionais de investigação (salto de exão, redução do complexo do exossoma por eletroforese nativa, aminoacilação) ajudam a reclassificar [19, 63, 116]. Uma variante em TSEN54 ou EXOSC3 sem o segundo alelo não deve ser interpretada como diagnóstico.

5.7. Algoritmo prático

Passo Cenário Ação Fonte
1 Suspeita clínica (microcefalia progressiva, atraso grave, disfagia, doença do movimento, hipotonia com fraqueza, ataxia congénita) RM cerebral revista por neurorradiologista; excluir prematuridade extrema e lesão adquirida [4, 62]
2 «Libélula» com disfagia e coreia/distonia Pesquisa de TSEN54 c.919G>T; se heterozigótica, sequenciar o gene [4, 8]
3 Hipotonia, fraqueza e sinais de neurónio motor inferior SMN1; EMG; EXOSC3 p.(Gly31Ala) em ascendência cigana; exoma [9, 14]
4 Rapariga com microcefalia progressiva e PCH «em borboleta» sem coreia CASK por sequenciação com CNV; microarray; cariótipo se negativo [5, 58]
5 Ataxia não progressiva com giros simplificados VLDLR (dirigida em huteritas); painel de ataxias congénitas ou exoma [10]
6 Restantes PCH radiológicas Microarray e exoma ou genoma com CNV; trio sempre que possível [13]
7 Negativo com suspeita mantida Genoma com RNA-seq, reanálise periódica, avaliação de mosaicismo; exames orientados pelo fenótipo (tabela 5.3) [5, 53, 91]
8 Variante identificada Confirmar fase nos progenitores; aconselhamento genético; vigilância específica do subtipo [8, 9]

O PNDS francês acrescenta uma árvore de orientação clínica, que ajuda a interpretar o resultado genético à luz da clínica e da imagem [12].

Achado de orientação Genes a considerar primeiro Fonte
Perímetro cefálico inferior a −3 DP com envolvimento do corno anterior EXOSC3, EXOSC8, EXOSC9, RARS2, TSEN54 [12]
Perímetro cefálico inferior a −4 DP sem envolvimento do corno anterior, com movimentos anormais TSEN54; TSEN34, TSEN2, TSEN15 [12]
Perímetro cefálico inferior a −4 DP sem envolvimento do corno anterior, raparigas muito mais do que rapazes, surdez, anomalias oftalmológicas CASK [12]
Anomalias dos núcleos da base, com ou sem anomalia da giração Genes das tubulinopatias [12]
Perímetro cefálico normal com vérmis displásico VLDLR [12]
Outros genes, conforme a clínica CHMP1A, CLP1, SPTAN1, MINPP1, PRDM13, COASY [12]
Diferenciais a discutir Distrofias musculares congénitas (CK), anomalias cromossómicas, CDG, doenças mitocondriais, lesões hemorrágicas [12]

5.8. Diagnóstico pré-natal e pré-implantação

Com as variantes familiares identificadas, o diagnóstico pré-natal por biópsia das vilosidades coriónicas ou amniocentese e o teste genético pré-implantação (DGPI) são possíveis [1, 8, 62]. Sem variante conhecida, o diagnóstico de hipoplasia cerebelar por ecografia precoce não é fiável: o vérmis só completa o desenvolvimento às 17–18 semanas, é comum um vérmis incompleto às 15–16 semanas e a malformação de Dandy-Walker não deve ser diagnosticada antes das 18 semanas [62, 147]. Na coorte de 116 fetos com malformações da fossa posterior na RM fetal (Montreal), a hipoplasia cerebelar foi o achado estrutural mais frequente (33%), a concordância entre RM fetal e imagem pós-natal foi de 51% (69% excluindo as lesões só com LCR), quatro fetos com hipoplasia cerebelar tinham imagem pós-natal normal e o teste genético foi positivo em 24% dos testados [152]. Na PCH2A, só uma de três RM fetais (às 31 semanas) mostrou hipoplasia cerebelar clara [109]. A RM fetal levou ao diagnóstico pré-natal de hipoplasia cerebelar por VLDLR num caso publicado [153], e a hipoplasia cerebelar grave na ecografia e na RM fetal de duas gestações de um casal consanguíneo paquistanês conduziu, após fetopatologia, ao diagnóstico de PCH12 [126].

O PNDS francês sistematiza a abordagem pré-natal [12]. Fora de um contexto familiar, o rastreio assenta na medição do diâmetro transverso do cerebelo, recomendada pela Conferência Nacional de Ecografia Obstétrica e Fetal (CNEOF) no 2.º (cerca das 22 semanas) e no 3.º trimestre (cerca das 32 semanas), e no aspeto invulgar do cerebelo ou dos espaços líquidos da fossa posterior; um achado anómalo leva a ecografia de diagnóstico e, se necessário, a RM fetal. Os sinais procurados são a hipoplasia e/ou atrofia do cerebelo, por vezes predominante nos hemisférios com aspeto de «libélula» nos cortes coronais, e a redução do diâmetro anteroposterior da ponte; mais raramente, acinesia fetal, artrogripose, hidrâmnio e restrição de crescimento intrauterino. As curvas de referência antes das 24 semanas são menos fiáveis, o que obriga a prudência e a repetir as ecografias, e mesmo em mãos experientes ocorrem falsos positivos e falsos negativos. Muitas PCH não são visíveis antes do nascimento, mesmo por RM, sobretudo as formas neurodegenerativas, porque o cerebelo cresce muito no último trimestre: no estudo de Steinlin e colaboradores (2007) com 24 crianças com PCH2, as ecografias das 22 semanas e, em duas, a RM da segunda metade da gravidez não mostraram anomalias. Com antecedente familiar e sem variante conhecida, oferecem-se ecografias de referência e RM fetal às 32 semanas se as ecografias forem normais, ou a partir das 26 semanas perante sinal ecográfico, sabendo que muitas etiologias escapam a esta vigilância [12]. Após interrupção médica da gravidez, o exame neuropatológico pode precisar a malformação e conduzir ao diagnóstico [12]. O PNDS situa o diagnóstico pré-natal de PCH, em média, às 27 semanas, citando a série de Jaillard e colaboradores; nessa série monocêntrica parisiense de 42 fetos com PCH confirmada (27 referenciados por diâmetro transverso do cerebelo diminuído no rastreio), a neurossonografia e a RM fetal foram feitas em média às 29 semanas e 4 dias e às 31 semanas, houve interrupção da gravidez em 24, a neuropatologia confirmou o diagnóstico em 24 e o estudo genético identificou alterações em 29 (28 famílias), das quais 14 cromossómicas; as PCH clássicas associavam-se a atrofia pontina e a medidas que diminuíam com o avanço da idade gestacional [12, 154].

6. Diagnóstico Diferencial

6.1. Tabela comparativa

Entidade Gene(s) Herança Traços distintivos Teste discriminante Fonte
AME tipo 1 (5q) SMN1 AR Fraqueza do nascimento aos 6 meses, cognição normal, RM normal Deleção de SMN1; RM sem PCH [9]
Síndrome de Joubert e ciliopatias AHI1, CPLANE1, CC2D2A, CEP290 e cerca de 34 genes AR Sinal do dente molar; hiperpneia/apneia episódica, apraxia oculomotora, distrofia retiniana, doença renal, fibrose hepática, polidactilia RM com dente molar; painel de ciliopatias [10, 62]
Malformação de Dandy-Walker e fossa posterior alargada Heterogénea Maioria não mendeliana; recorrência 1–5% Vérmis mais afetado do que os hemisférios; fossa posterior grande RM [4, 62, 147]
PMM2-CDG e outros CDG PMM2 e mais de 40 genes AR (XL) Falência multiorgânica neonatal, dismorfia, mamilos invertidos, distribuição anómala da gordura; PCH com atrofia sobreposta e atraso de mielinização; na PMM2-CDG, ataxia reconhecível a partir dos 7 meses e atrofia cerebelar e pontina que pode surgir sobretudo após episódios de agravamento agudo Focagem isoelétrica das transferrinas [4, 62, 155, 156]
Distrofias por alfa-distroglicano (Walker-Warburg, músculo-olho-cérebro, Fukuyama) POMT1, POMT2, POMGNT1, LARGE1, FKTN, FKRP, ISPD e outros (14 genes) AR Fraqueza com CK elevada, anomalias oftalmológicas; lisencefalia em calçada, hidrocefalia; na síndrome de Walker-Warburg, malformação cerebelar em 100% (superfície polimicrogírica ou lisa, hipoplasia do vérmis) e malformação de Dandy-Walker em 53% CK; RM; painel [4, 8, 157]
Lisencefalia com hipoplasia cerebelar e tubulinopatias TUBA1A, TUBB2B, TUBB3, TUBB, TUBA8; RELN; VLDLR AD de novo (tubulinas); AR (RELN, VLDLR, TUBA8) TUBA1A em cerca de 30% das lisencefalias com hipoplasia cerebelar, gânglios da base dismórficos; RELN com vérmis sem foliação e hipocampo malformado RM (córtex); painel de malformações corticais [4, 10, 158]
Displasia cortical com PCH por TUBB3 TUBB3 AD Malformação cortical com PCH Sequenciação [3, 158]
Hoyeraal-Hreidarsson ligada ao X DKC1 XL Restrição de crescimento intrauterino, falência medular, imunodeficiência, disqueratose; hiperintensidades do tronco e tálamo, calcificações Hemograma; genética [4, 62]
Ataxia espinocerebelar pediátrica e síndrome de Gillespie ITPR1, ATXN7, ATXN2 AD Progresso do desenvolvimento, sem atrofia supratentorial; Gillespie com hipoplasia da íris e ataxia não progressiva Exame oftalmológico; genética [4, 62]
Prematuridade extrema — Adquirida Idade gestacional inferior a 28–32 semanas, lesão hemorrágica ou isquémica, curso não progressivo História perinatal; RM [4, 73, 159, 160]
Infeção congénita por citomegalovírus — Adquirida Calcificações intracranianas sobretudo periventriculares, pseudoquistos periventriculares, polimicrogiria e hipoplasia cerebelar; coriorretinite; perda auditiva PCR de ADN de CMV na urina ou na saliva nas primeiras 3 semanas de vida [161]
Causas cromossómicas de PCH radiológica Várias CNV Variável 21% da PCH radiológica numa coorte canadiana; na trissomia 18, a hipoplasia cerebelar ocorre numa pequena parcela dos doentes, a par de polimicrogiria e agenesia do corpo caloso Microarray; cariótipo [13, 162]
Síndrome de Ohtahara e encefalopatias epiléticas precoces ARX, STXBP1 e mais de 80 genes XL, AD Surto-supressão; RM normal ou alterada Painel de epilepsia; CASK nos rapazes com PCH [5]
Síndrome de Allan-Herndon-Dudley SLC16A2 XL Deficiência intelectual grave, microcefalia, espasticidade, distonia, nistagmo em alguns Genética [5]
Síndrome PEHO e semelhantes VPS53 (alélica), ZNHIT3 AR Edema, hipsarritmia, atrofia ótica, atrofia cerebelar progressiva (e não hipoplasia) RM seriada; genética [58, 102, 163]
Síndrome de Galloway-Mowat YRDC, GON7, LAGE3, OSGEP, TP53RK, TPRKB, WDR4 AR Atrofia cerebelar, síndrome nefrótico corticorresistente precoce Proteinúria; genética [63, 150]
Hipoplasia cerebelar com esclerose endosteal POLR3B AR Esclerose endosteal; sobreposição com leucodistrofia 4H Radiografia; RM [63]
Síndrome esclerosteo-cerebelar — AR Displasia óssea esclerosante com hipoplasia cerebelar Radiografia do esqueleto [164]
Macrocefalia com hipoplasia cerebelar progressiva SNX14; PIGT, PIGG (âncora GPI) AR Macrocefalia (rara nas PCH) Fosfatase alcalina; genética [62]
Ataxias com atrofia cerebelar de início precoce ATCAY, ATM, SACS, SIL1, TWNK AR Cayman (isolado de Grand Cayman); ataxia-telangiectasia (telangiectasias, imunodeficiência); ARSACS (atrofia do vérmis superior, neuropatia); Marinesco-Sjögren (cataratas); SCA infantil por TWNK (surdez, oftalmoplegia) Exame oftalmológico; RM; genética [10]
Neurodegenerescência infantil com atrofia cerebelar (CONDCA) AGTPBP1 AR Atrofia cerebelar; não pertence à numeração PCH Genética [2]
Doença associada a PLA2G6 (PLAN) PLA2G6 AR Distrofia neuroaxonal infantil com início entre os 6 e os 36 meses (regressão, hipotonia seguida de espasticidade, défice visual, morte antes dos 10 anos); apresentação como PCH1 com degenerescência do corno anterior descrita em dois irmãos, com redução do vérmis e dos hemisférios cerebelosos sem acumulação de ferro RM; genética [165]
Doenças mitocondriais RARS2 e outros AR, materna Acidose láctica, envolvimento de outros órgãos, atrofia cerebelar Lactato; estudos mitocondriais [62, 166]
Microcefalia com crises por PNKP PNKP AR Forma grave com perda de substância branca, PCH e microlisencefalia (2 de 27) Genética [167]
Neuroferritinopatia de início tardio com PCH FTH1 AD de novo PCH estável com deterioração na vida adulta e ferro nos núcleos da base RM; genética [7]
Síndromes letais fetais com PCH CDK5RAP3, ATAD3A, COASY AR Acinesia fetal, artrogripose; hepatopatia (CDK5RAP3); na sequência de acinesia fetal, polimicrogiria perisilviana com hipoplasia cerebelar por variantes bialélicas de PI4KA Genoma e RNA-seq; CNV do agrupamento ATAD3 [6, 48, 91, 168]
PCH com cataratas MED29 AR Cataratas, microcefalia grave Exame oftalmológico; genética [90]
PCH do neurodesenvolvimento por SPTAN1 SPTAN1 AD (de novo) Encefalopatia grave, epilepsia frequente; imagem variável (hipomielinização, atrofia cerebelo-cerebral progressiva) Painel PCH ou de epilepsia; exoma [12]
Síndromes com PCH não cardinal DYRK1A, PPP2CA; síndrome cérebro-óculo-fácio-esquelética (COFS) AD de novo (DYRK1A, PPP2CA); AR (COFS) Hipoplasia da ponte e do cerebelo observada com frequência não desprezável, dentro de um quadro sindrómico Exoma ou genoma [12]
Malformações predominantes do tronco cerebral — Variável Displasia tegmentar pontina em capuz (cap dysplasia), síndrome de Irahara RM [12]
Outras anomalias cromossómicas com envolvimento da fossa posterior Deleções do cromossoma 5, deleção 19p13.12 Variável Envolvimento frequente da fossa posterior Microarray; genoma [12]
Acidentes isquémico-hemorrágicos pré-natais — Adquirida Hemossiderina residual de hemorragia antiga RM com T2* ou SWI [12]
Ribossomopatia ligada ao X RPL10 XL Deficiência intelectual, microcefalia, hipoplasia cerebelar, displasia espondiloepifisária Genética [63]

6.2. Diferenciais principais

O primeiro diferencial clínico é a AME 5q, porque a PCH1 se apresenta como uma AME tipo 1. A cognição normal, a RM normal e a deleção de SMN1 distinguem a AME; na população cigana búlgara, a EXOSC3 p.(Gly31Ala) homozigótica explicou 14 doentes, três quartos de todos os casos ciganos de AME sem deleção de SMN1 [9, 14]. Dentro da classe, a PCH1 distingue-se da PCH2 pelo envolvimento do corno anterior e pela ponte que pode estar normal, enquanto na PCH2 a medula é normal e a ponte está atenuada; os sinais motores centrais de uma criança com EXOSC3 e RM típica podem sugerir falsamente uma PCH2 [9]. A tabela de diferencial do GeneReviews EXOSC3 descreve a TSEN54-PCH como «PCH grave com preservação relativa da ponte», em contradição com o GeneReviews TSEN54, que descreve atrofia pontina ventral na maioria; a leitura coerente com as restantes fontes é a de preservação relativa do vérmis [4, 8, 9]. As duas revisões do GeneReviews divergem também quanto à imagem da PCH8, descrita como semelhante à da PCH2 numa e à da PCH1B na outra; van Dijk e colaboradores descrevem PCH profunda com corpo caloso fino mas completo e sem progressão [4, 8, 9].

A MICPCH é a segunda causa mais frequente de PCH no centro de referência francês (13 de 40 doentes, 32%, depois de 18 de 40 com PCH2/PCH4) e distingue-se da PCH1 pela ausência de doença do neurónio motor e da PCH2 pela ausência de coreia, pela dismorfia (face redonda, queixo pequeno, ponte nasal larga), pela surdez neurossensorial e pelas anomalias oftalmológicas; o padrão de imagem é «em borboleta», com vérmis que não sobressai entre os hemisférios [4, 5, 58]. O rapaz hemizigótico grave da série de Burglen lembrava a síndrome PEHO, mas uma PCH grave, e não uma atrofia cerebelar progressiva, deve fazer pesquisar CASK [58]. O PNDS francês acrescenta, a favor de CASK numa rapariga, os défices neurossensoriais (retinopatia, atrofia ótica, glaucoma, megalocórnea, surdez) e a face redonda com sobrancelhas bem desenhadas e raiz nasal larga e, num rapaz, um quadro muito grave desde o início com epilepsia, atrofia ótica e PCH marcada; nos casos duvidosos, recomenda a pesquisa da variante maioritária de TSEN54 ou o painel PCH [12]. Para as formas ligeiras de genes PCH (EXOSC3 p.(Asp132Ala) homozigótica, TSEN54 com ataxia cerebelosa, SEPSECS sem polideficiência, variantes missense de CASK), o protocolo remete para o PNDS francês das ataxias congénitas [12]. A VLDLR-CH distingue-se das PCH1 e PCH2 pela hipoplasia pontina mais ligeira, pela ataxia não progressiva com sobrevida longa e pela simplificação dos giros [10]. Como a hipoplasia é difícil de distinguir da atrofia nas imagens precoces, as ataxias com atrofia cerebelar de início na infância também entram no diferencial [10].

Nas fenocópias adquiridas, a PCH do grande prematuro resulta do crescimento cerebelar muito rápido no terceiro trimestre, que torna o cerebelo vulnerável a lesões isquémicas ou hemorrágicas e ao subdesenvolvimento, também por via de lesões supratentoriais através das vias córtico-cerebelares; associa-se a défice motor e cognitivo e, com envolvimento do vérmis, a traços autistas, e não é progressiva [4, 73, 160]. A lista de diferenciais da Orphanet acrescenta a atrofia cerebelo-cerebral progressiva, a atrofia cerebral e cerebelar infantil, o défice de fosfosserina aminotransferase, a fibrose congénita dos músculos extraoculares tipo 3 e as lisencefalias com córtex de duas camadas, microcefalia extrema e hipoplasia cerebelar e pontina [1, 8, 169]. A hipoplasia cerebelar isolada global é uma anomalia morfológica sem gene definido, e a deficiência intelectual por OPHN1 deve ser considerada nos rapazes com hipoplasia vermiana e cisterna magna dilatada [3, 61].

7. Tratamentos e Estratégias de Gestão de Risco

7.1. Princípios e avaliação após o diagnóstico

Não existe tratamento curativo nem modificador da doença para nenhuma PCH, MICPCH ou CAMRQ; a gestão é sintomática, multidisciplinar e dirigida a maximizar a função e reduzir as complicações [4, 5, 8, 63]. Não existe diretriz de sociedade científica internacional específica para as PCH. O primeiro protocolo nacional dedicado é o PNDS francês publicado pela HAS em setembro de 2026, elaborado pelo centro de referência de malformações e doenças congénitas do cerebelo segundo o método da HAS, com base na literatura e na experiência do centro; recomenda uma abordagem precoce e pluridisciplinar, reconhecendo que nenhum estudo provou formalmente a sua eficácia [12]. As restantes recomendações provêm dos capítulos do GeneReviews, da coorte de história natural da PCH2A e de diretrizes de condições análogas, sobretudo a paralisia cerebral, cuja aplicação às PCH constitui extrapolação [8, 15, 170, 171]. A Orphanet resume o tratamento como medicação para a distonia, a discinesia e as crises, alimentação por gastrostomia endoscópica percutânea e, por vezes, suporte respiratório [1].

