GuilherMed
Theme ▾

Défice Seletivo de IgA

10 October 2026 · 93 min read · 0 views

Immunology and Hematology

Read in English →

Défice Seletivo de IgA

Imunodeficiência primária mais frequente, de base poligénica com forte contributo do complexo HLA, definida por IgA sérica inferior a 0,07 g/L após os 4 anos com IgG e IgM normais; maioritariamente assintomática, associa-se a infeções sinopulmonares e gastrointestinais, alergia, doença celíaca e outras doenças autoimunes, e a uma relação clínica e familiar com a imunodeficiência comum variável.

Atualização da literatura e da informação regulamentar: 10 de outubro de 2026.

0. Tabela de Referência Inicial

Campo Conteúdo
Nome preferido Défice seletivo de imunoglobulina A (DIgAS)
Sinónimos e siglas Défice de IgA; deficiência seletiva de IgA; selective IgA deficiency (sIgAD, SIgAD, IgAD); designação histórica «aglobulinemia β2A» [1, 2]
Entidades vizinhas tratadas no artigo Défice de IgA com défice de subclasses de IgG; défice de IgA abaixo do normal para a idade mas superior a 0,07 g/L («défice parcial», termo controverso); défice de IgA (DIgA) sindrómico e secundário a fármacos; variantes de TNFRSF13B (TACI) como modificadoras [3–5]
Genes e loci Sem gene causal identificado (classificação da União Internacional das Sociedades de Imunologia, IUIS, de 2024: defeito genético desconhecido, herança não determinada). Associação poligénica: região HLA em 6p21.3 (haplótipo 8.1 HLA-A1-B8-DR3-DQ2; HLA-DQB1*02; DRB1*07:01-DQB1*02; DRB1*01:02-DQB1*05:01; DRB1*15:01 protetor), IFIH1 (2q24.2), CLEC16A, PVT1, ATG13–AMBRA1, AHI1; TNFRSF13B (17p11.2) como modificador [3, 6–9]
Herança Multifatorial; agregação familiar em cerca de 20–25% dos casos; padrões autossómicos dominante e recessivo descritos em famílias isoladas [4, 5]
OMIM (Online Mendelian Inheritance in Man) 137100 (IGAD1, citado por Yel 2010); 609529 (IGAD2, locus de TNFRSF13B, herança «desconhecida») [10, 11]
Orphanet ORPHA:69127 «Immunoglobulin A deficiency», assinalada como não rara na Europa; CID-10 D80.2; entradas obsoletas ORPHA:99972 (défice de IgA1), 99973 (défice de IgA2) e 99974 (DIgA relacionada com TACI, remetida para ORPHA:696907) [2, 12, 13]
GeneReviews Sem entrada específica; o DIgAS é referido nas entradas de doença celíaca, ataxia-telangiectasia, Nijmegen, deleção 22q11.2, Kabuki e outras [14–18]
Prevalência Cerca de 1:600 em ascendência norte-europeia; 1:300–1:700 em brancos nos EUA; 1:163 em dadores espanhóis; 1:965 em dadores e grávidas brasileiras; 1:14 840–1:18 500 em dadores japoneses; a Orphanet não regista estimativa [2, 4, 6, 10, 19, 20]
Idade de início Diagnóstico definitivo só após os 4 anos; sintomas, quando existem, começam habitualmente nos primeiros anos de vida (mediana de 1 ano numa série pediátrica brasileira) e a autoimunidade surge mais tarde [4, 21]
Manifestações cardinais 85–90% assintomáticos; infeções sinopulmonares e gastrointestinais (giardíase), alergia, doença celíaca e outras doenças autoimunes, hiperplasia nodular linfoide, aumento modesto do risco de cancro gastrointestinal; reações a hemoderivados em raros doentes com anticorpos anti-IgA [10, 22–25]
Teste de primeira linha Doseamento de IgA, IgG e IgM séricas (com IgA por método que detete valores inferiores a 0,07 g/L), repetido; subclasses de IgG e respostas vacinais nos sintomáticos; IgA total sempre que se pede serologia de doença celíaca. Não existe teste genético diagnóstico [4, 8, 26]
Tratamento específico Nenhum. Tratamento das complicações (antibioterapia, profilaxia, controlo da atopia, dieta sem glúten); imunoglobulina de substituição não indicada no DIgAS isolado [4, 27]
Rede Europeia de Referência (ERN) ERN RITA (imunodeficiências, doenças autoinflamatórias e autoimunes raras) [28]
Entidades relacionadas Erros inatos da imunidade e imunodeficiência comum variável (CVID); síndromes de deleção e duplicação 22q11.2; ataxia-telangiectasia; síndrome de quebra de Nijmegen e défices das vias MRN e NHEJ; síndrome de Kabuki; síndrome de Wolf-Hirschhorn (deleção 4p16.3); síndrome de Myhre (SMAD4); síndrome de Aicardi-Goutières e interferonopatias tipo I; síndrome de Rett e espetro MECP2-CDKL5-FOXG1; hemoglobinopatias (talassemias e anemia falciforme)

1. Introdução

O défice seletivo de imunoglobulina A (DIgAS) é a imunodeficiência primária mais frequente nas populações de ascendência europeia, mas, ao contrário da maioria dos erros inatos da imunidade (EII), não corresponde a um defeito monogénico identificável e, na maioria das pessoas afetadas, não causa doença [3, 26]. A definição é laboratorial: IgA sérica indetetável ou inferior a 7 mg/dL (0,07 g/L) num indivíduo com mais de 4 anos, com IgG e IgM normais, resposta vacinal normal e exclusão de causas secundárias de hipogamaglobulinemia e de defeitos de células T [4, 26]. Esta definição assenta no doseamento sérico, embora a maior parte da IgA do organismo seja secretada nas mucosas e não seja medida na prática clínica, o que ajuda a explicar a fraca correlação entre o valor sérico e a expressão clínica [26].

A ausência de IgA em pessoas saudáveis foi descrita em 1964 por Rockey, Hanson, Heremans e Kunkel, que relataram dois homens saudáveis sem a então designada globulina β2A [1]. Quatro anos depois, Vyas, Perkins e Fudenberg associaram anticorpos anti-IgA a reações transfusionais anafilactoides, uma observação que moldou durante décadas a medicina transfusional destes doentes [29–31]. As descrições clínicas subsequentes estabeleceram o quadro hoje aceite: 85–90% de portadores assintomáticos e uma minoria com infeções, alergia e autoimunidade [10].

A investigação molecular seguiu dois caminhos. Em 2005, dois artigos publicados em simultâneo identificaram variantes de TNFRSF13B, o gene que codifica o recetor TACI (transmembrane activator and calcium-modulator and cyclophilin ligand interactor), em doentes com imunodeficiência comum variável (CVID, do inglês common variable immunodeficiency) e com DIgAS [32, 33]; em 2007, uma reavaliação em grandes coortes mostrou que essas variantes são fatores de risco para CVID mas têm papel mínimo ou nulo no DIgAS [9]. Em 2010, o primeiro estudo de associação de genoma completo (GWAS) identificou IFIH1 e CLEC16A fora da região HLA [7]; em 2012, o mapeamento fino do complexo principal de histocompatibilidade (MHC) delimitou vários sinais independentes [6]; e em 2016 uma meta-análise europeia acrescentou quatro loci e estimou a heritabilidade [8].

A nomenclatura tem sido revista. A classificação da União Internacional das Sociedades de Imunologia (IUIS) de 2024 coloca o DIgAS na tabela dos défices predominantemente de anticorpos, com defeito genético desconhecido e herança não determinada, separado do «défice de subclasses de IgG com défice de IgA», do défice de anticorpos específicos (SPAD, do inglês specific polysaccharide antibody deficiency) e da hipogamaglobulinemia transitória da infância [3]. As definições de trabalho do registo da Sociedade Europeia de Imunodeficiências (ESID), em vigor desde 2014 e revistas em 2019, seguem a mesma lógica e passaram a tratar a IgA ausente com défice de subclasses de IgG ou com má resposta a polissacáridos como entidades distintas [26, 34]. A Orphanet mantém o DIgAS como entidade não rara na Europa (ORPHA:69127) e tornou obsoletas as entradas de défice isolado de IgA1, de IgA2 e de DIgA relacionada com TACI [2, 12].