Domínio Avaliação após o diagnóstico Entidades Fonte
Crescimento Comprimento, peso, perímetro cefálico; curvas específicas na PCH2A Todas [8, 110]
Alimentação e deglutição Equipa de gastroenterologia, nutrição e alimentação; segurança da via oral versus gastrostomia; risco de aspiração Todas [5, 8, 9]
Respiratório Via aérea, função pulmonar, gestão de secreções; pneumologia; estudo do sono para apneia PCH2, PCH1, PCH4 [8, 9]
Neurológico Neuropediatria: clónus, coreia, espasticidade, crises com EEG, défice visual central; RM Todas [5, 9, 10]
Desenvolvimento e comportamento Motor, adaptativo, cognitivo, linguagem; após os 12 meses, sono, perturbação de hiperatividade e défice de atenção (PHDA), ansiedade, traços de PEA MICPCH, CAMRQ [5, 10]
Musculoesquelético Consulta neuromuscular multidisciplinar: contraturas, pé boto, cifoescoliose, anca, dispositivos de posicionamento Todas [5, 8]
Visão e audição Oftalmologia pediátrica (acuidade, fundo, nervo ótico, estrabismo); audiologia PCH1, MICPCH, CAMRQ [5, 9, 10]
Coração e rim Ecocardiograma e ecografia renal; função renal e pressão arterial quando há risco de MAT MICPCH; PCH1B, PCH2B/TRACK [5, 26, 114]
Avaliação inicial segundo o PNDS Ecografias abdominal, renal e cardíaca; oftalmologia completa (acuidade, oculomotricidade, lâmpada de fenda, fundo do olho, eletrorretinograma se indicado); audição; análises de base; pesquisa de hipoventilação do sono; avaliação nutricional, da deglutição, do refluxo e do trânsito Todas [12]
Cognição e comportamento adaptativo Escala de Brunet-Lézine, Bayley III ou IV, PEP-3 e, nas formas menos graves, WPPSI-IV; Vineland II e DABS; na polideficiência, escala ECP (Évaluation–Cognition–Polyhandicap) Todas [12]
Avaliação social Situação familiar, prestações sociais e, no adulto, proteção jurídica Todas [12]
Genética e família Aconselhamento genético com heredograma; apoio familiar, serviço social, enfermagem domiciliária; cuidados paliativos quando a família o considere apropriado Todas [8, 9]

Segundo o PNDS, o anúncio deve ser feito, se possível, aos dois pais, pelo médico de referência (habitualmente neuropediatra ou neurogeneticista) depois da identificação da PCH na RM, explicando os sintomas e a malformação da fossa posterior e propondo o estudo genético; num segundo tempo, explicam-se os riscos de complicações nutricionais, ortopédicas e respiratórias, a necessidade de avaliação inicial e de vigilância próxima, a variabilidade do prognóstico e a ausência de tratamento curativo [12]. O protocolo privilegia o hospital de dia ou o internamento programado, para concentrar as consultas pluridisciplinares e limitar as deslocações de doentes frágeis, e um projeto de cuidados com síntese médica comum dirigida ao médico assistente e à estrutura médico-educativa, que descreve o estado atual, os fármacos e a sua vigilância e os pontos de alerta [12].

7.2. Alimentação, refluxo e crescimento

As dificuldades alimentares estão presentes em todas as crianças com PCH2A, começam nos primeiros 6 meses e raramente cessam; na coorte de 33 doentes, 22 fizeram gastrostomia endoscópica percutânea (idade média de 3 anos e 8 meses), 31 tinham vómitos excessivos, 24 tinham DRGE diagnosticada, 18 tomavam um inibidor da bomba de protões (IBP) e 12 fizeram fundoplicatura de Nissen (idade média de 4 anos e 7 meses) [15]. Os autores recomendam reconhecer e tratar cedo a DRGE, e a melhoria das crises distónicas em dois doentes com o aumento da dose de IBP sugere uma ligação ao refluxo [15]. A modificação da consistência dos alimentos, a sonda nasogástrica e a gastrostomia reduzem a aspiração [8, 9]. Na MICPCH, o limiar para avaliação clínica da alimentação ou estudo radiológico da deglutição deve ser baixo perante engasgos, ganho ponderal pobre, infeções respiratórias frequentes ou recusa alimentar, e os alimentos espessados ou frios podem ajudar [5]. Na PCH2A, a falência do crescimento ocorre apesar de uma ingestão calórica dentro ou acima dos valores de referência, pelo que as curvas específicas evitam interpretar como desnutrição um crescimento esperado e evitam a sobrealimentação [110]. O omeprazol (Prilosec®, nos EUA) está aprovado pela FDA na DRGE sintomática dos 1 aos 16 anos em dose por peso, uma vez por dia (tabela 7.10) [172]. A obstipação é frequente e faz parte da vigilância gastrointestinal [8, 58].

O PNDS francês recomenda rastrear e tratar as perturbações digestivas durante toda a vida [12]. As perturbações da deglutição detetam-se pela entrevista da família e, quando útil, por nasofibroscopia ou videofluoroscopia; a prevenção assenta na terapia da fala, na adaptação da textura dos alimentos e da hidratação e no posicionamento à refeição, e as aspirações diárias podem levar à suspensão da via oral e à alimentação entérica, com reavaliação regular no adulto. O refluxo, tanto mais frequente quanto maior a hipotonia e muitas vezes pouco sintomático, justifica uma prova terapêutica com IBP em primeira linha; os exames (trânsito esófago-gastroduodenal, pH-metria, endoscopia) reservam-se para a falência, as situações complexas e a preparação da gastrostomia, antes da qual se pesquisa o refluxo para decidir a necessidade de montagem antirrefluxo. O estado nutricional avalia-se pelo peso, pela prega cutânea tricipital, pela circunferência braquial e pelo IMC, respeitando o equilíbrio próprio de cada pessoa, e a correção progride do enriquecimento alimentar orientado por dietista para os suplementos e para a alimentação entérica de complemento ou exclusiva. A obstipação, favorecida pela imobilidade, pela hipotonia axial, pela hidratação insuficiente, pela escoliose e por fármacos, pode chegar à oclusão; previne-se com fibras, hidratação, mobilização e verticalização e laxantes diários, com enemas ou irrigações retais se necessário. A gastrostomia exige seguimento específico pelo menos uma vez por ano. A consulta de gastroenterologia justifica-se perante estagnação ponderal superior a 6 meses com desnutrição grave, perturbações graves e precoces da sucção-deglutição com sonda nasogástrica e depois gastrostomia, refluxo resistente aos IBP, aspirações ou complicações respiratórias que levem a discutir gastrostomia e obstipação resistente aos tratamentos habituais [12].

7.3. Respiração, apneia e sono

A apneia do sono é frequente e potencialmente fatal na PCH2A, pode levar a morte súbita e é detetável pela monitorização do sono [4]. Na coorte de 33 doentes, 22 tinham apneias, sobretudo noturnas (duas a quatro por noite), a estimulação tátil era geralmente suficiente, 13 eram monitorizados por oximetria e 5 fizeram traqueostomia (idade média de 7 anos); as cinco mortes súbitas noturnas e uma morte por crise com apneia fazem da apneia a causa de morte mais provável, provavelmente subdiagnosticada porque só 13 de 22 eram monitorizados [15]. Nas PCH4 e PCH5, o suporte respiratório é habitualmente limitado no tempo e o desmame só é possível por períodos curtos [8]. As infeções respiratórias de repetição, incluindo pneumonias de aspiração, motivam cerca de dois internamentos por ano na PCH2A [15]. A perturbação do sono atinge 96% das crianças com PCH2A (latência média de 70 minutos e três despertares por noite) e é frequente na MICPCH [5, 15, 135]. A melatonina de libertação prolongada (Slenyto®) está autorizada na UE na insónia de crianças e adolescentes dos 2 aos 18 anos com PEA e/ou doenças neurogenéticas com secreção diurna aberrante de melatonina e/ou despertares noturnos, quando a higiene do sono é insuficiente; o uso nas PCH enquadra-se por extrapolação nessa categoria [173].

No PNDS francês, a morbilidade respiratória é proporcional ao grau de atingimento neuromotor e constitui a primeira causa de morte na polideficiência [12]. A avaliação pneumológica orienta a prevenção: relaxador de pressão para insuflação (Alpha 300), aparelho de insuflação-exsuflação mecânica (cough assist), protocolos de antibioterapia e de salbutamol e cinesiterapia respiratória; a prevenção geral inclui o posicionamento contra as aspirações, a vigilância da escoliose, que agrava a síndrome restritiva, a evicção de fármacos que aumentam as secreções e a vacinação, incluindo a da gripe. Na descompensação aguda, o internamento segue um projeto de cuidados definido antecipadamente, e o seguimento pneumológico é pelo menos anual a partir do momento em que surgem sintomas respiratórios; a consulta impõe-se perante pneumonias de deglutição ou de aspiração de repetição, insuficiência respiratória crónica por deformação toracovertebral ou congestão brônquica crónica resistente, e inclui a pesquisa de perturbação da deglutição, de refluxo e de SAOS [12]. A suspeita de hipoventilação do sono leva a consulta do sono com gasometria ao despertar, oximetria e capnografia noturnas ou polissonografia [12].

7.4. Epilepsia

As crises devem ser tratadas por neurologista com experiência em epilepsia, segundo a prática padrão; muitos antiepiléticos podem ser eficazes, mas nenhum demonstrou eficácia específica nestas doenças [5, 8]. Na PCH2A as crises são difíceis de tratar, mas a resposta foi relativamente favorável ao fenobarbital e ao topiramato [4, 15].

Antiepilético (PCH2A) Doentes tratados Doentes com redução da frequência das crises
Fenobarbital 15 11
Topiramato 7 6
Valproato de sódio 6 3
Levetiracetam 8 2
Carbamazepina 3 2
Sultiamo 4 2
Clobazam 6 1
Lamotrigina 3 1
Oxcarbazepina 4 1
Vigabatrina 3 1

Fonte: Sánchez-Albisua e colaboradores, tabela 1, apenas fármacos usados em mais de dois doentes [15]. Os dados provêm de relato parental e registos, sem grupo de controlo, sem definição uniforme de resposta e com denominadores pequenos; não permitem hierarquizar os fármacos, apenas orientar a escolha inicial. Dos 25 doentes tratados, 15 recebiam dois ou mais fármacos e só 3 estavam livres de crises [15].

Os antiepiléticos não têm dose específica para as PCH; as doses da tabela 7.10 provêm dos rótulos das indicações aprovadas, e o uso nas PCH é extrapolação. O fenobarbital oral tem, na suspensão oral autorizada no Reino Unido, indicação em todas as formas de epilepsia exceto as ausências, em crianças e adultos, com dose diária por escalão de peso [174]; nos EUA, o único rótulo FDA de fenobarbital (Sezaby®, intravenoso) restringe-se às crises neonatais, e o fenobarbital oral é comercializado sem aprovação da FDA [175]. O topiramato está aprovado a partir dos 2 anos em monoterapia e terapêutica adjuvante [176]. O levetiracetam está aprovado nas crises focais a partir de 1 mês [177]. A vigabatrina, aprovada nos espasmos infantis dos 1 mês aos 2 anos, tem advertência em caixa de perda visual bilateral permanente por constrição concêntrica dos campos visuais, relevante em doentes com défice visual prévio (PCH1, MICPCH) [178]; a síndrome de West está descrita na MICPCH [58]. O valproato está contraindicado nas doenças mitocondriais por POLG e nas crianças com menos de 2 anos com suspeita de doença relacionada com POLG; o risco de hepatotoxicidade fatal é consideravelmente maior abaixo dos 2 anos, sobretudo com politerapia, doenças metabólicas congénitas e epilepsia grave, o que obriga a provas hepáticas antes do início e a intervalos frequentes, e recomenda precaução na PCH6 e nas outras formas com disfunção mitocondrial [179]. O clobazam associado a opioides pode causar sedação profunda e depressão respiratória [180].

O estado de mal epilético ocorreu em 39% das crianças com PCH2A, pelo que cada doente com epilepsia deve ter um plano escrito de emergência [15]. O midazolam bucal (Buccolam®) está autorizado na UE para crises convulsivas agudas prolongadas a partir dos 3 meses em doentes com diagnóstico de epilepsia, sendo administrado em meio hospitalar entre os 3 e os 6 meses; o cuidador administra uma dose e chama a emergência se a crise não parar em 10 minutos; a associação a outros antiepiléticos pode aumentar a sedação e a depressão respiratória [144]. O diazepam intranasal (Valtoco®) está aprovado pela FDA nas crises em salvas a partir dos 2 anos [181]. A educação dos cuidadores em epilepsia faz parte da gestão [5].

7.5. Doença do movimento, tónus e postura

A coreoatetose está presente em cerca de 90% das crianças com PCH2A e a irritabilidade, frequentemente ligada à coreia, não tem tratamento específico [4, 8]. A postura em opistótono previne-se pela flexão das grandes articulações, com cadeira de rodas ergonómica e fisioterapia [4]. As crises distónicas não epiléticas da PCH2A só terminavam com o sono natural em 8 de 11 doentes; os analgésicos e a levodopa não trouxeram benefício referido, o diazepam, o fenobarbital ou o hidrato de cloral foram parcialmente eficazes em apenas 2, e o aumento da dose de IBP melhorou 2 doentes [15]. Um doente com PCH2 melhorou as crises distónicas e a coreoatetose com levodopa, relato isolado que contrasta com a ausência de benefício na coorte [4, 15]. Na MICPCH, o GeneReviews recomenda envolver especialistas na gestão do baclofeno, da tizanidina, da toxina botulínica, de fármacos antiparkinsónicos ou de procedimentos ortopédicos para a hipertonia e a distonia [5].

A evidência sobre estes fármacos provém da paralisia cerebral. O parâmetro de prática da American Academy of Neurology e da Child Neurology Society (2010) recomenda oferecer toxina botulínica tipo A na espasticidade localizada ou segmentar dos membros (nível A), considerar o diazepam no tratamento de curta duração da espasticidade generalizada com precaução quanto à toxicidade (nível B), admitir a tizanidina (nível C) e considera os dados insuficientes para o baclofeno oral e intratecal e para o dantroleno (nível U) [170]. A revisão sistemática da American Academy for Cerebral Palsy and Developmental Medicine (AACPDM) de 2018 sobre a distonia considera o baclofeno intratecal e a estimulação cerebral profunda possivelmente eficazes (nível C), o triexifenidilo possivelmente ineficaz (nível C) e insuficiente a evidência para os fármacos orais e para a toxina botulínica, com a maior parte da gestão assente em opinião de peritos [171]. As duas fontes divergem quanto à toxina botulínica, recomendada na espasticidade e sem evidência suficiente na distonia, porque avaliam desfechos diferentes [170, 171]. O baclofeno oral está aprovado pela FDA na espasticidade da esclerose múltipla e da lesão medular em adultos, e a suspensão deve ser feita por redução lenta da dose, evitando a interrupção abrupta [182]. A tizanidina está aprovada na espasticidade do adulto e exige doseamento das aminotransferases no início e 1 mês após atingir a dose máxima [183]. A toxina botulínica tipo A (Botox®) está aprovada na espasticidade pediátrica a partir dos 2 anos e tem advertência em caixa de disseminação do efeito à distância, com disfagia e dificuldade respiratória potencialmente fatais, risco provavelmente maior nas crianças tratadas por espasticidade — um aspeto a pesar em doentes com disfagia prévia [184]. O triexifenidilo tem rótulo apenas no parkinsonismo e nos sintomas extrapiramidais induzidos por fármacos no adulto [185]. A tetrabenazina está aprovada só na coreia da doença de Huntington no adulto, e as fontes consultadas não têm dados de uso nas PCH nem dose pediátrica, pelo que a sua extrapolação não é recomendada [186]. A fisioterapia e a terapia ocupacional, os dispositivos adaptativos, os gessos e talas alternados, os alongamentos e as ortóteses previnem contraturas, pé boto, luxação da anca e escoliose, e a ortopedia intervém com ortóteses ou cirurgia [5, 8].

O PNDS francês recomenda pesquisar sistematicamente a síndrome piramidal, que pode atingir os quatro membros e o tronco e se quantifica pela escala de Ashworth modificada ou pela de Tardieu; os antiespásticos têm eficácia inconstante [12]. Perante movimentos anormais (distonia, coreoatetose, discinesias, mioclonias), o primeiro passo é confirmar por EEG que não são epiléticos e depois avaliar a frequência, a intensidade e a repercussão (incómodo, desconforto, dor); não há estudos sobre o seu tratamento nas PCH, e relatos isolados descrevem eficácia da levodopa, da tetrabenazina e das benzodiazepinas [12]. O RCM francês da tetrabenazina (Xenazine®) limita a indicação aos movimentos anormais da doença de Huntington e ao hemibalismo, com posologia definida para o adulto (titulação semanal desde 12,5 mg/dia até à dose média de 50–75 mg/dia, máximo de 200 mg/dia), eletrocardiograma antes do início e no fim da titulação e contraindicação na depressão não tratada, no risco suicidário, na insuficiência hepática e no parkinsonismo, e desaconselha o uso pediátrico por ausência de dados [187]. O médico de medicina física e reabilitação e o neuropediatra podem discutir baclofeno oral ou intratecal, toxina botulínica e cirurgia neurocirúrgica da espasticidade [12].

As deformações ortopédicas exigem consultas regulares de medicina física e reabilitação e de ortopedia [12]. Na criança, os objetivos são canalizar o crescimento, permitir posições sentada e deitada sem dor e educar os cuidadores; no adulto, melhorar o conforto, facilitar as transferências e os cuidados de higiene e reduzir as repercussões respiratórias, digestivas e cutâneas. A escoliose grave compromete o conforto, a capacidade respiratória e a digestão; a reabilitação mantém a flexibilidade raquidiana e torácica, o colete (muitas vezes do tipo Garches) trava a progressão e, se isso não bastar, discute-se a cirurgia (hastes de crescimento ou artrodese vertebral) em equipa pluridisciplinar, com o doente no melhor estado possível, correção prévia da desnutrição, tratamento de uma osteoporose quando necessário e equipas pós-operatórias treinadas. O risco de descentração e de luxação da anca aumenta com o crescimento e controla-se anualmente pela clínica e pela radiografia, adaptando a reabilitação e o posicionamento para evitar a posição luxante; as radiografias da anca e/ou da coluna fazem-se de forma anual ou semestral até ao fim da puberdade, pelo potencial evolutivo ligado ao pico de crescimento pubertário [12].

A mobilidade reduzida sem marcha aumenta o risco de osteopenia e de osteoporose, sobretudo com desnutrição, e o PNDS considera indispensável a prevenção da fragilidade óssea desde muito cedo e ao longo da vida: atividade motora em cinesiterapia, verticalização quando possível, aporte proteico e de cálcio adequado à idade e suplemento de vitamina D segundo as recomendações para pessoas com fatores de risco [12]. Os sinais de carência vitamino-cálcica, além das fraturas espontâneas, são pouco específicos (cansaço, dor óssea, perturbação do sono), e o estudo fosfocálcico, perante sinais de alerta ou de forma sistemática, orienta a prevenção; depois de uma fratura, a consulta especializada inclui densitometria e discute perfusões de bisfosfonatos [12]. O PNDS não especifica doses. O consenso francês de pediatria de 2022 recomenda, dos 0 aos 18 anos sem fatores de risco, 400 a 800 UI de vitamina D por dia e, dos 2 aos 18 anos com menor disponibilidade de vitamina D (como a falta de exposição solar), 800 a 1600 UI por dia ou, na falta de adesão, 50 000 UI a cada 6 semanas ou 80 000–100 000 UI a cada 3 meses, evitando doses únicas de 200 000 UI; inclui os antiepiléticos (carbamazepina, fenitoína, fenobarbital, topiramato) e os glucocorticoides entre os fatores de risco de défice, propõe um alvo de 25-hidroxivitamina D superior a 30 ng/ml nas doenças crónicas e recomenda 500–1000 mg/dia de cálcio suplementar quando o aporte alimentar é inferior a 300 mg/dia [188]. A aplicação às PCH é extrapolação. Os bisfosfonatos intravenosos não têm indicação pediátrica aprovada na osteoporose secundária; o guia de Ward (2023) descreve pamidronato até 9 mg/kg/ano a partir dos 3 anos (3 mg/kg divididos por 3 dias a cada 4 meses), 2,25 mg/kg a cada 3 meses dos 2 aos 3 anos e 1,5 mg/kg a cada 2 meses abaixo dos 2 anos, ou ácido zoledrónico até 0,1 mg/kg/ano (0,05 mg/kg a cada 6 meses a partir dos 2 anos; 0,025 mg/kg a cada 3 meses abaixo dos 2 anos), com hipocalcemia e hipofosfatemia frequentes após a perfusão; o uso nas PCH é extrapolação da osteoporose secundária pediátrica [189].

7.6. Termorregulação e rabdomiólise

A hipertermia sem infeção ocorreu em 60% das crianças com PCH2A e a hipotermia em 2, uma delas fatal [15]. A miopatia subclínica com CK elevada pode evoluir para rabdomiólise após infeções graves, descrita repetidamente; recomenda-se vigiar sobretudo durante as infeções e manter hidratação adequada nos períodos prolongados de febre alta [4, 8].

7.7. Sialorreia, comunicação, visão e audição

O glicopirrónio oral (Cuvposa®) está aprovado pela FDA na sialorreia crónica grave dos 3 aos 16 anos em doenças neurológicas, como a paralisia cerebral; é um anticolinérgico, e o uso nas PCH constitui extrapolação dentro desta indicação [190]. A sialorreia persistiu em 4 de 11 raparigas com MICPCH na série de Burglen [58]. A comunicação aumentativa e alternativa (CAA) deve ser avaliada por terapeuta da fala; os dispositivos de CAA não prejudicam o desenvolvimento verbal e, em muitos casos, melhoram-no [5, 10]. O estrabismo e os défices visuais seguem o tratamento oftalmológico padrão, e as próteses auditivas podem ajudar na surdez neurossensorial da MICPCH [5, 10].

No PNDS francês, a abordagem da sialorreia começa pela exclusão de uma causa iatrogénica e pela correção dos fatores favorecedores (má higiene oral, refluxo, perturbação da deglutição) [12]. Os adesivos de escopolamina, colocados atrás da orelha, reduzem a produção salivar durante 3 dias, com sonolência, espessamento das secreções brônquicas, obstipação e retenção urinária como principais efeitos adversos; as injeções bilaterais de toxina botulínica nas parótidas e nas submandibulares fazem-se sob controlo ecográfico, duram 3 a 6 meses e repetem-se se necessário; e, desde 2025, a solução oral de brometo de glicopirrónio (Sialanar®) está disponível em França, com boa eficácia e tolerância desde que a titulação seja lenta, exigindo vigilância do trânsito e do risco de retenção urinária em doses altas [12]. No ensaio SALIVA, que sustenta esta recomendação, 87 crianças e adolescentes dos 3 aos 17 anos com deficiência neurológica (43 com paralisia cerebral) e sialorreia grave foram aleatorizados para glicopirrónio 320 µg/ml ou placebo, além dos cuidados não farmacológicos; a variação mediana da pontuação total da Drooling Impact Scale ao dia 84 foi de −29,5 com glicopirrónio e de −1 com placebo (p < 0,001), a obstipação relacionada com o tratamento ocorreu em 20,5% e 16,3% e os acontecimentos adversos em 77,3% e 69,8% [191]. O RCM europeu limita o Sialanar® à sialorreia grave a partir dos 3 anos, desaconselha-o na sialorreia ligeira a moderada e recomenda uso de curta duração e intermitente por falta de dados de segurança além de 24 semanas [192]. O RCM francês da toxina incobotulínica A (Xeomin®) autoriza a sialorreia crónica de causa neurológica ou do neurodesenvolvimento dos 2 aos 17 anos com peso igual ou superior a 12 kg, com dose por peso repartida na razão 3:2 entre parótidas e submandibulares, intervalo mínimo de 16 semanas e consulta dentária no início pelo risco de cáries [193]. O RCM francês do adesivo de escopolamina (Scopoderm®) não inclui a sialorreia nas indicações (enjoo do movimento e estertores agónicos em cuidados paliativos) e contraindica-o abaixo dos 15 anos, pelo que o uso pediátrico proposto pelo PNDS é fora de indicação; o mesmo RCM refere aumento da frequência de crises em doentes epiléticos em casos isolados e obriga a retirar o adesivo antes de uma RM, por conter alumínio [194]. A avaliação sensorial segue o protocolo francês da polideficiência; o eletrorretinograma e a imagem da retina detetam atingimentos pouco sintomáticos, e a audição avalia-se no diagnóstico [12]. O seguimento oral consiste numa consulta dentária anual de rastreio, com destartarização e tratamento de cáries quando necessário, também no adulto, porque as complicações dentárias aumentam com o grau de deficiência e podem causar dor intensa revelada apenas por alterações do comportamento [12].

7.8. Manifestações específicas de subtipos

Na MAT associada a EXOSC3, o eculizumab (Soliris®), inibidor do C5 aprovado pela FDA no síndrome hemolítico-urémico atípico em adultos e crianças com dose por peso, não teve resposta numa de três crianças e as outras duas recidivaram sob tratamento; os autores descrevem uma MAT grave, precoce e resistente aos inibidores do C5 e recomendam considerar EXOSC3 (e EXOSC5) na MAT pediátrica resistente ao eculizumab com doença do neurodesenvolvimento [114, 195]. Na síndrome TRACK por TSEN2, as fontes consultadas não descrevem tratamento eficaz da microangiopatia [26]. Na PCH7 com genitais atípicos, a abordagem inclui cariótipo ou microarray, avaliação multidisciplinar das DSD, endocrinologia (gonadotrofinas, testosterona) e imagem gonadal [4, 39]. Nas formas cerebelares de PRDM13 com hipogonadismo hipogonadotrófico, a puberdade deve ser induzida por tratamento endócrino e a escoliose grave vigiada; a PCH17 tem cuidados largamente paliativos [56, 57]. Na PCH6 e nas formas com disfunção mitocondrial, aplicam-se os consensos da Mitochondrial Medicine Society sobre o diagnóstico e os padrões de cuidados na doença mitocondrial primária, que não são específicos de RARS2 [166, 196]. Na PCH14 e na PCH15 justifica-se o hemograma no diagnóstico e no seguimento, e na PCH13 as provas hepáticas [50–52]. Na SLC25A46, o modelo de gestão inclui baixa visão, fisioterapia, terapia ocupacional e ortóteses como nas neuropatias de Charcot-Marie-Tooth e, na forma PCH, suporte respiratório neonatal com cuidados paliativos [21, 22]. Nos rapazes com MICPCH grave, o ecocardiograma e a imagem renal procuram as anomalias raras do coração e do rim [5]. Na SEPSECS, os biomarcadores plasmáticos do selénio e do stress oxidativo foram propostos para monitorizar tentativas terapêuticas, sem tratamento validado [30]. O PNDS francês assinala casos muito raros de microangiopatia trombótica após infeções virais em doentes com variantes de EXOSC3 ou EXOSC5; o aumento do risco nos genes do exossoma não está demonstrado, mas deve ser comunicado para permitir uma resposta adequada se a complicação surgir [12]. As variantes de EXOSC5, que não causam PCH mas uma perturbação do neurodesenvolvimento com baixa estatura, hipomielinização e anomalia cerebelosa, associam-se a perturbações da condução cardíaca que podem exigir pacemaker; por isso, os doentes EXOSC5 devem ter avaliação cardíaca dirigida às perturbações da condução e do ritmo, e o protocolo admite propô-la aos doentes com variantes dos outros genes do exossoma, nos quais estas perturbações nunca foram descritas, até que estudos confirmem ou afastem o risco [12].

7.9. Reabilitação, educação e apoio à família

A fisioterapia maximiza a mobilidade e promove a marcha nas CAMRQ, com equipamento adaptado (cadeiras de rodas, andarilhos, cadeiras de banho, ortóteses, carrinhos adaptados), e a terapia ocupacional trabalha a motricidade fina (alimentação, higiene, vestir, escrita) [10]. A intervenção precoce e o plano educativo individual adaptam-se ao nível cognitivo; o GeneReviews descreve o enquadramento norte-americano (intervenção precoce dos 0 aos 3 anos, pré-escolar dos 3 aos 5 anos, plano educativo individual), que noutros países corresponde aos sistemas nacionais de intervenção precoce e de educação inclusiva [8, 9]. Na MICPCH, as intervenções para a PEA incluem a análise comportamental aplicada, e a pedopsiquiatria intervém na agressividade e no comportamento destrutivo [5]. O serviço social, o descanso do cuidador, a coordenação de cuidados, a enfermagem domiciliária, o desporto adaptado e a avaliação contínua das necessidades paliativas completam a gestão [5]. Os cuidados paliativos devem ser propostos quando a família e os cuidadores o considerem apropriado, e nas PCH4, PCH5, PCH12, PCH17 e PHRINL são frequentemente o objetivo principal desde o período neonatal [8, 56].

No modelo francês, a intervenção precoce faz-se num centro de ação médico-social precoce (CAMSP) ou através de uma plataforma de coordenação e orientação (PCO), coordenados por neuropediatra ou médico de medicina física e reabilitação, que definem as ajudas técnicas (colete-assento, ortóteses, carrinhos adaptados) e o ritmo das terapias [12]. A cinesiterapia reforça os músculos axiais, relaxa os periféricos e trabalha os níveis de evolução motora e a marcha com ou sem ajuda, com verticalização nos casos mais graves; a psicomotricidade trabalha as experiências sensório-motoras, a coordenação e o equilíbrio; a ergoterapia adapta o ambiente e as ajudas técnicas; a terapia da fala trata as perturbações orofaciais, da linguagem e da comunicação e aconselha as famílias sobre as refeições; a CAA é proposta em conjunto com ergoterapeuta e educador; e o psicólogo acompanha a criança e os pais [12]. As consultas devem ser longas, em locais acessíveis, com participação dos representantes legais e dos acompanhantes profissionais, que ajudam a interpretar as necessidades de doentes que raramente exprimem a sua vontade; favorecem-se as consultas pluridisciplinares, as consultas deslocalizadas nas estruturas médico-sociais com telemedicina e, em algumas regiões, as consultas dedicadas à saúde somática das pessoas com polideficiência [12]. O PNDS descreve os direitos sociais franceses: regime de doença de longa duração (ALD 30, forma grave de doença neurológica ou muscular ou epilepsia grave) com isenção da comparticipação, complementar solidária conforme os rendimentos, transporte para centro de referência ou de competência a mais de 150 km mediante pedido prévio, subsídio diário de presença parental, licença de cuidador (até 3 meses, fracionável e renovável até 1 ano), subsídio de educação da criança com deficiência e respetivos complementos, prestação de compensação da deficiência, cartão de invalidez com incapacidade igual ou superior a 80%, cartão de estacionamento e, no adulto, subsídio de adulto com deficiência e medida de proteção jurídica (tutela, curatela ou habilitação familiar) a partir dos 18 anos [12].

Na maioria das crianças com polideficiência, a abordagem é paliativa desde o início, no sentido de cuidados ativos e completos orientados para o conforto e a qualidade de vida, ajustando a cada etapa o nível de tratamento [12]. Aplica-se o enquadramento legal francês (lei Leonetti de 2005, que define a obstinação irrazoável, e lei Claeys-Leonetti de 2016, que abre o direito à sedação profunda e contínua até à morte), e as crianças com PCH enquadram-se nos grupos 3 ou 4 da classificação quebequense de 2006 das crianças com necessidade de cuidados paliativos, ou no grupo 5 (recém-nascidos com esperança de vida muito limitada). A decisão colegial de não iniciar ou de suspender um tratamento de suporte vital visa não se opor de forma irrazoável à evolução natural da doença. A ficha de urgência pediátrica do SAMU (ficha de «doente notável»), redigida por um médico que acompanha a criança, transmite o projeto de cuidados aos médicos de urgência e evita gestos desproporcionados. As equipas regionais de recursos em cuidados paliativos pediátricos (ERRSPP) atuam em segunda linha, a nível regional, na formação, na coordenação entre hospital e domicílio, no apoio às equipas, no descanso familiar e no luto, em ligação com as equipas móveis intra-hospitalares [12]. O contacto com as associações de doentes deve ser proposto às famílias, que decidem livremente estabelecê-lo [12].

7.10. Posologia dos fármacos sintomáticos

Nenhum fármaco tem indicação, dose ou ensaio específico nas PCH, na MICPCH ou nas CAMRQ. As doses seguintes são as dos rótulos oficiais para a indicação aprovada mais próxima; o uso nas PCH é extrapolado da indicação ou de condições análogas (epilepsia pediátrica, paralisia cerebral), e o uso fora das idades aprovadas é fora de indicação. A escolha entre fármacos segue o tipo de crise, a idade, o peso e as comorbilidades, sob orientação de neuropediatra.

Fármaco (nome comercial®) Indicação aprovada do rótulo Dose e frequência Máximo / ajustes Efeitos adversos relevantes e gestão Fonte
Fenobarbital oral (Phenobarbital Colonis® suspensão oral 50 mg/5 ml, Reino Unido) Todas as formas de epilepsia exceto ausências, crianças e adultos Menos de 20 kg: 5 mg/kg/dia; 20–30 kg: 3–4 mg/kg/dia; mais de 30 kg: 2–3 mg/kg/dia, em uma ou duas tomas; adultos 2–3 mg/kg/dia ao deitar Sem máximo absoluto; pode demorar mais de 2 semanas a atingir níveis eficazes; monitorização sérica quando justificada Dependência com uso prolongado; evitar suspensão abrupta (crises de ressalto); contraindicado na porfiria aguda intermitente e na depressão respiratória grave [174]
Fenobarbital sódico IV (Sezaby®, EUA) Crises neonatais em recém-nascidos de termo e pré-termo Carga 20 mg/kg em 15 min; segunda carga 20 mg/kg (termo) ou 10–20 mg/kg (pré-termo); manutenção 4,5 mg/kg/dia em 2–3 tomas, iniciada 8–12 h após a primeira carga, até 5 dias Carga total máxima 40 mg/kg Sedação profunda e depressão respiratória com opioides [175]
Topiramato (Topamax®) Epilepsia a partir dos 2 anos (monoterapia e adjuvante, incluindo Lennox-Gastaut) Adjuvante 2–16 anos: 5–9 mg/kg/dia em duas tomas; início 25 mg/dia (ou 1–3 mg/kg/dia) à noite na primeira semana, aumentos de 1–3 mg/kg/dia a cada 1–2 semanas; monoterapia 2–9 anos: início 25 mg/dia, depois 25 mg duas vezes por dia, com manutenção por peso segundo a tabela do rótulo Adjuvante 2–16 anos: dose total sem exceder 400 mg/dia; monoterapia 2–9 anos: máximo de manutenção 250–400 mg/dia conforme o peso (até 11 kg 250 mg; mais de 38 kg 400 mg); monoterapia a partir dos 10 anos: 400 mg/dia em duas tomas; metade da dose habitual se depuração da creatinina inferior a 70 ml/min/1,73 m²; menos de 2 anos fora de indicação Miopia aguda e glaucoma de ângulo fechado secundário; oligo-hidrose e hipertermia, sobretudo em crianças; acidose metabólica (bicarbonato sérico no início e periodicamente); hiperamoniemia e encefalopatia; litíase renal (evitar com dieta cetogénica e outros inibidores da anidrase carbónica); redução da densidade mineral óssea e do crescimento em crianças; toxicidade fetal; suspensão gradual [176]
Levetiracetam (Keppra®) Crises focais a partir de 1 mês 1–6 meses: 7 mg/kg duas vezes por dia, aumentos de 7 mg/kg a cada 2 semanas até 21 mg/kg duas vezes por dia; 6 meses–4 anos: 10 mg/kg até 25 mg/kg duas vezes por dia; 4–16 anos: 10 mg/kg até 30 mg/kg duas vezes por dia; solução oral se 20 kg ou menos Adultos até 1500 mg duas vezes por dia (3000 mg/dia); ajuste renal Efeitos neurocomportamentais avaliados em ensaio pediátrico [177]
Valproato (Depakote®, divalproato) Crises parciais complexas a partir dos 10 anos; ausências Início 10–15 mg/kg/dia, aumentos de 5–10 mg/kg/semana 60 mg/kg/dia Hepatotoxicidade fatal, risco maior abaixo dos 2 anos e nas doenças mitocondriais; contraindicado nas doenças por POLG; pancreatite; provas hepáticas antes e a intervalos frequentes [179]
Clobazam (Onfi®) Adjuvante no Lennox-Gastaut a partir dos 2 anos 30 kg ou menos: 5 mg/dia, titular até 20 mg/dia; mais de 30 kg: 10 mg/dia até 40 mg/dia; doses acima de 5 mg/dia em duas tomas Metade da dose em metabolizadores lentos de CYP2C19 e na insuficiência hepática ligeira a moderada Sedação e depressão respiratória com opioides; dependência [180]
Vigabatrina (Sabril®) Espasmos infantis 1 mês–2 anos; crises parciais complexas refratárias a partir dos 2 anos Espasmos: 50 mg/kg/dia (25 mg/kg duas vezes por dia), aumentos de 25–50 mg/kg/dia a cada 3 dias 150 mg/kg/dia Perda visual bilateral permanente (advertência em caixa) [178]
Diazepam intranasal (Valtoco®) Crises em salvas a partir dos 2 anos 2–5 anos: 0,5 mg/kg; 6–11 anos: 0,3 mg/kg; 12 anos ou mais: 0,2 mg/kg; segunda dose pelo menos 4 h depois Máximo de 2 doses por episódio Sedação, depressão respiratória [181]
Midazolam bucal (Buccolam®, UE) Crises convulsivas agudas prolongadas a partir dos 3 meses com epilepsia diagnosticada 3–6 meses: 2,5 mg (em meio hospitalar); 6 meses–1 ano: 2,5 mg; 1–5 anos: 5 mg; 5–10 anos: 7,5 mg; 10 anos a adultos: 10 mg Dose única pelo cuidador; emergência se a crise persistir 10 min Depressão respiratória e sedação, potenciadas por outros antiepiléticos [144]
Melatonina de libertação prolongada (Slenyto®, UE) Insónia 2–18 anos com PEA e/ou doenças neurogenéticas 2 mg uma vez por dia 0,5–1 h antes de deitar, com ou após alimento; 5 mg se resposta inadequada 10 mg; reavaliação pelo menos a cada 6 meses Sonolência, fadiga, alterações do humor, cefaleia, irritabilidade [173]
Omeprazol (Prilosec®) DRGE sintomática 1–16 anos; esofagite erosiva a partir de 1 mês 5 a menos de 10 kg: 5 mg; 10 a menos de 20 kg: 10 mg; 20 kg ou mais: 20 mg, uma vez por dia até 4 semanas (esofagite 4–8 semanas) — Hipersensibilidade, nefrite tubulointersticial aguda; interação com rilpivirina [172]
Glicopirrónio oral (Cuvposa®) Sialorreia crónica grave 3–16 anos em doenças neurológicas 0,02 mg/kg três vezes por dia; aumentos de 0,02 mg/kg a cada 5–7 dias 0,1 mg/kg três vezes por dia, sem exceder 1,5–3 mg por dose conforme o peso Efeitos anticolinérgicos [190]
Toxina botulínica tipo A (Botox®) Espasticidade pediátrica a partir dos 2 anos Membro superior 3–6 U/kg; membro inferior 4–8 U/kg 200 U (superior), 300 U (inferior); por intervalo de 3 meses, o menor de 10 U/kg ou 340 U Disseminação à distância com disfagia e dificuldade respiratória (advertência em caixa) [170, 184]
Baclofeno oral (Fleqsuvy®, Ozobax DS®) Espasticidade da esclerose múltipla; possível benefício na lesão e outras doenças medulares 5 mg três vezes por dia durante 3 dias, depois 10, 15 e 20 mg três vezes por dia (3 dias cada) 80 mg/dia (20 mg quatro vezes por dia); segurança e eficácia não estabelecidas abaixo dos 12 anos; redução de dose na insuficiência renal Reduzir lentamente para evitar reações de privação [170, 182]
Tizanidina (Zanaflex®) Espasticidade, adultos 2 mg, repetível a cada 6–8 h até 3 doses em 24 h; aumentos de 2–4 mg por dose com 1–4 dias de intervalo 36 mg/dia; pediatria fora de indicação Aminotransferases no início e 1 mês após a dose máxima; suspensão lenta para evitar hipertensão, taquicardia e hipertonia de ressalto [170, 183]
Triexifenidilo Parkinsonismo e sintomas extrapiramidais induzidos por fármacos, adultos 6–10 mg/dia Distonia infantil fora de indicação; possivelmente ineficaz na distonia da paralisia cerebral Efeitos anticolinérgicos [171, 185]
Eculizumab (Soliris®) Síndrome hemolítico-urémico atípico, adultos e crianças 40 kg ou mais: 900 mg por semana durante 4 semanas, 1200 mg na 5.ª semana e depois 1200 mg a cada 2 semanas; restantes escalões de peso no rótulo Vacinação meningocócica pelo menos 2 semanas antes Infeções meningocócicas; sem eficácia demonstrada na MAT-EXOSC3 [114, 195]
Glicopirrónio, solução oral 320 µg/ml (Sialanar®, UE) Sialorreia grave a partir dos 3 anos com doença neurológica crónica Cerca de 12,8 µg/kg (base) por dose, três vezes por dia, com aumentos a cada 7 dias pelos escalões de 25,6, 38,4, 51,2 e 64 µg/kg; pelo menos 1 h antes ou 2 h depois das refeições 64 µg/kg ou 6 ml (1,9 mg de glicopirrónio) por dose, três vezes por dia, o que for menor; redução de 30% com TFGe 30–89 ml/min/1,73 m²; contraindicado abaixo de 30 Obstipação, retenção urinária, pneumonia, febre ou calor intenso (anidrose): suspender e contactar o médico; contraindicado no glaucoma, na retenção urinária, na gravidez e com outros anticolinérgicos; reavaliação pelo menos a cada 3 meses [12, 192]
Escopolamina transdérmica 1 mg/72 h (Scopoderm®, França) Enjoo do movimento; estertores agónicos em cuidados paliativos Um dispositivo atrás da orelha, renovado a cada 72 h; nos cuidados paliativos, reavaliação a cada 24 h e até 2–3 dispositivos Contraindicada abaixo dos 15 anos; sialorreia pediátrica fora de indicação Sonolência, confusão e alucinações, espessamento das secreções, obstipação, retenção urinária; aumento ocasional das crises; retirar antes da RM [12, 194]
Toxina incobotulínica A (Xeomin®, França) Sialorreia crónica neurológica ou do neurodesenvolvimento, 2–17 anos e peso de 12 kg ou mais Injeção ecoguiada bilateral nas parótidas e submandibulares, razão 3:2; dose total por peso: 12 a menos de 15 kg 20 U; 15 a menos de 19 kg 30 U; 19 a menos de 23 kg 40 U; 23 a menos de 27 kg 50 U; 27 a menos de 30 kg 60 U; 30 kg ou mais 75 U Intervalo mínimo de 16 semanas; sem recomendação abaixo de 12 kg Difusão à distância da toxina (rara); boca seca; cáries (consulta dentária no início) [12, 193]
Tetrabenazina (Xenazine®, França) Movimentos anormais da doença de Huntington; hemibalismo 12,5 mg/dia na 1.ª semana, 25 mg/dia (12,5 mg duas vezes) na 2.ª, depois titulação semanal até 50–75 mg/dia (Huntington) ou 75 mg/dia (hemibalismo) 200 mg/dia; uso pediátrico desaconselhado por ausência de dados Depressão e ideação suicida, parkinsonismo; ECG antes e no fim da titulação; contraindicada na insuficiência hepática [12, 187]
Colecalciferol (vitamina D3) Prevenção do défice (consenso francês de pediatria) Sem fatores de risco, 0–18 anos: 400–800 UI/dia; 2–18 anos com fatores de risco: 800–1600 UI/dia, ou intermitente 50 000 UI a cada 6 semanas ou 80 000–100 000 UI a cada 3 meses Evitar 200 000 UI numa toma; alvo de 25-hidroxivitamina D superior a 30 ng/ml nas doenças crónicas Hipercalciúria e nefrocalcinose com níveis persistentemente elevados [188]
Pamidronato IV Osteoporose secundária pediátrica (fora de indicação) 3 anos ou mais: 3 mg/kg divididos por 3 dias a cada 4 meses; 2–3 anos: 2,25 mg/kg a cada 3 meses; menos de 2 anos: 1,5 mg/kg a cada 2 meses 9 mg/kg/ano Efeitos da primeira perfusão (febre, vómitos); hipocalcemia e hipofosfatemia [189]
Ácido zoledrónico IV Osteoporose secundária pediátrica (fora de indicação) 2 anos ou mais: 0,05 mg/kg a cada 6 meses; menos de 2 anos: 0,025 mg/kg a cada 3 meses 0,1 mg/kg/ano Hipocalcemia e hipofosfatemia após a perfusão [189]

O rótulo FDA de fenobarbital oral não existe e o Resumo das Características do Medicamento (RCM) português de fenobarbital oral não foi consultado; a dose de manutenção oral pediátrica provém do RCM britânico [174, 175]. A diretriz AAN/CNS considera o diazepam por via oral de curta duração na espasticidade generalizada, mas o resumo consultado não indica a dose [170].