O âmbito deste artigo é o DIgAS primário e as entidades que com ele se confundem. A abordagem geral dos EII e a CVID, com a qual o DIgAS partilha agregação familiar e para a qual pode evoluir, e as síndromes genéticas em que a IgA baixa é uma manifestação acessória (deleção 22q11.2, ataxia-telangiectasia, Nijmegen, Kabuki, entre outras) são aqui apresentadas apenas como enquadramento e diagnóstico diferencial.

2. Genética Molecular e Fisiopatologia

2.1. A IgA: estrutura, subclasses e ontogenia

A IgA representa mais de 70% das imunoglobulinas totais do organismo, mas a maior parte não circula: é secretada nas mucosas sob a forma dimérica, unida pela cadeia J e associada ao componente secretor, e encontra-se na saliva, nas lágrimas e no leite [5, 26]. No soro predomina a forma monomérica, cerca de 90% da qual pertence à subclasse IgA1, produzida sobretudo por plasmócitos da medula óssea; a IgA secretora é predominantemente IgA2 e é produzida no tecido linfoide associado ao intestino (GALT) [5]. A IgA das mucosas neutraliza microrganismos e toxinas sem ativar o complemento, enquanto a IgA sérica atua através do recetor FcαRI [5]. A IgA está praticamente ausente ao nascer e sobe progressivamente até à adolescência; o intervalo de referência adulto citado por Swain e colaboradores é 61–365 mg/dL [26]. Esta ontogenia lenta é a razão do limiar etário de 4 anos para o diagnóstico [35].

2.2. Mecanismo celular

O defeito central do DIgAS é uma falha de diferenciação terminal das células B em plasmócitos secretores de IgA. Os doentes têm células B IgA+ imaturas, que coexpressam IgM e IgD, e os genes das regiões constantes α1 e α2 no cromossoma 14 são geralmente normais; o defeito pode ser transferido por transplante de medula ou de progenitores hematopoiéticos, o que demonstra a sua origem hematopoiética [10, 26]. Contribuem alterações das células T auxiliares e do meio de citocinas: fator de crescimento transformador β (TGF-β) baixo e alterações de interleucina (IL)-4, IL-6, IL-7, IL-10 e IL-21; a IL-21 ex vivo induz a diferenciação em plasmócitos produtores de IgA e IgG em doentes com DIgAS e com CVID [8, 10, 26]. O ligando indutor de proliferação (APRIL) sérico está aumentado, interpretado como compensatório, e alguns doentes têm menos células T reguladoras FoxP3+, o que se tem associado à autoimunidade [26]. A IgM secretora aumenta de forma compensatória, mas não distingue os doentes sintomáticos dos assintomáticos [26].

Os dados translacionais mais recentes acrescentam duas vertentes. Numa coorte populacional islandesa, os adultos com DIgAS tinham IgG total e IgG1 aumentadas, IgG4 seletivamente reduzida, uma assinatura sérica de cinco analitos (IL-18, CD40L solúvel, linfopoietina estromal tímica, CCL3 e TWEAK) associada a IgA residual mais baixa e a anticorpos antinucleares, e expressão reduzida de componentes do recetor de IL-18 nas células B [36]. Em crianças neerlandesas com infeções respiratórias recorrentes, a microbiota intestinal dos IgA-deficientes era diferente, e a transferência fecal para ratinhos germ-free mostrou que um agrupamento dominado por Bifidobacterium induz IgA sérica, fecal e pulmonar [37]. Em ratinhos sem IgA, o glúten induziu atrofia vilositária ileal dependente da microbiota, reproduzida por monocolonização com Streptococcus lutetiensis e prevenida por dieta sem glúten [38]. Estes resultados são pré-clínicos ou observacionais e não têm, por ora, consequência terapêutica.