7.11. Estado regulamentar comparado

Fármaco ou classe EUA (FDA) UE (EMA ou autorização nacional) Consequência prática
Terapêuticas específicas de PCH, MICPCH ou CAMRQ Nenhuma autorizada Nenhuma autorizada Todo o tratamento é sintomático e usa rótulos de outras indicações
Fenobarbital Só IV (Sezaby®, crises neonatais, rótulo de dezembro de 2025); oral sem NDA Formulações orais com autorização nacional (exemplo do Reino Unido: todas as epilepsias exceto ausências, crianças e adultos) A manutenção oral pediátrica segue o RCM nacional; nos EUA é prescrita fora de um rótulo aprovado
Benzodiazepinas de resgate Diazepam intranasal (Valtoco®) a partir dos 2 anos Midazolam bucal (Buccolam®) a partir dos 3 meses Abaixo dos 2 anos, o resgate domiciliário dispõe de autorização na UE e não nos EUA, segundo os rótulos consultados
Melatonina de libertação prolongada As fontes consultadas não incluem rótulo FDA Slenyto® nas doenças neurogenéticas com alteração da secreção de melatonina, 2–18 anos Autorização europeia aplicável por extensão à perturbação do sono das PCH
Toxina botulínica tipo A Espasticidade pediátrica a partir dos 2 anos Incobotulinumtoxina A (Xeomin®) autorizada em França por reconhecimento mútuo, com indicação na sialorreia crónica neurológica dos 2 aos 17 anos (12 kg ou mais); o RCM europeu da espasticidade pediátrica não faz parte das fontes consultadas Doses máximas por peso do rótulo FDA na espasticidade; dose salivar por peso do RCM francês
Glicopirrónio oral Sialorreia 3–16 anos (Cuvposa®) Sialanar® (autorização centralizada de 15 de setembro de 2016) na sialorreia grave a partir dos 3 anos com doença neurológica crónica, uso curto e intermitente; comercializado em França desde 2025 Uso nas PCH por extensão da indicação neurológica; doses expressas em sal no rótulo FDA (0,02–0,1 mg/kg três vezes por dia) e em base no RCM europeu (12,8–64 µg/kg três vezes por dia)
Escopolamina transdérmica O rótulo FDA não foi incluído nas fontes consultadas Scopoderm® em França: enjoo do movimento e estertores agónicos; contraindicada abaixo dos 15 anos O uso na sialorreia infantil proposto pelo PNDS é fora de indicação
Tetrabenazina Coreia da doença de Huntington, adulto Xenazine® em França: movimentos anormais da doença de Huntington e hemibalismo; uso pediátrico desaconselhado Sem base regulamentar para o uso nas PCH; apenas relatos isolados de eficácia
Inibidores do C5 Eculizumab aprovado no síndrome hemolítico-urémico atípico As fontes consultadas não incluem o RCM europeu Na MAT-EXOSC3 não há evidência de eficácia
Fármacos da AME 5q (nusinersena, risdiplam, onasemnogene abeparvovec) Aprovados para doentes com variantes bialélicas de SMN1 Aprovados para AME 5q Não se aplicam à PCH1, que é uma AME não 5q com SMN1 normal

As fontes do estado regulamentar são os rótulos e os RCM citados na tabela 7.10 [144, 173–175, 181, 184, 187, 190, 192–195]. A não aplicabilidade dos fármacos da AME 5q à PCH1 decorre de estes atuarem no SMN1 ou no SMN2, ao passo que as doenças por VRK1 e pelos genes do exossoma ocorrem em doentes com SMN1 normal [9, 14]. Não foram pesquisadas designações órfãs da FDA ou da EMA para as PCH.

7.12. Ensaios clínicos

A pesquisa no ClinicalTrials.gov em 26 de outubro de 2026 («pontocerebellar hypoplasia», CASK, TSEN54, EXOSC3, «cerebellar hypoplasia», VLDLR, MICPCH, SEPSECS, RARS2, AMPD2) não identificou nenhum ensaio intervencional dirigido a uma PCH; uma pesquisa negativa não prova a inexistência de estudos. O único ensaio intervencional que incluiu uma PCH entre as condições elegíveis foi o MIT-E.

Estudo População n Duração Desfecho primário Resultado
MIT-E (NCT04378075; PTC Therapeutics), fase 2/3, aleatorizado, dupla ocultação, controlado por placebo Doença mitocondrial com epilepsia refratária (condições incluem PCH6) 68 Setembro de 2020 a dezembro de 2023; avaliação às 24 semanas Variação percentual das crises motoras observáveis por 28 dias Vatiquinona 15 mg/kg: mediana −12,74% versus −0,33% com placebo; diferença de medianas −8,31 (IC −31,3 a 16,4); p = 0,173; terminado por decisão do promotor [197]
NCT03572868 (Hospices Civils de Lyon), observacional Recém-nascidos com diâmetro cerebelar transverso inferior ao percentil 5 isolado no 2.º ou 3.º trimestre (2008–2015) 37 Seguimento até avaliação do desenvolvimento Quociente de desenvolvimento Concluído, sem resultados no registo [143]
NCT06092346 (NHGRI), história natural Doenças das purinas e pirimidinas, incluindo AMPD2 (PCH9, SPG63) Alvo 999 A recrutar desde dezembro de 2023 Determinantes clínicos, genómicos e bioquímicos Em curso [198]
NCT01488461 (AP-HP), observacional Ataxias congénitas e de início precoce 165 2012–2014 Estudos fenotípicos e genotípicos Concluído [199]

O ensaio MIT-E foi negativo no desfecho primário e não teve análise de subgrupo para a PCH6 no registo, pelo que não informa sobre a eficácia da vatiquinona nesta doença [197]. Os estudos observacionais não testam intervenções. A evidência terapêutica nas PCH limita-se a séries observacionais sem grupo de controlo, como a resposta aos antiepiléticos na PCH2A, que não permite comparações indiretas entre fármacos [15].

7.13. Novidades e investigação

Nos últimos 12 meses, não foi publicado nenhum ensaio, parecer ou autorização regulamentar específicos de uma PCH. No plano das recomendações, a HAS publicou em 7 de setembro de 2026 o primeiro protocolo nacional de diagnóstico e cuidados dedicado às PCH [12]. Os avanços pertencem a três níveis de evidência. Estudos humanos observacionais: a coorte internacional SEPSECS com proposta de biomarcadores de monitorização [30], a MAT resistente aos inibidores do C5 na PCH1B [114], o diagnóstico e as curvas de crescimento da PCH2A [109, 110], o rastreio neonatal na doença COASY [49, 145] e as séries CASK [132, 135–137]. Estudos pré-clínicos: na PCH9, a suplementação com AICAr (precursor dos nucleótidos de purina) resgatou o fenótipo em levedura e em progenitores neurais de doentes, mas inibiu o crescimento axonal em neurónios murinos e nenhum doente foi tratado [4, 41]; os filamentos de IMPDH2 protegem da neurodegenerescência em modelos de défice de AMPD2, sugerindo a indução da sua polimerização como hipótese terapêutica [200]; o AAV-PHP.B-Slc25a46 sistémico resgatou a morte prematura, a condução nervosa, a mobilidade, a atividade dos complexos mitocondriais e a perda dendrítica das células de Purkinje em ratinhos Slc25a46−/− [201]; oligonucleótidos antisense corretores do splicing restauraram a expressão de CDK5RAP3 em amniócitos [91]; e a transcriptómica de célula única em peixe-zebra rars2−/− identificou alterações das vias Notch e Wnt e da glia [202]. Para a COASY, foram propostas estratégias a jusante ou dirigidas ao gene, sem ensaio [101]. Projetos académicos: o projeto PCH2cure (Tübingen e Freiburg com a associação PCH-Familie e.V.), financiado em dezembro de 2022 pela Chan Zuckerberg Initiative com 2 milhões de dólares por 4 anos, usa organoides cerebrais derivados de células cutâneas de doentes; as fontes consultadas até outubro de 2026 não descrevem resultados terapêuticos [203].

7.14. Agentes a evitar, anestesia, gravidez e transição

Apesar dos episódios hipertérmicos documentados na PCH2, o GeneReviews não identifica risco especial com a anestesia geral [8]. A Orphanet inclui a hipertermia maligna entre as complicações potencialmente fatais da PCH2 [1]. As duas fontes divergem; na prática, a equipa de anestesia deve conhecer a tendência para hipertermia, a miopatia subclínica com CK elevada e o risco de apneia e de aspiração. O valproato deve ser evitado nas formas com disfunção mitocondrial e usado com precaução abaixo dos 2 anos [179]; a vigabatrina exige ponderação do risco visual em doentes com défice visual prévio [178]; as benzodiazepinas e o fenobarbital associados a opioides podem causar depressão respiratória grave em doentes com apneia [175, 180]; e a toxina botulínica pode agravar a disfagia [184]. As doentes com MICPCH não têm reprodução conhecida, e nas CAMRQ e na VPS53 ligeira a gravidez não está descrita nas fontes consultadas; se uma portadora ou doente com epilepsia engravidar, o fenobarbital associa-se a malformações major duas a três vezes mais frequentes e a efeitos no neurodesenvolvimento, devendo usar-se só se o benefício superar o risco, na menor dose eficaz [5, 174]. A transição para a medicina de adultos aplica-se sobretudo à MICPCH, às CAMRQ, à PCH1B com p.(Asp132Ala), à PCH11 e às formas tardias de SEPSECS; as mulheres adultas com MICPCH precisam de gestão multidisciplinar a longo prazo da escoliose, da alimentação e da mobilidade [10, 30, 132].

O PNDS francês considera que não há sobre-risco anestésico nas PCH e que as precauções são as da polideficiência, em linha com o GeneReviews; o único protocolo anestésico publicado diz respeito à PCH1E (SLC25A46) e foi adaptado à função mitocondrial do gene [12]. Na PCH2, o protocolo aconselha vigilância reforçada e boa hidratação durante as infeções, pela possível miopatia com CK elevada e rabdomiólise, sem sobre-risco anestésico descrito [12]. O seguimento neurológico iniciado na criança prossegue no adulto, e a medida de proteção jurídica a partir dos 18 anos faz parte da transição [12].

7.15. Diretrizes e divergências

Documento Organização, ano Âmbito Recomendações aplicadas Estatuto
GeneReviews TSEN54, EXOSC3, VLDLR e CASK Peritos, 2020 Gestão e vigilância Avaliações após o diagnóstico, tratamento sintomático, vigilância (secções 7 e 11) Revisão de peritos, não diretriz de sociedade
Practice parameter: pharmacologic treatment of spasticity in children and adolescents with cerebral palsy AAN e CNS, 2010 (DOI 10.1212/WNL.0b013e3181cbcd2f) Espasticidade na paralisia cerebral Toxina botulínica A nível A; diazepam nível B; tizanidina nível C; baclofeno e dantroleno nível U Condição análoga; extrapolação
Revisão sistemática da distonia na paralisia cerebral AACPDM, 2018 (DOI 10.1111/dmcn.13652) Distonia Baclofeno intratecal e estimulação cerebral profunda nível C; triexifenidilo possivelmente ineficaz Condição análoga; extrapolação
Consensos da Mitochondrial Medicine Society 2015 e 2017 Doença mitocondrial primária Diagnóstico e padrões de cuidados aplicáveis à PCH6 Não específicos de RARS2
Orientações diagnósticas da PCH1 Ivanov e colaboradores, 2018 PCH1 Avaliação clínica e origem étnica para orientar o teste; SMN1 e EXOSC3 p.(Gly31Ala) Autores; só resumo consultado
Coorte SEPSECS Killam e colaboradores, 2026 PCH2D Selénio, glutatião, metabolitos do enxofre, GPX, SELENOP Recomendação de autores
PNDS Hypoplasies Ponto-Cérébelleuses (HPC) HAS e centro de referência de malformações e doenças congénitas do cerebelo (filière DéfiScience); texto de julho de 2026, publicado a 7 de setembro de 2026 Diagnóstico, cuidados e seguimento de todas as PCH Avaliação inicial, estratégia genética por painel, orientação clínica, aconselhamento e diagnóstico pré-natal, sialorreia, saúde óssea, respiratório, digestivo, seguimento e cuidados paliativos (secções 5, 7, 8 e 11) Protocolo nacional; consenso de peritos com revisão da literatura
PCH radiológica Zakaria e colaboradores, 2024 PCH de imagem Microarray e exoma ou painel multigénico Recomendação de autores

Fontes: [5, 8–10, 13, 14, 30, 166, 170, 171, 196]. As divergências entre fontes são a toxina botulínica (recomendada na espasticidade, evidência insuficiente na distonia) e o risco anestésico (sem risco especial no GeneReviews, hipertermia maligna entre as complicações na Orphanet) [1, 8, 170, 171].

O PNDS francês diverge das outras fontes em vários pontos [12]. Na estratégia genética, começa por um painel dirigido (cerca de 60% de diagnósticos) e reserva o exoma ou o genoma em trio para os negativos, enquanto Zakaria e colaboradores recomendam microarray com exoma ou painel desde o início e o GeneReviews da CASK aceita exoma ou genoma de primeira linha [5, 13]. No risco anestésico, alinha com o GeneReviews e não com a Orphanet [1, 8]. Na sialorreia, propõe escopolamina transdérmica, que o RCM francês não indica na sialorreia e contraindica abaixo dos 15 anos, e descreve boa tolerância do glicopirrónio, enquanto o RCM europeu restringe o uso à sialorreia grave, por períodos curtos e intermitentes; o ensaio que sustenta a recomendação durou 84 dias [191, 192, 194]. Atribui às injeções salivares de toxina uma duração de 3 a 6 meses, e o RCM do Xeomin® fixa um intervalo mínimo de 16 semanas entre sessões [193]. Refere eficácia da tetrabenazina em doentes isolados, que o RCM francês desaconselha em pediatria e o rótulo FDA restringe à doença de Huntington no adulto [186, 187]. Situa o diagnóstico pré-natal médio às 27 semanas, quando a série que cita reporta neurossonografia e RM fetal em média às 29 semanas e 4 dias e às 31 semanas [154]. Apresenta a PCH1F como exceção à herança recessiva, contra o OMIM e os dois relatos publicados [2, 23, 24]. Por fim, fixa intervalos onde o GeneReviews remete para a clínica: radiografias da anca e da coluna anuais ou semestrais até ao fim da puberdade, consulta de medicina física e reabilitação pelo menos anual, análises anuais e seguimento dentário e da gastrostomia anual [8, 9]. Nas doses, a referência é a diretriz quando a especifica, e o RCM serve de comparação; o PNDS não indica doses, e as da tabela 7.10 provêm dos RCM e dos consensos citados.

8. Opções Reprodutivas e Aconselhamento Familiar

8.1. Riscos de recorrência por modo de herança

Nas PCH numeradas, na PHRINL recessiva, nas CAMRQ e nas restantes formas recessivas, os pais de um doente são heterozigóticos obrigatórios e assintomáticos; em cada gravidez, o risco é de 25% de filho afetado, 50% de portador assintomático e 25% de não afetado e não portador [1, 8–10]. Recomenda-se testar os dois progenitores para confirmar a fase e permitir uma estimativa fiável do risco, porque as variantes de novo ocorrem, ainda que a taxa baixa, nas doenças recessivas [8]. Apesar de alguma variabilidade intrafamiliar, os irmãos afetados por EXOSC3 têm habitualmente apresentação semelhante à do probando [9]. Os doentes com PCH graves não se reproduzem, por deficiência intelectual grave e morte antes da idade fértil; os afetados por VLDLR também não têm reprodução conhecida [8, 10]. Os irmãos dos pais têm 50% de probabilidade de serem portadores, e a deteção de portadores exige a identificação prévia das variantes familiares [8, 10].

Na MICPCH, a maioria dos casos é simplex por variante de novo ou, nos rapazes, por mosaicismo somático; como a penetrância parece completa, um progenitor assintomático dificilmente é portador, mas o mosaicismo somático ou germinativo parental é possível (descrito numa mãe assintomática com mosaicismo para uma deleção de CASK); o risco de recorrência para irmãos é baixo, mas superior ao da população, e o mosaicismo germinativo materno põe em risco irmãos e irmãs, enquanto o paterno põe em risco só as irmãs [5, 133]. As fontes consultadas não quantificam este risco, e a série de Burglen recomenda um aconselhamento tranquilizador perante uma variante de novo, porque as PCH são sobretudo recessivas [58]. Na deficiência intelectual ligada ao X com ou sem nistagmo, o pai de um rapaz afetado não é portador; a mãe pode ser heterozigótica ou a variante ser de novo, e com mais de um afetado é heterozigótica obrigatória; uma mãe heterozigótica transmite a variante em 50% das gestações, com rapazes afetados e raparigas habitualmente assintomáticas, mas com possível deficiência intelectual ligeira a grave, sinais oculares, ausências ou tremor; se a variante não for detetada nos leucócitos maternos, o risco continua acima do da população; as tias e primas maternas de um probando masculino podem estar em risco [5]. Nas famílias de Burglen com variantes missense ou in-frame herdadas, 10 de 13 mulheres portadoras não tinham deficiência intelectual, 2 tinham deficiência ligeira e 1 grave [58]. Na OPHN1, a herança ligada ao X segue a mesma lógica [61].

8.2. Hipoplasia cerebelar sem diagnóstico molecular

Depois de uma avaliação cuidadosa e da exclusão das causas sindrómicas e monogénicas, o Oxford Desk Reference lembra que muitas causas sindrómicas de anomalias estruturais cerebelares são recessivas e que, na hipoplasia cerebelar ou agenesia do vérmis aparentemente isoladas, o risco de recorrência pode chegar a 25%, sem dados empíricos disponíveis [62]. A aplasia do vérmis autossómica dominante está descrita, pelo que se recomenda RM a um progenitor com ataxia, nistagmo ou outras alterações neurológicas; há sobreposição fenotípica com as ataxias espinocerebelares; as tubulinopatias podem ser dominantes; e na malformação de Dandy-Walker não mendeliana nem cromossómica o risco é de 1–5% [62]. A causa adquirida (prematuridade, lesão perinatal) altera o aconselhamento, e as lesões estruturais cerebelares congénitas ajudam a estimar o risco [4, 142]. O armazenamento de ADN é recomendado quando o diagnóstico molecular não está confirmado, para permitir reanálise futura [8].

8.3. Teste em cascata e rastreio de portadores

O teste em cascata dos irmãos dos pais e de outros familiares em idade reprodutiva é possível após identificação das variantes familiares [8]. Existem programas de rastreio de portadores em populações fundadoras. Numa comunidade geneticamente isolada dos Países Baixos com consulta pré-concecional desde 2012, 203 pessoas foram aconselhadas num ano (92 casais e 19 indivíduos), 65 de 196 testados (33,2%) eram portadores de pelo menos uma de quatro doenças, a frequência de portadores de PCH2 foi de 14,3% e foram identificados quatro casais portadores de PCH2 [204]; desde 2010, sete casais portadores foram identificados nessa comunidade [4]. Pessoas de ascendência cigana podem fazer teste de portador para a EXOSC3 p.(Gly31Ala), e um centro eslovaco recomenda o teste voluntário de portadores nos casais e o rastreio pré-natal e neonatal nesta população [9, 205]. Nos huteritas, a frequência de portadores da deleção de VLDLR (cerca de 1/15) poderia justificar rastreio populacional para fins reprodutivos, por análise dirigida à deleção fundadora [10, 67]. Nos judeus marroquinos, a frequência de portadores de VPS53 de cerca de 1/37 fundamenta o teste dirigido [31].

8.4. Diagnóstico pré-natal e pré-implantação

Com as variantes familiares identificadas, oferece-se diagnóstico pré-natal invasivo (biópsia das vilosidades coriónicas, amniocentese) ou DGPI [1, 4, 8]. A ecografia não substitui o teste molecular: falha muitas vezes às 20 semanas, e a ecografia detalhada oferecida numa gravidez seguinte tem limitações que devem ser discutidas com os pais [4, 62, 109]. No casal paquistanês consanguíneo com duas gestações afetadas por PCH12, os autores recomendam DGPI e teste em cascata [126]. As perspetivas dos profissionais e das famílias sobre o diagnóstico pré-natal de doenças graves podem diferir e devem ser discutidas [8].

O PNDS francês detalha as opções numa nova gravidez [12]. Sem diagnóstico molecular, oferece vigilância morfológica próxima (ecografias de referência e RM fetal às 32 semanas, ou a partir das 26 semanas perante sinal ecográfico), cujas limitações nas PCH progressivas devem ser explicadas. Com variante identificada, o diagnóstico pré-natal faz-se por biópsia do trofoblasto no início da gravidez ou por amniocentese, e o diagnóstico pré-natal não invasivo no plasma materno é possível em algumas situações (PCH recessivas com variante paterna diferente da materna, PCH dominantes de novo), com limitações técnicas a discutir com o laboratório em cada caso. Outras opções são o DGPI, a doação de gâmetas e a adoção. Nas PCH dominantes por variante de novo, o risco de recorrência é baixo e corresponde ao do mosaicismo germinativo [12]. Perante um diagnóstico pré-natal, a interrupção médica da gravidez discute-se caso a caso conforme o tipo de PCH, a imagem, os dados genéticos e o que os pais consideram aceitável; em França, o centro pluridisciplinar de diagnóstico pré-natal (CPDPN) pode atestar a elegibilidade depois de uma avaliação completa. Os casais que prosseguem a gravidez podem construir com a equipa perinatal um projeto de cuidados paliativos ao nascimento, centrado no conforto e no acompanhamento, posto em prática depois de confirmados o diagnóstico e o prognóstico [12].

8.5. Aconselhamento de menores e planeamento familiar

O GeneReviews recomenda o aconselhamento genético dos jovens adultos afetados, portadores ou em risco de serem portadores e o planeamento familiar antes da gravidez [8, 9]. As fontes consultadas não tratam especificamente o teste de portador em menores assintomáticos; como a condição de portador não tem consequências para a saúde do próprio, a informação é sobretudo reprodutiva e pode aguardar a idade em que a pessoa decida por si [8].

9. Considerações Especiais: Diversidade Populacional e Epidemiologia

9.1. Prevalência e o que cada número mede

A prevalência das PCH é desconhecida, e a maioria dos subtipos parece muito rara [1]. As classes de prevalência Orphanet inferiores a 1/1 000 000 dos subtipos traduzem contagens de casos publicados e não estudos populacionais: cerca de 40 famílias no mundo para a PCH1 (todos os genes), cerca de 81 famílias para a PCH2 (prevalência «desconhecida»), cerca de 10 famílias para a PCH4, 3 famílias para a PCH3, 6 casos para a PCH8, 23 casos para a PCH10, 4 casos para a PCH12, 7 casos para a atrofia cerebelo-cerebral progressiva e 51 casos validados para a síndrome de desequilíbrio [206]. A contagem da Orphanet para a PCH7 (4 casos) está desatualizada face às 12 famílias de Lardelli e aos 28 casos 46,XY revistos em 2026 [38, 39]. A PCH2A é o tipo mais frequente, com incidência estimada inferior a 1/200 000, segundo van Dijk e colaboradores, que citam Sánchez-Albisua [4, 15]. Até 2014 estavam publicadas menos de 100 famílias com PCH2 [15]. O GeneReviews conta pelo menos 131 indivíduos com TSEN54-PCH, 82 com EXOSC3-PCH, mais de 50 com VLDLR-CH e 130 com doenças CASK (151 publicados até 2025 segundo a revisão BINGO), com prevalência desconhecida em todos [5, 8–10, 135].

A distribuição relativa dos genes depende da coorte. No diagnóstico de rotina de Amesterdão entre 2012 e 2017, 42 doentes tinham variantes em genes PCH (20 homozigóticos p.(Ala307Ser), 13 EXOSC3, 4 RARS2, 1 SEPSECS, 1 AMPD2), e outros 9 tinham variantes CASK [4]. No centro de referência francês, a PCH2/PCH4 representou 18 de 40 doentes (45%) e a MICPCH 13 de 40 (32%) [58]. Na coorte atual do mesmo centro de referência, com 260 doentes, CASK (21%) e TSEN54 (17%) eram as causas mais frequentes, seguidas de EXOSC3; a distribuição incluía também TUBA1A, VLDLR, SEPSECS, SPTAN1, DYRK1A, anomalias cromossómicas e lesões isquémico-hemorrágicas, e 34% não tinham diagnóstico [12]. O mesmo protocolo estima em mais de 70% a proporção de diagnósticos moleculares conclusivos em França, número que não coincide com o da coorte e cuja base não é explicada, e mantém a prevalência das PCH como desconhecida [12]. Na coorte de Namavar (169 doentes de 141 famílias com suspeita de PCH testados para TSEN54, TSEN2, TSEN34 e RARS2), 106 tinham variantes [92]. Na coorte canadiana de PCH radiológica, apenas 1 de 38 tinha variantes num gene PCH do OMIM [13]. O Oxford Desk Reference de 2017 afirma que a PCH1A por VRK1 é provavelmente a forma diagnosticada com maior frequência; esta afirmação diverge de todas as restantes fontes, que identificam a PCH2A como o tipo mais frequente e a VRK1 como causa muito rara de PCH1 [4, 8, 62, 63].

9.2. Europa, América do Norte e populações fundadoras

População Gene e variante Dado O que mede Fonte
Países Baixos e Alemanha TSEN54 p.(Ala307Ser) Frequência de portadores 0,004 em 451 neerlandeses e 279 alemães Frequência na população geral [8, 27]
Comunidade isolada neerlandesa TSEN54 p.(Ala307Ser) Portadores de PCH2 14,3% entre os testados na consulta pré-concecional Frequência numa amostra com história familiar enriquecida (57,8% dos portadores tinham história familiar) [204]
Alemanha e Suíça TSEN54 p.(Ala307Ser) Coortes de 33 e 65 doentes Coortes de associações de doentes, não prevalência [15, 109]
Itália TSEN54 p.(Ala307Ser) 9 de 12 crianças com PCH2/PCH4 Série clínica [83]
Ciganos checos EXOSC3 p.(Gly31Ala) 4 de 90 heterozigóticos (cerca de 4,4%); 0 de 120 checos não ciganos Amostras anónimas [11]
Ciganos búlgaros EXOSC3 p.(Gly31Ala) 14 homozigóticos entre 128 doentes com AME sem deleção de SMN1; três quartos dos casos ciganos Rendimento diagnóstico [14]
Ciganos eslovacos (Košice) EXOSC3 p.(Gly31Ala) 6 doentes entre 2019 e 2025; a maioria morreu antes dos 3 anos Série hospitalar [205]
Europeus-americanos EXOSC3 p.(Asp132Ala) Frequência alélica 0,1% Base de exomas [9]
Reino Unido MAT-EXOSC3 0,004 por milhão por ano Incidência de uma complicação [114]
França CASK Segunda causa de PCH no centro de referência Série de referência [58]
França (centro de referência, coorte atual) CASK, TSEN54 21% e 17% de 260 doentes; 34% sem diagnóstico Distribuição etiológica numa coorte de referência, não prevalência [12]
Huteritas (Canadá, EUA) VLDLR, deleção de cerca de 199 kb Portadores cerca de 1/15; mais de 25 doentes nos três leuts Frequência de portadores, não prevalência da doença [10, 59, 67]
Judeus marroquinos VPS53 c.2084A>G e c.1556+5G>A Portadores cerca de 1/37 Frequência de portadores [31]
Judeus de origem iraquiana e marroquina SEPSECS Duas variantes fundadoras Efeito fundador [29]
Judeus asquenazes VRK1 Família original da PCH1A Família única [16]
Judeus sefarditas RARS2 Família original da PCH6 Família única [36]
Turquia CLP1 p.(Arg140His) 21 doentes de 10 famílias, todos homozigóticos; primeira família não turca no Sudão Efeito fundador [43, 44, 86]
Egito PPIL1 p.(Ala99Thr); MINPP1; PNKP p.(Asn461dup) 9 doentes de 8 famílias (PPIL1); 5 de 4 famílias (MINPP1) Séries clínicas de populações consanguíneas [52, 55, 167]
Sul da Ásia CDK5RAP3 c.334+243G>A Variante fundadora em duas famílias Efeito fundador [91]
Irão Vários genes PCH EXOSC3 c.395A>C em 40% de 10 doentes Série clínica [113]
Países árabes e Finlândia SEPSECS Concentração dos casos de início precoce Revisão de casos [112]
Japão, China, Bulgária, Reino Unido CASK Séries de 3, 21, 3 e 31 doentes Séries clínicas [132, 135–137]
África VLDLR Primeira família africana com CAMRQ1 Relato de família [141]

Os dados disponíveis provêm sobretudo da Europa Ocidental e Central (Países Baixos, Alemanha, Suíça, França, Itália, República Checa, Eslováquia, Bulgária, Reino Unido), da América do Norte (coortes canadianas de Montreal e populações huteritas) e de populações fundadoras ou consanguíneas do Médio Oriente, Norte de África, Turquia e Sul da Ásia. As fontes consultadas não incluem dados de Portugal nem do Brasil; a coorte canadiana de Zakaria tem uma coautora brasileira, sem doentes brasileiros [13]. A ausência de dados nas fontes consultadas não demonstra a ausência de doentes ou de publicações nestes países.

9.3. Populações especiais

Os recém-nascidos pré-termo extremos constituem uma população em que a PCH pode ser adquirida e não genética, o que exige cautela antes de atribuir um risco de recorrência [4, 73]. Os fetos com hipoplasia cerebelar isolada podem ter imagem pós-natal normal [152]. Os adultos com MICPCH, CAMRQ, PCH1B ligeira e formas tardias de SEPSECS ou VPS53 são uma população emergente, identificada também por exoma em idades mais avançadas [4, 30, 32, 132]. Nas raparigas com MICPCH, a variabilidade da inativação do X não explicou a gravidade nas nove testadas, todas com inativação aleatória [58].

9.4. Redes europeias e associações de doentes

A rede europeia de referência mais pertinente é a ERN-ITHACA, para as malformações raras do rombencéfalo e a MICPCH; a ERN-RND abrange as ataxias e as doenças neurológicas raras, a ERN EpiCARE as epilepsias refratárias e a EURO-NMD a PCH1 e as neuronopatias motoras. A associação alemã PCH-Familie e.V. é um portal de autoajuda germanófono para famílias de crianças com PCH, base das coortes de história natural alemãs, e participa no projeto PCH2cure [203, 207]. A CASK Kinder- und Lebenshilfe e. V. (Alemanha) apoia as famílias com doenças CASK [5], tal como a CASK Gene Foundation nos EUA. Nos EUA, o National Institute of Neurological Disorders and Stroke (NINDS) e a National Ataxia Foundation disponibilizam informação sobre hipoplasia cerebelar e ataxias [10]. A Orphanet lista centros especializados, testes diagnósticos, organizações de doentes e registos para o grupo [1]. Em França, os doentes são seguidos pelo centro de referência de malformações e doenças congénitas do cerebelo (2M2C), com sítio coordenador no Hospital Armand-Trousseau (AP-HP, Paris), sítios constitutivos em Lille e Lyon e centros de competência em Besançon, Montpellier, Paris-Pitié-Salpêtrière, Reims e Tours, integrado na filière de saúde DéfiScience das doenças raras do neurodesenvolvimento; consoante as condições locais, também os centros de polideficiência, de deficiência intelectual e de anomalias do desenvolvimento acompanham estes doentes [12]. As associações francesas são a Association Enfants CASK France (AECF), para as doenças CASK, e a Connaître les Syndromes Cérébelleux (CSC), com antena pediátrica, para as síndromes cerebelosas em geral [12].

10. Caso Clínico Ilustrativo

10.1. Rapaz com MICPCH por variante CASK em mosaico (Burglen e colaboradores, 2012)

O caso pertence à série do centro de referência francês de malformações cerebelares (Paris, Assistance Publique–Hôpitaux de Paris), que estudou 14 doentes com PCH na imagem sem doença do corno anterior nem coreia; TSEN54 tinha sido sequenciado e era normal em cinco, e os 27 exões de CASK (NM_003688.3) foram sequenciados com array-CGH nos negativos [58]. O doente 12 nasceu de termo após uma gravidez normal, com peso de −1,5 DP, comprimento de −2 DP e perímetro cefálico de −3 DP [58]. Teve atraso psicomotor: sentou-se aos 18 meses e adquiriu marcha independente aos 4 anos [58]. Aos 15 anos tinha deficiência intelectual grave, uma linguagem de cerca de 12 palavras, apoiada por instrumentos de comunicação não verbal, marcha independente, distonia, estereotipias e discinesia bucofacial, com perímetro cefálico e altura de −3,5 DP; os exames oftalmológico e auditivo eram normais, e não tinha epilepsia nem espasticidade [58]. A RM mostrou hipoplasia cerebelar ligeira [58]. Foi identificada a variante sem sentido NM_003688.3:c.316C>T p.(Arg106Ter) em mosaico, presente nos linfócitos e na mucosa jugal, ausente nos pais (variante de novo, com paternidade confirmada) [58]. Foi o primeiro rapaz com MICPCH em mosaico descrito [58].

A mesma série descreve, em contraste, o doente 13, um rapaz hemizigótico para a variante de splicing c.278+1G>A, com hipotonia neonatal grave, epilepsia refratária com espasmos diários e crises tónicas com surto-supressão, contraturas distais, eventração diafragmática, microcefalia que passou de normal a −6 DP aos 16 meses, ausência de contacto visual, tetraparesia espástica, distonia grave com opistótono, DRGE grave com disfagia e gastrostomia, discos óticos muito hipoplásicos com potenciais evocados visuais ausentes, respostas auditivas centrais quase ausentes e hemisférios cerebelares quase ausentes na RM [58]. O par ilustra a correlação clínico-radiológica nos rapazes, descrita pelos autores: a variante sem sentido em mosaico produziu um quadro comparável ao das raparigas heterozigóticas, e a perda de função hemizigótica constitucional produziu a encefalopatia epilética grave [58, 95].

10.2. Figuras consultadas

A figura 3 do artigo (https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3351739/figure/F3/) mostra o fácies de seis doentes com variante CASK; o painel D corresponde ao doente 12 aos 13 anos, e a legenda descreve dismorfia minor, com face redonda, queixo pequeno e sobrancelhas bem desenhadas nos mais novos e face mais longa, ponte nasal alta e larga, nariz longo e maxila protrusa nos mais velhos [58]. A figura 4 (https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3351739/figure/F4/) apresenta, em cortes sagitais, o espetro de hipoplasia do vérmis e da ponte, com ponte muito pequena mas com preservação relativa da saliência superior e hipoplasia vermiana muito ligeira nos doentes 10 a 12 e grave no doente 13, e, em cortes coronais, hemisférios frequentemente assimétricos sem protrusão do vérmis, ao contrário da «libélula» da PCH2; não houve progressão entre RM sucessivas no doente 9 (aos 4 meses e aos 11 anos) [58]. As legendas das duas figuras foram lidas na fonte; as imagens não foram visualizadas.

10.3. Leitura clínica

O caso mostra que um rapaz com PCH, microcefalia e deficiência intelectual pode ter uma doença ligada ao X sem antecedentes familiares e com uma variante não detetável em todas as células, que a marcha e alguma linguagem são possíveis e que a PCH pode ser ligeira na RM [58]. Os autores recomendam testar CASK, incluindo deleções e duplicações exónicas, nas crianças com deficiência intelectual, microcefalia e PCH sem sinais de PCH2, e consideram o aconselhamento tranquilizador perante uma variante de novo [58]. O GeneReviews acrescenta que o sangue parental negativo não exclui mosaicismo parental, pelo que o risco de recorrência é baixo mas não nulo [5]. A conduta descrita no relato (comunicação não verbal, seguimento do desenvolvimento) é concordante com as recomendações gerais de gestão das doenças CASK [5].

11. Prognóstico e Seguimento a Longo Prazo

11.1. Prognóstico por entidade

O prognóstico global é mau: muitas crianças vivem apenas até à lactância ou à infância, embora alguns doentes tenham chegado à idade adulta [1]. Os dados disponíveis provêm de coortes observacionais de doença tratada com cuidados de suporte, e não existe história natural sem tratamento comparável.

Entidade Sobrevida e evolução População e época Fonte
PCH2A 8 de 15 crianças (53%) com seguimento possível até aos 10 anos tinham morrido; idade média à morte 6 anos e 7 meses; morte súbita noturna em 5 de 9 mortes; sobrevivências além dos 20 anos descritas; mais de 50% morrem antes da puberdade 33 doentes da Alemanha e Suíça nascidos entre 1991 e 2011 [4, 8, 15]
PCH4, PCH5 Morte habitualmente neonatal Séries e famílias únicas [8]
PCH1B Poucas semanas até à adolescência; idade média à morte 9 meses com EXOSC3 e 3 meses sem EXOSC3; curso prolongado na p.(Asp132Ala) homozigótica; morte antes dos 3 anos na maioria dos ciganos eslovacos com p.(Gly31Ala) 82 indivíduos de 58 famílias; 37 doentes de 27 famílias; 6 doentes de Košice (2019–2025) [4, 9, 84, 205]
PCH1 por genótipo Morte precoce (1 dia a 17 meses) com p.(Gly31Ala) e SLC25A46; intermédia (3 meses a 5 anos) com EXOSC8 e outras EXOSC3; morte entre 5 e 18 anos com p.(Asp132Ala) homozigótica e VRK1 Revisão de todos os PCH1 confirmados até 2018 [14]
PCH2D (SEPSECS) Três cursos: grave precoce, precoce com deterioração gradual, tardio ligeiro até à idade adulta 27 doentes de uma coorte internacional [30]
PCH6, PCH12, PCH17, PHRINL, PCH1E Mortalidade na lactância ou no período neonatal Séries pequenas [4, 21, 48, 56]
PCH8, PCH11 Não progressivas; alguns doentes andam Poucas famílias [4, 47]
PCH radiológica Cerca de um terço morreu (mediana 8 meses); sem regressão 38 crianças, Montreal [13]
MICPCH Mortalidade nas raparigas não descrita; mulheres até aos 50 anos; rapazes com encefalopatia epilética: mortes aos 2, 7 e 21 meses 130 indivíduos; 3 adultas japonesas [5, 132]
VLDLR-CH Ataxia não progressiva; esperança de vida sem redução significativa na experiência huterita; adultos sem vida independente Mais de 25 huteritas seguidos durante muitos anos [10]

Na PCH2A, a presença de sinais pré-natais não alterou a sobrevida a 1, 5 ou 10 anos [15]. Na PCH1, não há correlação entre a idade de início neurológico e a duração da vida [14]. Na MICPCH, a gravidade da PCH na RM não tem valor prognóstico nas raparigas e a correlação clínico-radiológica é mais clara nos rapazes [5, 58]. A melhoria dos cuidados, sobretudo a alimentação por gastrostomia, terá prolongado a sobrevida na PCH2 [8]. O PNDS francês atribui a menor duração de vida das formas neurodegenerativas ao atingimento respiratório (insuficiência respiratória, infeções de repetição), ao envolvimento do corno anterior na PCH1, à epilepsia e às complicações da polideficiência; nas formas do neurodesenvolvimento, a sobrevida depende das complicações e da gravidade da polideficiência, e o prognóstico neurocognitivo muito variável justifica avaliações regulares para adaptar a orientação médico-educativa [12].

11.2. Tabela de vigilância

Exame ou avaliação Idade de início Intervalo Limiar de ação Fonte
Crescimento, estado nutricional, segurança da via oral, risco de aspiração, obstipação Diagnóstico Anual nas PCH2 e PCH1, ou mais frequente se necessário; em cada consulta na MICPCH Ganho ponderal pobre, engasgos, pneumonias: estudo da deglutição, sonda ou gastrostomia [5, 8, 9]
Curvas de crescimento específicas da PCH2A Nascimento Em cada consulta Desvio da curva específica [110]
Via aérea, função pulmonar, gestão de secreções; monitorização do sono (oximetria) para apneia Diagnóstico Intervalo não especificado nas fontes; conforme a clínica Apneias: estimulação, suporte respiratório, discussão de objetivos [8, 9, 15]
Avaliação neurológica: crises, distonia, coreia, tónus; EEG conforme a clínica Diagnóstico Anual na VLDLR-CH; em cada consulta na MICPCH; conforme a clínica nas PCH2 e PCH1 Novas crises, estado de mal: ajuste terapêutico e plano de emergência [5, 8, 10]
Reabilitação (fisioterapia, terapia ocupacional, medicina física): mobilidade, contraturas, escoliose, pés Diagnóstico Anual na VLDLR-CH; em cada consulta na MICPCH Contratura, escoliose: ortóteses, cirurgia ortopédica [5, 10]
Radiografias da anca e da coluna (bacia em decúbito; coluna de frente e de perfil, em decúbito e sentado) Conforme a clínica (GeneReviews); desde o diagnóstico (PNDS) Não especificado no GeneReviews; anual ou semestral até ao fim da puberdade no PNDS, com controlo clínico anual da anca Luxação da anca, escoliose: adaptação do posicionamento, colete, avaliação ortopédica [8, 9, 12]
Oftalmologia Diagnóstico Anual na MICPCH Estrabismo, atrofia ótica, retinopatia, glaucoma [5]
Audiologia Diagnóstico Anual na MICPCH Surdez neurossensorial: próteses auditivas [5]
Desenvolvimento e necessidades educativas; comportamento e saúde mental Diagnóstico Em cada consulta na MICPCH Ansiedade, atenção, agressividade, autolesão [5]
CK Durante doença febril Em cada episódio febril prolongado CK elevada ou urina escura: hidratação, avaliação hospitalar [4, 8]
Hemograma Diagnóstico Seguimento (intervalo não especificado) Citopenias na PCH14 e PCH15 [51, 52]
Função renal, pressão arterial, proteinúria, hemograma com esfregaço Diagnóstico na PCH1B e na síndrome TRACK Não especificado MAT: nefrologia; inibidor do C5 sem eficácia demonstrada na MAT-EXOSC3 [26, 114]
Provas hepáticas Diagnóstico na PCH13 Não especificado Disfunção hepática [50, 129]
Provas hepáticas sob valproato Antes do início Intervalos frequentes, sobretudo nos primeiros 6 meses Alteração hepática: suspensão [179]
Aminotransferases sob tizanidina Início 1 mês após a dose máxima Lesão hepática suspeita [183]
Selénio plasmático, glutatião, metabolitos do enxofre, GPX, SELENOP Diagnóstico na PCH2D Não especificado Monitorização de tentativas terapêuticas [30]
Função endócrina (gonadotrofinas, testosterona) Diagnóstico na PCH7; idade pubertária nas formas de PRDM13 Não especificado Hipogonadismo: indução pubertária [39, 57]
Ecocardiograma e ecografia renal Diagnóstico na MICPCH No diagnóstico Anomalia estrutural [5]
Necessidades da família, serviço social, cuidados paliativos Diagnóstico Em cada consulta Sobrecarga do cuidador, decisão sobre objetivos de cuidados [5, 8]
Consulta de neuropediatria (perímetro cefálico, peso e altura nas curvas; tónus, movimentos anormais e deformações; crises; sono; comportamento; visão e audição; alimentação, trânsito e congestão respiratória; dor com escala adaptada, por exemplo GED-DI; calendário vacinal e suplemento de vitamina D; repercussão familiar) Diagnóstico Anual ou com periodicidade individual; idealmente uma ou duas vezes por ano em conjunto com medicina física e reabilitação Complicação nova: encaminhamento para a especialidade [12]
Consulta de medicina física e reabilitação (tónus e espasticidade, motricidade, amplitudes articulares, movimentos involuntários, marcha, deformações, fragilidade óssea, posicionamento diurno e noturno, ortóteses) Diagnóstico Pelo menos anual, se possível no local de vida Deformação grave e evolutiva apesar das ortóteses: consulta de ortopedia [12]
Análises de carências e de fatores de osteoporose (cálcio, fósforo, 25-hidroxivitamina D, PTH, ureia, creatinina, PCR, albumina, pré-albumina, hemograma, ferritina) Diagnóstico Anual Carência: suplemento; osteoporose: consulta especializada [12]
Densitometria óssea Fratura suspeita de osteoporótica, risco elevado de fratura, fatores de risco (desnutrição, défice de vitamina D), dor ou desconforto inexplicados Conforme a indicação Osteoporose: discutir bisfosfonatos intravenosos [12]
Consulta dentária Infância Anual, também no adulto Cáries, tártaro, dor revelada por alteração do comportamento [12]
Seguimento da gastrostomia Colocação Pelo menos anual Complicações do orifício ou da sonda [12]
Consulta de pneumologia Primeiros sintomas respiratórios Pelo menos anual a partir daí Pneumonias de aspiração, insuficiência respiratória crónica, congestão resistente: dispositivos de desobstrução [12]
EEG e doseamento sérico dos antiepiléticos Epilepsia Regular, conforme a evolução Agravamento das crises; toxicidade [12]
Radiografia do tórax, pH-metria, endoscopia, trânsito esófago-gastroduodenal, polissonografia, eletroneuromiografia Conforme a clínica Não sistemáticos Pneumonia de aspiração; refluxo refratário; SAOS; neuropatia [12]
RM cerebral de controlo Formas evolutivas ou sinais neurológicos novos Não sistemática (exige sedação ou anestesia) Alteração com consequência na gestão [12]
Avaliação cardíaca (ECG, ritmo e condução) Diagnóstico de doença EXOSC5; proposta nos outros genes do exossoma Não especificado Perturbação da condução: pacemaker [12]