2.3. Arquitetura genética: agregação familiar e heritabilidade

A agregação familiar está bem documentada. Cerca de 20–25% dos doentes têm história familiar de DIgAS ou de CVID [4, 39]. Na Finlândia, 7,2% dos familiares de primeiro grau de 35 casos índice tinham DIgAS, valor muito superior ao dos dadores de sangue; num estudo sueco de 12 600 gémeos, a concordância foi de 31% em monozigóticos e 13% em dizigóticos (dados citados por Swain e colaboradores) [26]. Na coorte sueca da meta-análise de 2016, a heritabilidade estimada a partir de variantes imputadas foi 0,49 (erro-padrão 0,047), 0,39 após condicionamento nos sinais de associação e 0,14 quando se excluiu todo o MHC, o que indica que a região HLA explica a maior parte da componente genética conhecida e que o restante é poligénico [8]. A CVID e o DIgAS ocorrem nas mesmas famílias, e o Oxford Desk Reference refere que a história familiar de DIgA é frequente nos doentes com CVID [40].

2.4. A região HLA

O haplótipo ancestral 8.1 (HLA-A1, B8, DR3, DQ2) associa-se ao DIgAS e, independentemente, ao lúpus eritematoso sistémico (LES), à doença celíaca, à dermatite herpetiforme, à diabetes tipo 1 (DM1), à miastenia gravis e à esclerodermia [26]. O risco conferido pelo haplótipo estendido é multiplicativo, e uma substituição no aminoácido 57 da cadeia β de HLA-DQ foi associada a suscetibilidade [10]. As estimativas iniciais apontavam para DIgAS em 13% dos homozigóticos B8/DR3 (risco relativo 77,8), mas estudos maiores obtiveram efeitos mais modestos (risco relativo 11,1 em homozigotia e 3,4 em heterozigotia) [35]. Alguns autores atribuem o sinal a um alelo da região HLA de classe III, com base na comparação do haplótipo em doentes da Sardenha, do norte da Europa, da Austrália e dos EUA [35].

O mapeamento de alta densidade de 772 doentes e 1976 controlos de três populações europeias identificou como sinal primário HLA-DQB1*02 (P combinado 7,69×10⁻⁵⁷; odds ratio, OR, 2,80), explicado por efeitos independentes dos haplótipos HLA-B*08:01-DRB1*03:01-DQB1*02 e DRB1*07:01-DQB1*02; os sinais secundários foram DRB1*01:02 (P 5,86×10⁻¹⁷; OR 4,28) e o alelo protetor DRB1*15:01 (P 2,24×10⁻³⁵; OR 0,13), com efeitos conservados entre origens [6]. O haplótipo B*08:01/DRB1*03/DQB1*02:01 predomina no norte da Europa (Suécia, Noruega, Islândia, Finlândia, Alemanha), enquanto o haplótipo DRB1*01:02-DQB1*05:01 é mais frequente no sul da Europa (Espanha, Itália) e no Irão [35]. Na meta-análise de 2016, o sinal mais forte localizou-se 2,7 kb a montante de HLA-DQA1 (P = 3,3×10⁻⁹²) [8]. Os haplótipos de risco explicam parcialmente a variação geográfica: entre dadores chineses com DIgAS, dois terços eram portadores dos haplótipos descritos em europeus, que são menos frequentes na população chinesa geral [26].