Os GeneReviews especificam intervalos apenas para a avaliação gastrointestinal anual nas PCH2 e PCH1, para as avaliações anuais neurológica e de reabilitação na VLDLR-CH, para a oftalmologia e a audiologia anuais e as restantes avaliações em cada consulta na MICPCH e para a monitorização hepática dos fármacos; os restantes intervalos dependem da clínica [5, 8–10]. O PNDS francês acrescenta intervalos para a consulta de neuropediatria (anual), de medicina física e reabilitação (pelo menos anual) e de pneumologia (pelo menos anual depois dos primeiros sintomas), para as radiografias da anca e da coluna (anuais ou semestrais até ao fim da puberdade), para as análises (anuais) e para o seguimento dentário e da gastrostomia (anual) [12].

12. Resumo e Considerações Finais

As hipoplasias pontocerebelares são uma classe de doenças monogénicas, quase todas autossómicas recessivas, de início pré-natal ou neonatal, definidas pela hipoplasia e/ou atrofia do cerebelo e da ponte e numeradas de PCH1 a PCH17 no OMIM, com mais de 25 genes ligados sobretudo ao processamento do RNA (complexo TSEN, CLP1, exossoma, spliceossoma, TOE1), à tradução e ao metabolismo (RARS2, SEPSECS, AMPD2, COASY, MINPP1), ao tráfego vesicular (VPS53, VPS51, CHMP1A, TBC1D23), à mitocôndria (SLC25A46, ATAD3A), à sinapse (PCLO) e à especificação neuronal (PRDM13). A PCH2A, por homozigotia TSEN54 p.(Ala307Ser), é o tipo mais frequente e o mais bem caracterizado, com clónus neonatal, disfagia, coreoatetose, epilepsia, apneia e perturbações da termorregulação, padrão em «libélula» na RM e mortalidade de 53% até aos 10 anos na coorte alemã. A PCH1 combina a PCH com a degenerescência do corno anterior e deve ser procurada nas crianças com quadro de AME sem deleção de SMN1, sobretudo de ascendência cigana. A MICPCH por CASK, ligada ao X e quase sempre de novo, é a segunda causa de PCH nas séries de referência e distingue-se pela hipoplasia proporcional de vérmis e hemisférios, pela ausência de coreia e de doença do neurónio motor e por um risco de recorrência baixo. A VLDLR-CH e as restantes CAMRQ são ataxias congénitas não progressivas com deficiência intelectual. O diagnóstico assenta na RM, que deve ser interpretada por neurorradiologista e pode ser normal no início de várias formas, e no teste genético com análise de CNV, que começa pela variante TSEN54 c.919G>T no fenótipo PCH2 e pelo exoma ou genoma com microarray nos restantes; na PCH radiológica, as causas cromossómicas e adquiridas, incluindo a prematuridade extrema, são mais frequentes do que os genes clássicos. Não há tratamento modificador nem ensaio intervencional dirigido; a gestão assenta na alimentação por gastrostomia e no tratamento do refluxo, nos antiepiléticos (com a maior proporção de respostas ao fenobarbital e ao topiramato na PCH2A), no plano de resgate do estado de mal, na vigilância da apneia, na hidratação durante a febre, no tratamento da espasticidade e da distonia extrapolado da paralisia cerebral, na reabilitação, na comunicação aumentativa e nos cuidados paliativos. O aconselhamento genético, o teste em cascata, o rastreio de portadores nas populações fundadoras e o diagnóstico pré-natal ou pré-implantação dependem da identificação molecular, porque a ecografia fetal não deteta a maioria dos casos. O protocolo nacional francês de 2026 organiza este percurso, desde a RM e o painel genético dirigido até ao seguimento pluridisciplinar com intervalos definidos para a reabilitação, a ortopedia, a saúde óssea, a nutrição, a respiração e os dentes, e à abordagem paliativa.

13. Referências Bibliográficas

  1. Orphanet. Pontocerebellar hypoplasia (ORPHA:98523). Paris: INSERM; [consultado 2026-10-26]. Disponível em: https://www.orpha.net/en/disease/detail/98523
  2. Online Mendelian Inheritance in Man, OMIM®. Phenotypic Series PS607596 — Pontocerebellar hypoplasia. Baltimore (MD): Johns Hopkins University; [consultado 2026-10-26]. Disponível em: https://www.omim.org/phenotypicSeries/PS607596
  3. Orphanet. Orphanet classification of rare genetic diseases (classificação 156): descendentes de ORPHA:98523 e anomalias relacionadas (ORPHA:727803, ORPHA:300570). Paris: INSERM; [consultado 2026-10-26]. Disponível em: https://www.orpha.net/en/disease/detail/98523
  4. van Dijk T, Baas F, Barth PG, Poll-The BT. What's new in pontocerebellar hypoplasia? An update on genes and subtypes. Orphanet J Rare Dis. 2018;13(1):92. doi:10.1186/s13023-018-0826-2. PMID: 29903031. PMC6003036.
  5. Moog U, Kutsche K. CASK Disorders. In: Adam MP, Bick S, Mirzaa GM, et al., editors. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–. 2013 Nov 26 [updated 2020 May 21]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK169825/
  6. Skopkova M, Stufkova H, Rambani V, Stranecky V, Brennerova K, Kolnikova M, et al. ATAD3A-related pontocerebellar hypoplasia: new patients and insights into phenotypic variability. Orphanet J Rare Dis. 2023;18(1):92. doi:10.1186/s13023-023-02689-3. PMID: 37095554. PMC10127305.
  7. Hebbink JA, Niermeijer JF, Vroegindeweij E, de Vries BBA, Pegge S, Kamsteeg EJ, et al. Autosomal Dominant FTH1 Variant Causing Pontocerebellar Hypoplasia and Late-Onset Neuroferritinopathy: A Case Report. Neurol Genet. 2026;12(1):e200342. doi:10.1212/NXG.0000000000200342. PMID: 41551370. PMC12807490.
  8. van Dijk T, Baas F. TSEN54 Pontocerebellar Hypoplasia. In: Adam MP, Bick S, Mirzaa GM, et al., editors. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–. 2009 Sep 8 [updated 2020 May 28]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK9673/
  9. Baas F, van Dijk T. EXOSC3 Pontocerebellar Hypoplasia. In: Adam MP, Bick S, Mirzaa GM, et al., editors. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–. 2014 Aug 21 [updated 2020 Sep 24]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK236968/
  10. Boycott KM, MacDonald SK, Parboosingh JS. VLDLR Cerebellar Hypoplasia. In: Adam MP, Bick S, Mirzaa GM, et al., editors. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–. 2008 Aug 26 [updated 2020 Feb 27]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1874/
  11. Schwabova J, Brozkova DS, Petrak B, Mojzisova M, Pavlickova K, Haberlova J, et al. Homozygous EXOSC3 mutation c.92G→C, p.G31A is a founder mutation causing severe pontocerebellar hypoplasia type 1 among the Czech Roma. J Neurogenet. 2013;27(4):163-9. doi:10.3109/01677063.2013.814651. PMID: 23883322.
  12. Haute Autorité de Santé. Protocole National de Diagnostic et de Soins (PNDS): Hypoplasies Ponto-Cérébelleuses (HPC). Centre de Référence des Malformations et Maladies Congénitales du Cervelet (coordenação Afenjar A, Rougeot-Jung C, Gozé-Martineau O, Burglen L); filière DéfiScience. Saint-Denis La Plaine: HAS; 2026 set 7 (texto de julho de 2026). Disponível em: https://www.has-sante.fr/jcms/p_4406492
  13. Zakaria RBM, Malta M, Pelletier F, Addour-Boudrahem N, Pinchefsky E, Martin CS, et al. Classic "PCH" Genes are a Rare Cause of Radiologic Pontocerebellar Hypoplasia. Cerebellum. 2024;23(2):418-430. doi:10.1007/s12311-023-01544-2. PMID: 36971923.
  14. Ivanov I, Atkinson D, Litvinenko I, Angelova L, Andonova S, Mumdjiev H, et al. Pontocerebellar hypoplasia type 1 for the neuropediatrician: Genotype-phenotype correlations and diagnostic guidelines based on new cases and overview of the literature. Eur J Paediatr Neurol. 2018;22(4):674-681. doi:10.1016/j.ejpn.2018.03.011. PMID: 29656927.
  15. Sánchez-Albisua I, Frölich S, Barth PG, Steinlin M, Krägeloh-Mann I. Natural course of pontocerebellar hypoplasia type 2A. Orphanet J Rare Dis. 2014;9:70. doi:10.1186/1750-1172-9-70. PMID: 24886362. PMC4019562.
  16. Renbaum P, Kellerman E, Jaron R, Geiger D, Segel R, Lee M, et al. Spinal muscular atrophy with pontocerebellar hypoplasia is caused by a mutation in the VRK1 gene. Am J Hum Genet. 2009;85(2):281-9. doi:10.1016/j.ajhg.2009.07.006. PMID: 19646678. PMC2725266.
  17. Eggens VR, Barth PG, Niermeijer JM, Berg JN, Darin N, Dixit A, et al. EXOSC3 mutations in pontocerebellar hypoplasia type 1: novel mutations and genotype-phenotype correlations. Orphanet J Rare Dis. 2014;9:23. doi:10.1186/1750-1172-9-23. PMID: 24524299. PMC3928094.
  18. Boczonadi V, Müller JS, Pyle A, Munkley J, Dor T, Quartararo J, et al. EXOSC8 mutations alter mRNA metabolism and cause hypomyelination with spinal muscular atrophy and cerebellar hypoplasia. Nat Commun. 2014;5:4287. doi:10.1038/ncomms5287. PMID: 24989451. PMC4102769.
  19. Burns DT, Donkervoort S, Müller JS, Knierim E, Bharucha-Goebel D, Faqeih EA, et al. Variants in EXOSC9 Disrupt the RNA Exosome and Result in Cerebellar Atrophy with Spinal Motor Neuronopathy. Am J Hum Genet. 2018;102(5):858-873. doi:10.1016/j.ajhg.2018.03.011. PMID: 29727687. PMC5986733.
  20. Sakamoto M, et al. Novel EXOSC9 variants cause pontocerebellar hypoplasia type 1D with spinal motor neuronopathy and cerebellar atrophy. J Hum Genet. 2021;66(4):401-407. doi:10.1038/s10038-020-00853-2. PMID: 33040083.
  21. Wan J, Steffen J, Yourshaw M, Mamsa H, Andersen E, Rudnik-Schöneborn S, et al. Loss of function of SLC25A46 causes lethal congenital pontocerebellar hypoplasia. Brain. 2016;139(11):2877-2890. doi:10.1093/brain/aww212. PMID: 27543974. PMC5840878.
  22. Abrams AJ, et al. Mutations in SLC25A46, encoding a UGO1-like protein, cause an optic atrophy spectrum disorder. Nat Genet. 2015;47(8):926-32. doi:10.1038/ng.3354. PMID: 26168012.
  23. Somashekar PH, Kaur P, Stephen J, Guleria VS, Kadavigere R, Girisha KM, et al. Bi-allelic missense variant, p.Ser35Leu in EXOSC1 is associated with pontocerebellar hypoplasia. Clin Genet. 2021;99(4):594-600. doi:10.1111/cge.13928. PMID: 33463720. PMC9990822.
  24. Damseh NS, Obeidat AN, Ahammed KS, Al-Ashhab M, Awad MA, van Hoof A. Pontocerebellar hypoplasia associated with p.Arg183Trp homozygous variant in EXOSC1 gene: A case report. Am J Med Genet A. 2023;191(7):1923-1928. doi:10.1002/ajmg.a.63198. PMID: 37024942. PMC10942657.
  25. Hayashi Y, Hamada K, Rethanavelu K, Tsuchida N, Uchiyama Y, Koshimizu E, et al. Biallelic TSEN2 variants causing pontocerebellar hypoplasia type 2. J Hum Genet. 2025;70(12):649-654. doi:10.1038/s10038-025-01393-3. PMID: 40858833.
  26. Canpolat N, Liu D, Atayar E, Saygili S, Kara NS, Westfall TA, et al. A splice site mutation in the TSEN2 causes a new syndrome with craniofacial and central nervous system malformations, and atypical hemolytic uremic syndrome. Clin Genet. 2022;101(3):346-358. doi:10.1111/cge.14105. PMID: 34964109. PMC10357464.
  27. Budde BS, Namavar Y, Barth PG, Poll-The BT, Nürnberg G, Becker C, et al. tRNA splicing endonuclease mutations cause pontocerebellar hypoplasia. Nat Genet. 2008;40(9):1113-8. doi:10.1038/ng.204. PMID: 18711368.
  28. Sekulovski S, et al. Assembly defects of human tRNA splicing endonuclease contribute to impaired pre-tRNA processing in pontocerebellar hypoplasia. Nat Commun. 2021;12(1):5610. doi:10.1038/s41467-021-25870-3. PMID: 34584079.
  29. Agamy O, Ben Zeev B, Lev D, Marcus B, Fine D, Su D, et al. Mutations disrupting selenocysteine formation cause progressive cerebello-cerebral atrophy. Am J Hum Genet. 2010;87(4):538-44. doi:10.1016/j.ajhg.2010.09.007. PMID: 20920667. PMC2948803.
  30. Killam BY, Knol MJ, Fradejas-Villar N, Chillon TS, Ruijter GJG, Bonte R, et al. Disease characteristics of SEPSECS deficiency: An international, retrospective, multicenter cohort study. Genet Med. 2026;28(11):102684. doi:10.1016/j.gim.2026.102684. PMID: 42603098.
  31. Feinstein M, Flusser H, Lerman-Sagie T, Ben-Zeev B, Lev D, Agamy O, et al. VPS53 mutations cause progressive cerebello-cerebral atrophy type 2 (PCCA2). J Med Genet. 2014;51(5):303-8. doi:10.1136/jmedgenet-2013-101823. PMID: 24577744.
  32. Hausman-Kedem M, et al. VPS53 gene is associated with a new phenotype of complicated hereditary spastic paraparesis. Neurogenetics. 2019;20(4):187-195. doi:10.1007/s10048-019-00586-1. PMID: 31418091.
  33. Breuss MW, Sultan T, James KN, Rosti RO, Scott E, Musaev D, et al. Autosomal-Recessive Mutations in the tRNA Splicing Endonuclease Subunit TSEN15 Cause Pontocerebellar Hypoplasia and Progressive Microcephaly. Am J Hum Genet. 2016;99(1):228-35. doi:10.1016/j.ajhg.2016.05.023. PMID: 27392077. PMC5005448.
  34. Ahmed MY, Chioza BA, Rajab A, Schmitz-Abe K, Al-Khayat A, Al-Turki S, et al. Loss of PCLO function underlies pontocerebellar hypoplasia type III. Neurology. 2015;84(17):1745-50. doi:10.1212/WNL.0000000000001523. PMID: 25832664. PMC4424132.
  35. Patel MS, et al. Severe, fetal-onset form of olivopontocerebellar hypoplasia in three sibs: PCH type 5? Am J Med Genet A. 2006;140(6):594-603. doi:10.1002/ajmg.a.31095. PMID: 16470708.
  36. Edvardson S, Shaag A, Kolesnikova O, Gomori JM, Tarassov I, Einbinder T, et al. Deleterious mutation in the mitochondrial arginyl-transfer RNA synthetase gene is associated with pontocerebellar hypoplasia. Am J Hum Genet. 2007;81(4):857-62. doi:10.1086/521227. PMID: 17847012. PMC2227936.
  37. van Dijk T, et al. RARS2 Mutations: Is Pontocerebellar Hypoplasia Type 6 a Mitochondrial Encephalopathy? JIMD Rep. 2017;33:87-92. doi:10.1007/8904_2016_584. PMID: 27683254.
  38. Lardelli RM, Schaffer AE, Eggens VR, Zaki MS, Grainger S, Sathe S, et al. Biallelic mutations in the 3' exonuclease TOE1 cause pontocerebellar hypoplasia and uncover a role in snRNA processing. Nat Genet. 2017;49(3):457-464. doi:10.1038/ng.3762. PMID: 28092684. PMC5325768.
  39. Pachapure SS, Kalavant B A, Kurbet SB, Sarathi V. 46,XY differences of sex development in pontocerebellar hypoplasia type 7 (PCH7): two case reports and systematic review. J Pediatr Endocrinol Metab. 2026;39(5):490-498. doi:10.1515/jpem-2025-0626. PMID: 41847829.
  40. Mochida GH, Ganesh VS, de Michelena MI, Dias H, Atabay KD, Kathrein KL, et al. CHMP1A encodes an essential regulator of BMI1-INK4A in cerebellar development. Nat Genet. 2012;44(11):1260-4. doi:10.1038/ng.2425. PMID: 23023333. PMC3567443.
  41. Akizu N, Cantagrel V, Schroth J, Cai N, Vaux K, McCloskey D, et al. AMPD2 regulates GTP synthesis and is mutated in a potentially treatable neurodegenerative brainstem disorder. Cell. 2013;154(3):505-17. doi:10.1016/j.cell.2013.07.005. PMID: 23911318. PMC3815927.
  42. Kortüm F, et al. Clinical and genetic spectrum of AMPD2-related pontocerebellar hypoplasia type 9. Eur J Hum Genet. 2018;26(5):695-708. doi:10.1038/s41431-018-0098-2. PMID: 29463858.
  43. Karaca E, Weitzer S, Pehlivan D, Shiraishi H, Gogakos T, Hanada T, et al. Human CLP1 mutations alter tRNA biogenesis, affecting both peripheral and central nervous system function. Cell. 2014;157(3):636-50. doi:10.1016/j.cell.2014.02.058. PMID: 24766809. PMC4146440.
  44. Schaffer AE, Eggens VR, Caglayan AO, Reuter MS, Scott E, Coufal NG, et al. CLP1 founder mutation links tRNA splicing and maturation to cerebellar development and neurodegeneration. Cell. 2014;157(3):651-63. doi:10.1016/j.cell.2014.03.049. PMID: 24766810. PMC4128918.
  45. Marin-Valencia I, Gerondopoulos A, Zaki MS, Ben-Omran T, Almureikhi M, Demir E, et al. Homozygous Mutations in TBC1D23 Lead to a Non-degenerative Form of Pontocerebellar Hypoplasia. Am J Hum Genet. 2017;101(3):441-450. doi:10.1016/j.ajhg.2017.07.015. PMID: 28823706. PMC5590949.
  46. Ivanova EL, Mau-Them FT, Riazuddin S, Kahrizi K, Laugel V, Schaefer E, et al. Homozygous Truncating Variants in TBC1D23 Cause Pontocerebellar Hypoplasia and Alter Cortical Development. Am J Hum Genet. 2017;101(3):428-440. doi:10.1016/j.ajhg.2017.07.010. PMID: 28823707. PMC5590842.
  47. Altıntaş M, Yıldırım M, Leblebici CB, Yürür Kutlay N, Kaynak Şahap S, Bektaş Ö, et al. Pontocerebellar Hypoplasia Type 11 Case with a Novel Variant of TBC1D23 Gene: Case Report and Literature Review. Cerebellum. 2026;25(3). doi:10.1007/s12311-026-02002-5. PMID: 41979712.
  48. van Dijk T, Ferdinandusse S, Ruiter JPN, Alders M, Mathijssen IB, Parboosingh JS, et al. Biallelic loss of function variants in COASY cause prenatal onset pontocerebellar hypoplasia, microcephaly, and arthrogryposis. Eur J Hum Genet. 2018;26(12):1752-1758. doi:10.1038/s41431-018-0233-0. PMID: 30089828. PMC6244412.
  49. Lynch M, Manoy S, Murray C, Wallace G, Pereira N, Price R, et al. Abnormal Newborn Screening Resembling Carnitine Palmitoyltransferase 1a Deficiency in Three Patients With COASY Protein Associated Neurodegeneration. JIMD Rep. 2026;67(2):e70066. doi:10.1002/jmd2.70066. PMID: 41767121. PMC12946450.
  50. Gershlick DC, Ishida M, Jones JR, Bellomo A, Bonifacino JS, Everman DB. A neurodevelopmental disorder caused by mutations in the VPS51 subunit of the GARP and EARP complexes. Hum Mol Genet. 2019;28(9):1548-1560. doi:10.1093/hmg/ddy423. PMID: 30624672. PMC6489419.
  51. Chai G, Webb A, Li C, Antaki D, Lee S, Breuss MW, et al. Mutations in Spliceosomal Genes PPIL1 and PRP17 Cause Neurodegenerative Pontocerebellar Hypoplasia with Microcephaly. Neuron. 2021;109(2):241-256.e9. doi:10.1016/j.neuron.2020.10.035. PMID: 33220177. PMC8800389.
  52. Abdel-Salam GMH, Abdel-Hamid MS. A founder PPIL1 variant underlies a recognizable form of microlissencephaly with pontocerebellar hypoplasia. Clin Genet. 2023;104(3):356-364. doi:10.1111/cge.14357. PMID: 37190898.
  53. Olimpio C, et al. Increased Diagnostic Yield by Reanalysis of Whole Exome Sequencing Data in Mitochondrial Disease. J Neuromuscul Dis. 2024;11(4):767-775. doi:10.3233/JND-240020. PMID: 38759022.
  54. Ucuncu E, Rajamani K, Wilson MSC, Medina-Cano D, Altin N, David P, et al. MINPP1 prevents intracellular accumulation of the chelator inositol hexakisphosphate and is mutated in Pontocerebellar Hypoplasia. Nat Commun. 2020;11(1):6087. doi:10.1038/s41467-020-19919-y. PMID: 33257696. PMC7705663.
  55. Abdel-Ghafar SF, Ahmed AE, Mohammed ET, Abdel-Salam GMH, Zaki MS, Abdel-Hamid MS. MINPP1 -Related Pontocerebellar Hypoplasia in Five New Patients: Identification of Three Novel Variants and Further Phenotype Delineation. Clin Genet. 2026;109(4):754-761. doi:10.1111/cge.70085. PMID: 41025723.
  56. Coolen M, Altin N, Rajamani K, Pereira E, Siquier-Pernet K, Puig Lombardi E, et al. Recessive PRDM13 mutations cause fatal perinatal brainstem dysfunction with cerebellar hypoplasia and disrupt Purkinje cell differentiation. Am J Hum Genet. 2022;109(5):909-927. doi:10.1016/j.ajhg.2022.03.010. PMID: 35390279. PMC9118116.
  57. Whittaker DE, Oleari R, Gregory LC, Le Quesne-Stabej P, Williams HJ, Torpiano JG, et al. A recessive PRDM13 mutation results in congenital hypogonadotropic hypogonadism and cerebellar hypoplasia. J Clin Invest. 2021;131(24). doi:10.1172/JCI141587. PMID: 34730112. PMC8670848.
  58. Burglen L, Chantot-Bastaraud S, Garel C, Milh M, Touraine R, Zanni G, et al. Spectrum of pontocerebellar hypoplasia in 13 girls and boys with CASK mutations: confirmation of a recognizable phenotype and first description of a male mosaic patient. Orphanet J Rare Dis. 2012;7:18. doi:10.1186/1750-1172-7-18. PMID: 22452838. PMC3351739.
  59. Boycott KM, Flavelle S, Bureau A, Glass HC, Fujiwara TM, Wirrell E, et al. Homozygous deletion of the very low density lipoprotein receptor gene causes autosomal recessive cerebellar hypoplasia with cerebral gyral simplification. Am J Hum Genet. 2005;77(3):477-83. doi:10.1086/444400. PMID: 16080122. PMC1226212.
  60. Türkmen S, et al. CA8 mutations cause a novel syndrome characterized by ataxia and mild mental retardation with predisposition to quadrupedal gait. PLoS Genet. 2009;5(5):e1000487. doi:10.1371/journal.pgen.1000487. PMID: 19461874.
  61. Firth HV, Hurst JA. Intellectual disability with apparent X-linked inheritance. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 194–197.
  62. Firth HV, Hurst JA. Cerebellar anomalies. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 92–95.
  63. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 39, Disorders of nucleic acid metabolism, tRNA metabolism and ribosomal biogenesis (39.1, 39.2.1–39.2.3, 39.3).
  64. Barth PG, Blennow G, Lenard HG, Begeer JH, van der Kley JM, Hanefeld F, et al. The syndrome of autosomal recessive pontocerebellar hypoplasia, microcephaly, and extrapyramidal dyskinesia (pontocerebellar hypoplasia type 2): compiled data from 10 pedigrees. Neurology. 1995;45(2):311-7. doi:10.1212/wnl.45.2.311. PMID: 7854532.
  65. Najm J, et al. Mutations of CASK cause an X-linked brain malformation phenotype with microcephaly and hypoplasia of the brainstem and cerebellum. Nat Genet. 2008;40(9):1065-7. doi:10.1038/ng.194. PMID: 19165920.
  66. Wan J, Yourshaw M, Mamsa H, Rudnik-Schöneborn S, Menezes MP, Hong JE, et al. Mutations in the RNA exosome component gene EXOSC3 cause pontocerebellar hypoplasia and spinal motor neuron degeneration. Nat Genet. 2012;44(6):704-8. doi:10.1038/ng.2254. PMID: 22544365. PMC3366034.
  67. Glass HC, et al. Autosomal recessive cerebellar hypoplasia in the Hutterite population. Dev Med Child Neurol. 2005;47(10):691-5. doi:10.1017/S0012162205001404. PMID: 16174313.
  68. Namavar Y, Barth PG, Poll-The BT, Baas F. Classification, diagnosis and potential mechanisms in pontocerebellar hypoplasia. Orphanet J Rare Dis. 2011;6:50. doi:10.1186/1750-1172-6-50. PMID: 21749694. PMC3159098.
  69. Sakamoto M, et al. A novel homozygous CHMP1A variant arising from segmental uniparental disomy causes pontocerebellar hypoplasia type 8. J Hum Genet. 2023;68(4):247-253. doi:10.1038/s10038-022-01098-x. PMID: 36509868.
  70. Škarica M, Acsadi G, Živković SA. Pontocerebellar Hypoplasia Type 1 and Associated Neuronopathies. Genes (Basel). 2025;16(5). doi:10.3390/genes16050585. PMID: 40428407. PMC12111444.
  71. Barkovich AJ, Millen KJ, Dobyns WB. A developmental and genetic classification for midbrain-hindbrain malformations. Brain. 2009;132(Pt 12):3199-230. doi:10.1093/brain/awp247. PMID: 19933510. PMC2792369.
  72. Doherty D, Millen KJ, Barkovich AJ. Midbrain and hindbrain malformations: advances in clinical diagnosis, imaging, and genetics. Lancet Neurol. 2013;12(4):381-93. doi:10.1016/S1474-4422(13)70024-3. PMID: 23518331. PMC4158743.
  73. Volpe JJ, et al. Cerebellum of the premature infant: rapidly developing, vulnerable, clinically important. J Child Neurol. 2009;24(9):1085-104. doi:10.1177/0883073809338067. PMID: 19745085.
  74. Paushkin SV, et al. Identification of a human endonuclease complex reveals a link between tRNA splicing and pre-mRNA 3' end formation. Cell. 2004;117(3):311-21. doi:10.1016/s0092-8674(04)00342-3. PMID: 15109492.
  75. Müller JS, et al. RNA exosome mutations in pontocerebellar hypoplasia alter ribosome biogenesis and p53 levels. Life Sci Alliance. 2020;3:8. doi:10.26508/lsa.202000678. PMID: 32527837.
  76. Abrams AJ, et al. Insights into the genotype-phenotype correlation and molecular function of SLC25A46. Hum Mutat. 2018;39(12):1995-2007. doi:10.1002/humu.23639. PMID: 30178502.
  77. van Dijk T, et al. Pontocerebellar hypoplasia with spinal muscular atrophy (PCH1): identification of SLC25A46 mutations in the original Dutch PCH1 family. Brain. 2017;140(8):e46. doi:10.1093/brain/awx147. PMID: 28637197.
  78. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 34, 34.2.3.4 COASY associated neurodegeneration (CoPAN).
  79. Liu K, Chen Y, Meng Y, Wang X, Tang X, Li H, et al. Identification and functional analysis of a novel TBC1D23 pathogenic variant in a Chinese family with pontocerebellar hypoplasia. Hum Genomics. 2025;19(1):72. doi:10.1186/s40246-025-00782-1. PMID: 40581672. PMC12206363.
  80. LaConte LEW, et al. An N-terminal heterozygous missense CASK mutation is associated with microcephaly and bilateral retinal dystrophy plus optic nerve atrophy. Am J Med Genet A. 2019;179(1):94-103. doi:10.1002/ajmg.a.60687. PMID: 30549415.
  81. Freeman PJ, Hart RK, Gretton LJ, Brookes AJ, Dalgleish R. VariantValidator: accurate validation, mapping, and formatting of sequence variation descriptions. Hum Mutat. 2018;39(1):61-8. doi:10.1002/humu.23348. PMID: 28967166.
  82. National Center for Biotechnology Information. ClinVar [Internet]. Bethesda (MD): NCBI; [consultado 2026-10-26]. VCV000002124, VCV001065404, VCV000521856, VCV000012200, VCV000030751. Disponível em: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar/
  83. Cassandrini D, Biancheri R, Tessa A, Di Rocco M, Di Capua M, Bruno C, et al. Pontocerebellar hypoplasia: clinical, pathologic, and genetic studies. Neurology. 2010;75(16):1459-64. doi:10.1212/WNL.0b013e3181f88173. PMID: 20956791.
  84. Rudnik-Schöneborn S, Senderek J, Jen JC, Houge G, Seeman P, Puchmajerová A, et al. Pontocerebellar hypoplasia type 1: clinical spectrum and relevance of EXOSC3 mutations. Neurology. 2013;80(5):438-46. doi:10.1212/WNL.0b013e31827f0f66. PMID: 23284067. PMC3590055.
  85. Le Duc D, et al. Novel EXOSC3 pathogenic variant results in a mild course of neurologic disease with cerebellum involvement. Eur J Med Genet. 2020;63(2):103649. doi:10.1016/j.ejmg.2019.04.006. PMID: 30986545.
  86. Amin M, et al. Case Report: A New Family With Pontocerebellar Hypoplasia 10 From Sudan. Front Genet. 2022;13:883211. doi:10.3389/fgene.2022.883211. PMID: 35719383.
  87. Greenbaum L, et al. Identification of a homozygous VRK1 mutation in two patients with adult-onset distal hereditary motor neuropathy. Muscle Nerve. 2020;61(3):395-400. doi:10.1002/mus.26779. PMID: 31837156.
  88. Micalizzi A, et al. Very mild features of dysequilibrium syndrome associated with a novel VLDLR missense mutation. Neurogenetics. 2016;17(3):191-5. doi:10.1007/s10048-016-0488-y. PMID: 27251579.
  89. Rama Devi AR, et al. Identification and in Silico Characterization of a Novel CASK c.2546T>C (p.V849A) Mutation in a Male Infant with Pontocerebellar Hypoplasia. Ann Indian Acad Neurol. 2019;22(4):523-524. doi:10.4103/aian.AIAN_2_19. PMID: 31736593.
  90. Arkush L, van Woerden GM, Ziv L, Marek-Yagel D, Fonseca R, Brevé E, et al. Biallelic MED29 variants cause pontocerebellar hypoplasia with cataracts. Eur J Hum Genet. 2025;33(10):1271-1280. doi:10.1038/s41431-025-01918-6. PMID: 40745490. PMC12480692.
  91. Yuen M, Zhang K, Marchant RG, Ishimura R, Graham M, Aung-Htut M, et al. A severe neurodevelopmental syndrome linked to a South Asian founder variant in the UFMylation adaptor CDK5RAP3. Acta Neuropathol. 2026;151(1). doi:10.1007/s00401-026-03017-2. PMID: 42045457. PMC13121207.
  92. Namavar Y, Barth PG, Kasher PR, van Ruissen F, Brockmann K, Bernert G, et al. Clinical, neuroradiological and genetic findings in pontocerebellar hypoplasia. Brain. 2011;134(Pt 1):143-56. doi:10.1093/brain/awq287. PMID: 20952379. PMC9136852.
  93. Saugier-Veber P, et al. Pontocerebellar hypoplasia with rhombencephalosynapsis and microlissencephaly expands the spectrum of PCH type 1B. Eur J Med Genet. 2020;63(4):103814. doi:10.1016/j.ejmg.2019.103814. PMID: 31770597.
  94. Gilboa T, et al. Delineating the phenotype and genetic basis of AMPD2-related pontocerebellar hypoplasia. Neurogenetics. 2023;24(1):61-66. doi:10.1007/s10048-022-00706-4. PMID: 36445597.
  95. Moog U, Bierhals T, Brand K, Bautsch J, Biskup S, Brune T, et al. Phenotypic and molecular insights into CASK-related disorders in males. Orphanet J Rare Dis. 2015;10:44. doi:10.1186/s13023-015-0256-3. PMID: 25886057. PMC4449965.
  96. Stoll M, et al. Novel motor phenotypes in patients with VRK1 mutations without pontocerebellar hypoplasia. Neurology. 2016;87(1):65-70. doi:10.1212/WNL.0000000000002813. PMID: 27281532.
  97. Novarino G, et al. Exome sequencing links corticospinal motor neuron disease to common neurodegenerative disorders. Science. 2014;343(6170):506-511. doi:10.1126/science.1247363. PMID: 24482476.
  98. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 32, 32.1.5 AMP deaminase-2 deficiency (e Tabela 32.1).
  99. Dusi S, et al. Exome sequence reveals mutations in CoA synthase as a cause of neurodegeneration with brain iron accumulation. Am J Hum Genet. 2014;94(1):11-22. doi:10.1016/j.ajhg.2013.11.008. PMID: 24360804.