2.5. Loci fora da região HLA

O GWAS de 2010, com 430 doentes da Suécia e da Islândia e 1090 controlos, replicado em duas coortes europeias, identificou uma variante não sinónima de IFIH1 (rs1990760, P = 7,3×10⁻¹⁰), já associada a DM1 e LES, e uma associação sugestiva com CLEC16A (P = 1,8×10⁻⁷); os loci de autoimunidade estavam globalmente enriquecidos entre os sinais (P = 9,0×10⁻⁴) [7]. A meta-análise de 2016, com cerca de 9,5 milhões de polimorfismos, 1635 doentes (excluídos os que tinham autoimunidade comórbida ou anticorpos anti-transglutaminase) e 4852 controlos de sete coortes europeias (Suécia e Islândia, Finlândia, Espanha, Itália e República Checa), confirmou a associação protetora da variante comum de IFIH1 (P = 3,7×10⁻¹⁵; OR 0,62 no GWAS anterior), identificou uma associação com a variante rara de perda de função IFIH1 NM_022168.4:c.2767A>G p.(Ile923Val) (rs35667974; P = 2,6×10⁻⁸) e acrescentou quatro loci com significância genómica: PVT1 (deleção protetora de 1 pb, P = 4,3×10⁻¹¹), ATG13–AMBRA1 (P = 6,7×10⁻¹⁰), AHI1 (P = 8,4×10⁻¹⁰) e CLEC16A (inserção intrónica protetora, P = 1,4×10⁻⁹) [8]. Três destes quatro loci sobrepõem-se a marcadores de autoimunidade; entre 28 loci sugestivos, metade era autoimune (FAS, GATA3, CD86, PTGER4, IKZF3, EGR2, FCRL3, IL2RA, PTPN2, IL2/IL21, CD28, entre outros) [8]. A análise de vias mostrou enriquecimento da «rede imune intestinal para produção de IgA» (22 de 30 genes com P ≤0,05, incluindo IL10, APRIL, o fator de ativação de células B (BAFF), TACI, CD40, ICOS, CCR9, MADCAM1 e AICDA) e da assinatura das células T reguladoras, e uma arquitetura genética partilhada com a DM1 e a artrite reumatoide mesmo sem o MHC; os loci não-MHC do DIgAS não se sobrepõem aos da nefropatia IgA [8].

2.6. TNFRSF13B (TACI): de causa proposta a modificador

TNFRSF13B (17p11.2; HGNC:18153) codifica TACI, recetor da superfamília do fator de necrose tumoral restrito a linfócitos, que liga BAFF e APRIL e, através de CAML, ativa NF-AT, NF-κB e AP-1, regulando a mudança de classe das imunoglobulinas [11]. Em 2005, Castigli e colaboradores encontraram uma variante missense num alelo em 4 de 19 doentes com CVID e em 1 de 16 com DIgAS, ausentes em 50 controlos, com cossegregação em familiares e incapacidade das células B mutadas de produzirem IgG e IgA em resposta a APRIL [32]; no mesmo número, Salzer e colaboradores descreveram variantes homozigóticas e heterozigóticas em 13 doentes com CVID, com abolição da ligação a APRIL pelas variantes S144X e C104R (designações históricas, = NM_012452.3:c.431C>G p.(Ser144Ter) e NM_012452.3:c.310T>C p.(Cys104Arg)) [33].

A reavaliação de 2007 alterou a interpretação. Em doentes com CVID da Suécia, Alemanha e EUA, C104R estava presente em 16 de 846 alelos contra 17 de 4208 em controlos (OR 4,16; intervalo de confiança de 95%, IC95%, 1,98–8,74) e A181E em 22 de 844 contra 20 de 3924 (OR 5,60; IC95% 2,99–10,51) [9]. Em 254 adultos suecos com DIgAS (esporádicos ou probandos de famílias multicaso), não houve excesso de C104R (1/478 alelos contra 8/2038 em controlos suecos), de A181E nem de ins204A, não se encontraram homozigóticos nem heterozigóticos compostos e, nas famílias, o DIgAS não cossegregava com as variantes; uma irmã de um probando com CVID, heterozigótica para A181E, tinha DIgAS, mas a mãe, com a mesma variante, tinha imunoglobulinas normais [9]. A conclusão dos autores foi que estas variantes heterozigóticas são fatores de risco para CVID, com papel mínimo, se algum, no DIgAS [9].

Os dados de 2025–2026 consolidam o modelo. Variantes heterozigóticas raras e lesivas de TNFRSF13B estão presentes em cerca de 10% dos doentes com défice predominante de anticorpos, mas também em cerca de 1% da população saudável; em 161 doentes iranianos com estas variantes, a doença exigiu contribuintes adicionais (variantes bialélicas, o marcador HLA de classe II DPA1*03, polimorfismos de genes de células B e variantes patogénicas noutros genes de EII em 16% dos heterozigóticos) [41]. Numa série turca de 21 doentes, o espetro foi de portador assintomático a CVID e imunodeficiência combinada, com sobreposição entre portadores mono e bialélicos e C104R como variante mais frequente (57%) [42]. A IUIS de 2024 classifica a deficiência de TACI como autossómica recessiva ou dominante e assinala que as variantes heterozigóticas são provavelmente modificadoras e não causais [3]. As variantes bialélicas de perda de função causam CVID2, relação classificada como definitiva pelo Clinical Genome Resource (ClinGen) sob modelo recessivo; a ClinGen não tem asserção de validade para TNFRSF13B e DIgAS, apesar de a OMIM mapear o locus IGAD2 (609529) a este gene [11]. A Orphanet regista apenas três casos ou famílias com fenótipo de CVID por deficiência homozigótica de TACI (ORPHA:696907) [13]. Uma revisão de 2022 cita pelo menos um alelo mutado em 13% dos doentes com DIgAS, mas a causalidade permanece controversa e a mesma variante pode surgir em familiares com DIgAS ou com CVID [5].

2.7. Causas monogénicas e cromossómicas de IgA baixa

Embora o DIgAS isolado seja poligénico, a IgA ausente ou baixa integra o fenótipo de várias doenças monogénicas e cromossómicas [26, 43]. IFIH1 codifica a proteína associada à diferenciação do melanoma 5 (MDA5), sensor citoplasmático de RNA viral que ativa, através da proteína de sinalização antiviral mitocondrial (MAVS), a produção de interferão tipo I [44]. O exemplo mais claro de uma causa mendeliana de DIgA com autoimunidade é a variante de novo de ganho de função IFIH1 p.(Arg779His), encontrada por sequenciação do exoma numa rapariga de 16 anos com LES grave, de início precoce e refratário, DIgA e espasticidade ligeira dos membros inferiores, com interferão α sérico elevado; a mesma variante causa síndrome de Aicardi-Goutières tipo 7, o que ilustra a heterogeneidade fenotípica de uma variante idêntica [3, 45]. Outras causas incluem a deficiência de RAC2 (autossómica recessiva, com IgG, IgA e IgM baixas e DIgA referida na IUIS), as deleções da região das cadeias pesadas de imunoglobulina em 14q32, que podem eliminar IgA juntamente com subclasses de IgG e IgE, e grandes rearranjos cromossómicos como a deleção 18q [3, 4, 10]. Polimorfismos de IL-10 e IL-6 e defeitos da imunidade inata, fagocitários, do complemento e combinados foram descritos em casos isolados [26]. Uma revisão de 2024 resume os fatores genéticos e epigenéticos envolvidos no desenvolvimento B, na recombinação de mudança de classe para IgA e na sobrevivência dos plasmócitos IgA+ [46].

2.8. Variantes de interesse e nomenclatura normalizada

As variantes de TNFRSF13B e IFIH1 citadas na literatura usam nomes históricos de proteína; a tabela seguinte apresenta-as na nomenclatura da Human Genome Variation Society (HGVS), no transcrito MANE Select (Matched Annotation from NCBI and EMBL-EBI), validadas no VariantValidator, com a classificação ClinVar consultada em outubro de 2026 [47, 48]. A classificação ClinVar benigna das variantes de risco de GWAS não contradiz a associação populacional: trata-se de efeitos pequenos e não de variantes mendelianas.