  100. Cavestro C, et al. Emerging variants, unique phenotypes, and transcriptomic signatures: an integrated study of COASY-associated diseases. Ann Clin Transl Neurol. 2024;11(6):1615-1629. doi:10.1002/acn3.52079. PMID: 38750253.
  101. Di Meo I, Anikster Y, Tiranti V, Iuso A. From Common Pathway to Divergent Diseases: Metabolic Aspects of Inborn Errors of CoA Biosynthesis. J Inherit Metab Dis. 2026;49(5):e70239. doi:10.1002/jimd.70239. PMID: 42601840. PMC13476743.
  102. Hady-Cohen R, et al. Progressive cerebello-cerebral atrophy and progressive encephalopathy with edema, hypsarrhythmia and optic atrophy may be allelic syndromes. Eur J Paediatr Neurol. 2018;22(6):1133-1138. doi:10.1016/j.ejpn.2018.07.003. PMID: 30100179.
  103. Halevy A, et al. Novel EXOSC3 mutation causes complicated hereditary spastic paraplegia. J Neurol. 2014;261(11):2165-9. doi:10.1007/s00415-014-7457-x. PMID: 25149867.
  104. Van de Sompele S, et al. Multi-omics approach dissects cis-regulatory mechanisms underlying North Carolina macular dystrophy, a retinal enhanceropathy. Am J Hum Genet. 2022;109(11):2029-2048. doi:10.1016/j.ajhg.2022.09.013. PMID: 36243009.
  105. Dunn P, et al. A de novo splice site mutation in CASK causes FG syndrome-4 and congenital nystagmus. Am J Med Genet A. 2017;173(3):611-617. doi:10.1002/ajmg.a.38069. PMID: 28139025.
  106. Barth PG, et al. Pontocerebellar hypoplasia type 2: a neuropathological update. Acta Neuropathol. 2007;114(4):373-86. doi:10.1007/s00401-007-0263-0. PMID: 17641900.
  107. Anderson C, et al. Early pontocerebellar hypoplasia with vanishing testes: A new syndrome? Am J Med Genet A. 2011;155A(4):667-72. doi:10.1002/ajmg.a.33897. PMID: 21594990.
  108. Newman JM, Vogel H. Neuropathological findings of very low-density lipoprotein receptor-related cerebellar hypoplasia in a full-term fetus. J Neuropathol Exp Neurol. 2025;84(12):1135-1142. doi:10.1093/jnen/nlaf110. PMID: 40974083. PMC12713548.
  109. Herrmann A, Kuhn A, Hackenberg M, Matilainen J, Mayer S, Groeschel S, et al. Diagnostic Clues and Pitfalls in Pontocerebellar Hypoplasia Type 2A. Pediatr Neurol. 2026;178:186-194. doi:10.1016/j.pediatrneurol.2026.02.019. PMID: 41875837.
  110. Kuhn A, Hackenberg M, Klauser AL, Herrmann A, Matilainen J, Mayer S, et al. Constructed growth charts and nutrition for pontocerebellar hypoplasia type 2A. Dev Med Child Neurol. 2026;68(1):82-90. doi:10.1111/dmcn.16394. PMID: 40665551. PMC12683303.
  111. Bierhals T, et al. Pontocerebellar hypoplasia type 2 and TSEN2: review of the literature and two novel mutations. Eur J Med Genet. 2013;56(6):325-30. doi:10.1016/j.ejmg.2013.03.009. PMID: 23562994.
  112. Zhao R, et al. Analysis of the Clinical Features and Imaging Findings of Pontocerebellar Hypoplasia Type 2D Caused by Mutations in SEPSECS Gene. Cerebellum. 2023;22(5):938-946. doi:10.1007/s12311-022-01470-9. PMID: 36085396.
  113. Rezaei Z, Emami F, Heidari M, Mohammadi M, Yousefian M, Badv RS, et al. Genetic and clinical insights into pontocerebellar hypoplasia: Identification of novel variants in an Iranian cohort. Eur J Med Genet. 2026;81:105074. doi:10.1016/j.ejmg.2026.105074. PMID: 41825724.
  114. Walsh PR, Basu U, Barakat TS, Beck BB, Bertini E, Brocklebank V, et al. Biallelic pathogenic variants in EXOSC3 mediate thrombotic microangiopathy of the kidney. Kidney Int. 2026;110(4):1013-1021. doi:10.1016/j.kint.2026.06.028. PMID: 42486191.
  115. Rodríguez-García ME, et al. New subtype of PCH1C caused by novel EXOSC8 variants in a 16-year-old Spanish patient. Neuromuscul Disord. 2021;31(8):773-782. doi:10.1016/j.nmd.2021.05.008. PMID: 34210538.
  116. Zaki MS, et al. A missense variant in EXOSC8 causes exon skipping and expands the phenotypic spectrum of pontocerebellar hypoplasia type 1C. J Hum Genet. 2024;69(2):79-84. doi:10.1038/s10038-023-01207-4. PMID: 38017281.
  117. Dabaj I, et al. Pontocerebellar Hypoplasia Type 1D: A Case Report and Comprehensive Literature Review. J Clin Med. 2022;11:15. doi:10.3390/jcm11154335. PMID: 35893425.
  118. Rajab A, et al. A novel form of pontocerebellar hypoplasia maps to chromosome 7q11-21. Neurology. 2003;60(10):1664-7. doi:10.1212/01.wnl.0000068548.58498.41. PMID: 12771259.
  119. Zhao S, et al. Clinical and genetic analysis of infants with pontocerebellar hypoplasia type 6 caused by RARS2 variations. Epilepsia Open. 2024;9(1):250-257. doi:10.1002/epi4.12862. PMID: 38009286.
  120. Zhang Y, et al. Novel RARS2 Variants: Updating the Diagnosis and Pathogenesis of Pontocerebellar Hypoplasia Type 6. Pediatr Neurol. 2022;131:30-41. doi:10.1016/j.pediatrneurol.2022.04.002. PMID: 35468344.
  121. Chen H, et al. Novel compound heterozygous variant of TOE1 results in a mild type of pontocerebellar hypoplasia type 7: an expansion of the clinical phenotype. Neurogenetics. 2022;23(1):11-17. doi:10.1007/s10048-021-00675-0. PMID: 34716526.
  122. He T, et al. Novel bi-allelic variants of CHMP1A contribute to pontocerebellar hypoplasia type 8: additional clinical and genetic evidence. Front Neurol. 2023;14:1228218. doi:10.3389/fneur.2023.1228218. PMID: 37789895.
  123. Marsh AP, et al. Complete callosal agenesis, pontocerebellar hypoplasia, and axonal neuropathy due to AMPD2 loss. Neurol Genet. 2015;1(2):e16. doi:10.1212/NXG.0000000000000014. PMID: 27066553.
  124. Accogli A, et al. Novel AMPD2 mutation in pontocerebellar hypoplasia, dysmorphisms, and teeth abnormalities. Neurol Genet. 2017;3(5):e179. doi:10.1212/NXG.0000000000000179. PMID: 28815207.
  125. Walker L, Randolph LM, Sun M. A novel variant combination in COASY associates with severe prenatal onset PCH12: expanding the clinical and genetic spectrum. MedScience. 2026;20(3):539-545. doi:10.1007/s11684-026-1241-z. PMID: 42387110.
  126. Garnier C, Mégier C, Dumery G, Encha-Razavi F, Martinovic J. Fetal Expression of Pontocerebellar Hypoplasia Linked to Pathogenic COASY Variants. Pediatr Dev Pathol. 2026;29(5):584-591. doi:10.1177/10935266261434714. PMID: 42035325.
  127. Uwineza A, et al. VPS51 biallelic variants cause microcephaly with brain malformations: A confirmatory report. Eur J Med Genet. 2019;62(8):103704. doi:10.1016/j.ejmg.2019.103704. PMID: 31207318.
  128. Aygun D, et al. From Gene to Pathways: Understanding Novel Vps51 Variant and Its Cellular Consequences. Int J Mol Sci. 2025;26:12. doi:10.3390/ijms26125709. PMID: 40565173.
  129. Li YC, et al. [A case report and literature review of pontocerebellar hypoplasia type 13 combined with abnormal liver function caused by VPS51 gene variation]. Zhonghua Gan Zang Bing Za Zhi. 2024;32(4):363-366. doi:10.3760/cma.j.cn501113-20231128-00244. PMID: 38733192.
  130. Appelhof B, et al. Pontocerebellar hypoplasia due to bi-allelic variants in MINPP1. Eur J Hum Genet. 2021;29(3):411-421. doi:10.1038/s41431-020-00749-x. PMID: 33168985.
  131. Moog U, Kutsche K, Kortüm F, Chilian B, Bierhals T, Apeshiotis N, et al. Phenotypic spectrum associated with CASK loss-of-function mutations. J Med Genet. 2011;48(11):741-51. doi:10.1136/jmedgenet-2011-100218. PMID: 21954287.
  132. Obara K, Abe E, Toyoshima I. Intellectual Disability and Microcephaly With Pontine and Cerebellar Hypoplasia in Adults: Severity Spectrum and Diversity of the CASK Gene Aberrations. Cureus. 2026;18(5):e109777. doi:10.7759/cureus.109777. PMID: 42367460. PMC13309628.
  133. Saitsu H, et al. CASK aberrations in male patients with Ohtahara syndrome and cerebellar hypoplasia. Epilepsia. 2012;53(8):1441-9. doi:10.1111/j.1528-1167.2012.03548.x. PMID: 22709267.
  134. Takanashi J, et al. Clinical and radiological features of Japanese patients with a severe phenotype due to CASK mutations. Am J Med Genet A. 2012;158A(12):3112-8. doi:10.1002/ajmg.a.35640. PMID: 23165780.
  135. Martin J, Mavrogalou-Foti A, Eck J, Hattersley L, Baker K. The neurodevelopmental spectrum of CASK-related disorder. J Neurodev Disord. 2025;17(1):60. doi:10.1186/s11689-025-09643-3. PMID: 41039189. PMC12492526.
  136. Chen Y, Cao J, Li J, Wang G, Que Y, Chai W, et al. Clinical and genetic spectrum of CASK-related disorders in Chinese patients. J Neurol. 2026;273(6). doi:10.1007/s00415-026-13637-z. PMID: 42133085.
  137. Pacheva IH, Timova E, Todorov T, Sotkova I, Gaberova K, Yordanova R, et al. Clinical heterogeneity and diagnostic challenges in CASK-related neurodevelopmental disorders: a longitudinal observational study. Front Psychiatry. 2026;17:1804756. doi:10.3389/fpsyt.2026.1804756. PMID: 42517139. PMC13403493.
  138. Chen J, Yang S, Chen X, Cheng Y, Liu S, Xiao Y, et al. Microcephaly, Cerebellar Hypoplasia, Enlarged Posterior Fossa and Polyhydramnios: Prenatal Phenotypes for CASK-Related Disorders. Prenat Diagn. 2025;45(13):1791-1794. doi:10.1002/pd.70017. PMID: 41188681.
  139. Singh T, Kansal B, Roy Chowdhury S, Ganguly J, Kumar A, Sharma S. Teaching Video NeuroImage: CASK-Related Pontocerebellar Hypoplasia With Complex Movement Disorder. Neurology. 2025;105(10):e214377. doi:10.1212/WNL.0000000000214377. PMID: 41144840.
  140. Ozcelik T, et al. Mutations in the very low-density lipoprotein receptor VLDLR cause cerebellar hypoplasia and quadrupedal locomotion in humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105(11):4232-6. doi:10.1073/pnas.0710010105. PMID: 18326629.
  141. Jawabri AA, Salazar-Villacorta A, Senghor H, Ndiaye R, Al-Mehrzi A, Diop AG, et al. Identification of a Novel VLDLR Variant in the First Report of CAMRQ1 From Africa: Expanding the Spectrum of Cerebellar Ataxia Syndromes. Hum Mutat. 2026;2026:4661238. doi:10.1155/humu/4661238. PMID: 42051465. PMC13112595.
  142. Firth HV, Hurst JA. Ataxic child. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 74–77.
  143. Hospices Civils de Lyon. Perinatal and Long-term Outcome of Newborns With an Isolated Small Transverse Cerebellar Diameter. ClinicalTrials.gov identifier NCT03572868. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT03572868
  144. European Medicines Agency. Buccolam (midazolam) oromucosal solution: EPAR — product information (SmPC). Disponível em: https://www.ema.europa.eu/en/documents/product-information/buccolam-epar-product-information_en.pdf
  145. Stander Z, White AL, Lynch M, Coman D, Rosati J, Bailey D, et al. COASY-Associated Disorders as a Differential Diagnosis in Cases with Newborn Screening Results Suggestive of CPT-I. Int J Neonatal Screen. 2026;12(2). doi:10.3390/ijns12020025. PMID: 42029543. PMC13108042.
  146. Steinlin M, et al. Pontocerebellar hypoplasia type 2: variability in clinical and imaging findings. Eur J Paediatr Neurol. 2007;11(3):146-52. doi:10.1016/j.ejpn.2006.11.012. PMID: 17320436.
  147. Firth HV, Hurst JA. Posterior fossa malformations. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 776–777.
  148. Takanashi J, et al. Neuroradiologic features of CASK mutations. AJNR Am J Neuroradiol. 2010;31(9):1619-22. doi:10.3174/ajnr.A2173. PMID: 20595373.
  149. Cristofoli F, et al. Novel CASK mutations in cases with syndromic microcephaly. Hum Mutat. 2018;39(7):993-1001. doi:10.1002/humu.23536. PMID: 29691940.
  150. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 1, Clinical approach to inborn errors of metabolism in paediatrics (1.3.10.2, Table 1.5; 1.5, Table 1.19).
  151. Fedeli V, et al. Human plasma inositol hexakisphosphate (InsP (6) ) phosphatase identified as the Multiple Inositol Polyphosphate Phosphatase 1 (MINPP1). MicroPubl Biol. 2024;2024. doi:10.17912/micropub.biology.001390. PMID: 39665074.
  152. Malta M, Fortin O, Badner B, Charouf D, Addour-Boudrahem N, Beaudet-Leclair O, et al. Posterior Fossa Malformations in a Cohort of 116 Fetuses: A Retrospective Analysis of Imaging Characteristics, Postnatal Imaging Concordance, Pregnancy Outcomes and Yield of Genetic Testing. Cerebellum. 2026;25(3). doi:10.1007/s12311-026-02009-y. PMID: 42126681.
  153. Povlow MR, Esmeraldo MA, Dahmoush HM, Halverson MR, Barsh GR, Soares BP. Prenatal Diagnosis of VLDLR-associated Cerebellar Hypoplasia via Fetal MRI. Neuropediatrics. 2026;57(1):73-74. doi:10.1055/a-2736-4758. PMID: 41213595.
  154. Jaillard A, Valence S, Vande Perre S, Dhombres F, Héron D, Billette de Villemeur T, et al. Prenatal diagnosis of pontocerebellar hypoplasia with postnatal follow-up. Prenat Diagn. 2024;44(1):35-48. doi:10.1002/pd.6495. PMID: 38165124.
  155. Ng BG, et al. Clinical and biochemical footprints of congenital disorders of glycosylation: Proposed nosology. Mol Genet Metab. 2024;142(1):108476. doi:10.1016/j.ymgme.2024.108476. PMID: 38653092.
  156. Nyhan WL, Hoffmann GF, Al-Aqeel AI, Barshop BA. PMM2-CDG (congenital disorders of glycosylation, type Ia). In: Atlas of Inherited Metabolic Diseases. 4th ed. Boca Raton: CRC Press; 2020. Capítulo 101, p. 771–777.
  157. Jones KL, Jones MC, del Campo M. Walker-Warburg syndrome. In: Smith's Recognizable Patterns of Human Malformation. 8th ed. Philadelphia: Elsevier; 2022. p. 256–257.
  158. Firth HV, Hurst JA. Lissencephaly, polymicrogyria and neuronal migration. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 216–220.
  159. Volpe JJ, et al. Brain injury in premature infants: a complex amalgam of destructive and developmental disturbances. Lancet Neurol. 2009;8(1):110-24. doi:10.1016/S1474-4422(08)70294-1. PMID: 19081519.
  160. Pierson CR, et al. Preterm birth and cerebellar neuropathology. Semin Fetal Neonatal Med. 2016;21(5):305-11. doi:10.1016/j.siny.2016.04.006. PMID: 27161081.
  161. Firth HV, Hurst JA. Cytomegalovirus (CMV). In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 716–717.
  162. Aquino LMM, Tavares WA, Ribeiro EM. Síndrome de Edwards. In: Ribeiro EM, coord. Síndromes Genéticas: Reconhecer para Tratar. Fortaleza: EdUnichristus; 2021. p. 21–23.
  163. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 44, Disorders of cellular trafficking (tabelas de fenótipos neurológicos).
  164. Spranger JW, Brill PW, Hall C, Nishimura G, Superti-Furga A, Unger S. Bone Dysplasias: An Atlas of Genetic Disorders of Skeletal Development. 4th ed. Oxford University Press; 2018. p. 660–662 (17.11 Sclerosteo-cerebellar syndrome).
  165. Saudubray JM, Baumgartner MR, García-Cazorla Á, Walter J, editors. Inborn Metabolic Diseases: Diagnosis and Treatment. 7th ed. Berlin: Springer; 2022. Chapter 35, 35.4.2 Phospholipase A2 (PLA2G6, PNPLA9) deficiency.
  166. Parikh S, et al. Diagnosis and management of mitochondrial disease: a consensus statement from the Mitochondrial Medicine Society. Genet Med. 2015;17(9):689-701. doi:10.1038/gim.2014.177. PMID: 25503498.
  167. Abdel-Salam GMH, Abdel-Hamid MS, Abdel-Ghafar SF, Girgis M, Zaki MS. Refining the phenotypic spectrum of PNKP-related microcephaly: a study of 27 new patients. J Med Genet. 2026;63(4):250-258. doi:10.1136/jmg-2025-111040. PMID: 41436176.
  168. Firth HV, Hurst JA. Fetal akinesia. In: Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 724–727.
  169. Forman MS, et al. Genotypically defined lissencephalies show distinct pathologies. J Neuropathol Exp Neurol. 2005;64(10):847-57. doi:10.1097/01.jnen.0000182978.56612.41. PMID: 16215456.
  170. Delgado MR, Hirtz D, Aisen M, Ashwal S, Fehlings DL, McLaughlin J, et al. Practice parameter: pharmacologic treatment of spasticity in children and adolescents with cerebral palsy (an evidence-based review): report of the Quality Standards Subcommittee of the American Academy of Neurology and the Practice Committee of the Child Neurology Society. Neurology. 2010;74(4):336-43. doi:10.1212/WNL.0b013e3181cbcd2f. PMID: 20101040. PMC3122302.
  171. Fehlings D, Brown L, Harvey A, Himmelmann K, Lin JP, Macintosh A, et al. Pharmacological and neurosurgical interventions for managing dystonia in cerebral palsy: a systematic review. Dev Med Child Neurol. 2018;60(4):356-366. doi:10.1111/dmcn.13652. PMID: 29405267.
  172. Prilosec (omeprazole magnesium) for delayed-release oral suspension, prescribing information. NDA 022056. Revisão 2024-03-19. DailyMed set id b6761f84-53ac-4745-a8c8-1e5427d7e179.
  173. European Medicines Agency. Slenyto (melatonin) prolonged-release tablets: EPAR — product information (SmPC). Disponível em: https://www.ema.europa.eu/en/documents/product-information/slenyto-epar-product-information_en.pdf
  174. Colonis Pharma Limited. Phenobarbital Colonis 50 mg/5 ml Oral Suspension: Summary of Product Characteristics. Revisão 2026-03-16. electronic medicines compendium (emc). Disponível em: https://www.medicines.org.uk/emc/product/102162/smpc
  175. Sezaby (phenobarbital sodium) powder for injection, prescribing information. NDA 215910. Revisão 2025-12-23. DailyMed set id 8c7d0402-4977-4c25-bc4b-11db91339e9a. Disponível em: https://dailymed.nlm.nih.gov/dailymed/drugInfo.cfm?setid=8c7d0402-4977-4c25-bc4b-11db91339e9a
  176. Topiramate tablets, prescribing information (genérico ANDA 078235; RLD Topamax NDA 020505). Revisão 2026-07-08. Disponível em: https://www.accessdata.fda.gov/scripts/cder/daf/index.cfm?event=overview.process&ApplNo=078235
  177. Keppra (levetiracetam) tablets and oral solution, prescribing information. NDA 021035/021505. Revisão 2026-01-28. Disponível em: https://www.accessdata.fda.gov/scripts/cder/daf/index.cfm?event=overview.process&ApplNo=021035
  178. Sabril (vigabatrin) tablets and powder for oral solution, prescribing information. NDA 020427. Revisão 2021-10-20. DailyMed set id a5d389d2-d0e1-4395-a2a2-b552808e7f98.
  179. Depakote (divalproex sodium) delayed-release tablets, prescribing information. NDA 018723. Revisão 2026-03-31. DailyMed set id 08a65cf4-7749-4ceb-6895-8f4805e2b01f.
  180. Onfi (clobazam) tablets and oral suspension, prescribing information. NDA 202067/203993. Revisão 2024-03-12. DailyMed set id de03bd69-2dca-459c-93b4-541fd3e9571c.
  181. Valtoco (diazepam nasal spray), prescribing information. NDA 211635. Revisão 2026-06-03. DailyMed set id 1a8bcc90-68fa-474d-832c-0df01e825f39.
  182. Fleqsuvy (baclofen) oral suspension, prescribing information. NDA 215602. Revisão 2025-12-16; e Ozobax DS (baclofen) oral solution, NDA 208193, revisão 2026-03-13.
  183. Zanaflex (tizanidine) tablets and capsules, prescribing information. NDA 020397/021447. Revisão 2025-05-05. DailyMed set id 043d9e51-bfa2-4add-9058-5ece332f7e99.
  184. Botox (onabotulinumtoxinA) for injection, prescribing information. BLA 103000. Revisão 2023-11-18. DailyMed set id 33d066a9-34ff-4a1a-b38b-d10983df3300.
  185. Trihexyphenidyl hydrochloride tablets/elixir, prescribing information. ANDA 040251. Revisão 2022-06-21.
  186. Xenazine (tetrabenazine) tablets, prescribing information. NDA 021894. Revisão 2019-11-01. DailyMed set id ac768bab-8afa-4446-bc7f-caeeffec0cda.
  187. Agence nationale de sécurité du médicament et des produits de santé (ANSM). XENAZINE 25 mg, comprimé sécable (tétrabénazine; Bausch Health Ireland Limited): résumé des caractéristiques du produit. Base de données publique des médicaments, CIS 62463044 [Internet]; mis à jour le 29/09/2026 [citado 2026-11-06]. Disponível em: https://base-donnees-publique.medicaments.gouv.fr/medicament/62463044/extrait
  188. Bacchetta J, Edouard T, Laverny G, Bernardor J, Bertholet-Thomas A, Castanet M, et al. Vitamin D and calcium intakes in general pediatric populations: A French expert consensus paper. Arch Pediatr. 2022;29(4):312-325. doi:10.1016/j.arcped.2022.02.008. PMID: 35305879.
  189. Ward LM. A practical guide to the diagnosis and management of osteoporosis in childhood and adolescence. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14:1266986. doi:10.3389/fendo.2023.1266986. PMID: 38374961. PMC10875302.
  190. Cuvposa (glycopyrrolate) oral solution, prescribing information. NDA 022571. Revisão 2024-12-19. DailyMed set id d200bd44-9856-4104-a29e-a4cca3db6737.
  191. Fayoux P, Dinomais M, Shaw H, Villain F, Schwartz D, Rondeau S, et al. Glycopyrronium 320 μg/mL in children and adolescents with severe sialorrhoea and neurodisabilities: A randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Dev Med Child Neurol. 2024;66(7):910-918. doi:10.1111/dmcn.15841. PMID: 38214675.
  192. European Medicines Agency. Sialanar 320 micrograms/ml oral solution (glycopyrronium; Proveca Pharma Limited): summary of product characteristics [Internet]. Amsterdam: EMA; primeira autorização 15/09/2016, renovação 17/06/2021 [citado 2026-11-06]. Disponível em: https://www.ema.europa.eu/en/documents/product-information/sialanar-epar-product-information_en.pdf
  193. Agence nationale de sécurité du médicament et des produits de santé (ANSM). XEOMIN 100 unités, poudre pour solution injectable (toxine botulique de type A; Merz Therapeutics GmbH): résumé des caractéristiques du produit. Base de données publique des médicaments, CIS 67540690 [Internet]; mis à jour le 29/09/2026 [citado 2026-11-06]. Disponível em: https://base-donnees-publique.medicaments.gouv.fr/medicament/67540690/extrait
  194. Agence nationale de sécurité du médicament et des produits de santé (ANSM). SCOPODERM TTS 1 mg/72 heures, dispositif transdermique (scopolamine; Baxter SAS): résumé des caractéristiques du produit. Base de données publique des médicaments, CIS 63958849 [Internet]; mis à jour le 29/09/2026 [citado 2026-11-06]. Disponível em: https://base-donnees-publique.medicaments.gouv.fr/medicament/63958849/extrait
  195. Soliris (eculizumab) injection, prescribing information. BLA 125166. Revisão 2026-07-08. DailyMed set id ebcd67fa-b4d1-4a22-b33d-ee8bf6b9c722.
  196. Parikh S, et al. Patient care standards for primary mitochondrial disease: a consensus statement from the Mitochondrial Medicine Society. Genet Med. 2017;19:12. doi:10.1038/gim.2017.107. PMID: 28749475.
  197. PTC Therapeutics. Efficacy and Safety Study of Vatiquinone for the Treatment of Mitochondrial Disease Subjects With Refractory Epilepsy (MIT-E). ClinicalTrials.gov identifier NCT04378075. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT04378075
  198. National Human Genome Research Institute. Prospective Study of the Clinical, Genomic, Pharmacological, Laboratory, and Dietary Determinates of Pyrimidine and Purine Metabolism Disorders. ClinicalTrials.gov identifier NCT06092346. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT06092346
  199. Assistance Publique - Hôpitaux de Paris. Phenotypic and Genotypic Studies in Congenital and Early Onset Ataxias. ClinicalTrials.gov identifier NCT01488461. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT01488461
  200. Flores-Mendez M, Ohl L, Roule T, Zhou Y, Tintos-Hernández JA, Walsh K, et al. IMPDH2 filaments protect from neurodegeneration in AMPD2 deficiency. EMBO Rep. 2024;25(9):3990-4012. doi:10.1038/s44319-024-00218-2. PMID: 39075237. PMC11387764.
  201. Yang L, Slone J, Li Z, Lou X, Hu YC, Queme LF, et al. Systemic administration of AAV-Slc25a46 mitigates mitochondrial neuropathy in Slc25a46-/- mice. Hum Mol Genet. 2020;29(4):649-661. doi:10.1093/hmg/ddz277. PMID: 31943007. PMC7068115.
  202. Wei X, Wang J, Wang Y, Zhou C, Chen Z, Liu S, et al. Single-cell transcriptomics identifies neural fate disruption and glial reprogramming caused by RARS2 deficiency. J Med Genet. 2026;63(10):683-695. doi:10.1136/jmg-2025-111413. PMID: 42532830. PMC13638299.
  203. Hertie-Institut für klinische Hirnforschung. Chan Zuckerberg Initiative supports search for therapy for rare hereditary neurological disease PCH2 [comunicado de imprensa]. Tübingen; 2022 Dec 13. Disponível em: https://www.hih-tuebingen.de/en/press/press-releases/article/chan-zuckerberg-initiative-supports-search-for-therapy-for-rare-hereditary-neurological-disease-pch2
  204. Mathijssen IB, Henneman L, van Eeten-Nijman JM, Lakeman P, Ottenheim CP, Redeker EJ, et al. Targeted carrier screening for four recessive disorders: high detection rate within a founder population. Eur J Med Genet. 2015;58(3):123-8. doi:10.1016/j.ejmg.2015.01.004. PMID: 25641760.
  205. Drobňaková S, Andrejková M, Šaligová J, Potočňáková Ľ, Vargová V, Kuchta M, et al. Rare Genetic Diseases with Founder Effect in Roma Children. Life (Basel). 2026;16(5). doi:10.3390/life16050738. PMID: 42195294. PMC13208945.
  206. Orphanet. Orphadata: epidemiological data — prevalence and number of published cases of rare diseases (PCH1–PCH12, ORPHA:247198, ORPHA:1766). Paris: INSERM; 2026. Disponível em: https://www.orphadata.com
  207. PCH-Familie e.V. PCH – Pontocerebelläre Hypoplasie: Die Selbsthilfe für Eltern mit PCH-Kindern [Internet]. [consultado 2026-10-26]. Disponível em: https://www.pch-familie.de

← All articles