Gene (transcrito) Nome histórico HGVS (cDNA; proteína) Genómica GRCh38 dbSNP ClinVar Interpretação
TNFRSF13B (NM_012452.3) C104R c.310T>C; p.(Cys104Arg) NC_000017.11:g.16948873A>G rs34557412 VCV 5302: classificações conflituosas; fator de risco Fator de risco para CVID em heterozigotia; sem excesso no DIgAS
TNFRSF13B (NM_012452.3) A181E c.542C>A; p.(Ala181Glu) NC_000017.11:g.16940415G>T rs72553883 VCV 5303: classificações conflituosas Idem; condição «IgA deficiency 2» listada no ClinVar
TNFRSF13B (NM_012452.3) ins204A / L69fs c.204dup; p.(Leu69fs) — rs72553875 VCV 322029: patogénica/provavelmente patogénica (CVID2) Perda de função; causal em estado bialélico
IFIH1 (NM_022168.4) R779H c.2336G>A; p.(Arg779His) NC_000002.12:g.162273913C>T rs587777446 VCV 137622: patogénica/provavelmente patogénica (síndrome de Aicardi-Goutières tipo 7) Ganho de função; LES com DIgA num caso
IFIH1 (NM_022168.4) I923V c.2767A>G; p.(Ile923Val) NC_000002.12:g.162268127T>C rs35667974 VCV 474954: benigna/provavelmente benigna Perda de função rara; associação de proteção
IFIH1 (NM_022168.4) rs1990760, «Thr946Ala» c.2836G>A; p.(Ala946Thr) NC_000002.12:g.162267541C>T rs1990760 VCV 261566: benigna/provavelmente benigna Variante comum de GWAS; o alelo de referência do transcrito é Ala946

2.9. Fisiopatologia das manifestações

A ausência de IgA secretora reduz a exclusão de antigénios nas mucosas respiratórias e digestivas, o que explica a predominância de infeções sinopulmonares por bactérias capsuladas e a giardíase; a giardíase sintomática associa-se à IgA secretora intestinal baixa independentemente do valor sérico [26]. As infeções mais graves concentram-se nos doentes com défice concomitante de IgG2 ou IgG4 ou com má resposta a polissacáridos pneumocócicos, e a diminuição de células B de memória com mudança de classe associa-se a pneumonia, bronquiectasias e autoimunidade [4, 26]. A autoimunidade resulta da partilha de loci de risco (HLA, IFIH1, CLEC16A e outros), da redução das células T reguladoras e possivelmente de maior exposição antigénica nas mucosas [8, 26]. A associação com a doença celíaca pode decorrer em parte do desequilíbrio de ligação com HLA-DQB1*02, alelo presente em pelo menos 95% das crianças celíacas [35]. A anafilaxia transfusional, rara, depende da presença de anticorpos anti-IgA no recetor e de fatores do componente transfundido (secção 7.7).

3. Espectro Clínico e Manifestações por Sistema

3.1. Visão geral e fenótipos

A maioria das pessoas com DIgAS não tem doença atribuível ao défice: as revisões situam os assintomáticos em 85–90%, e menos de 30% apresentam manifestações clínicas evidentes [10, 26, 35]. Swain e colaboradores propõem cinco fenótipos: assintomático, com infeções minor, alérgico, autoimune e com doença grave [26]. O nível de IgA sérica não se correlaciona com a gravidade, as infeções ou a autoimunidade [26]. A expressão varia com a idade: alergia e infeção predominam na infância e a autoimunidade surge sobretudo na idade adulta [26]. A estimativa da carga clínica depende muito da forma de identificação dos doentes, porque os dadores de sangue identificados por rastreio, os doentes de consulta de imunologia e os doentes de registos hospitalares representam populações diferentes; os números que se seguem devem ser lidos com essa limitação. Nas tabelas e no texto, HR designa a razão de riscos instantâneos (hazard ratio) estimada em coortes.

Estudo População e época n (DIgAS) Desenho e comparador Achados principais Limitações
Ludvigsson 2016 [24] Suécia, doentes com IgA <0,07 g/L medida em 6 hospitais universitários; registo nacional 2001–2010 2100 Coorte emparelhada (18 653 controlos) Qualquer infeção 36,1% vs 18,8% (razão de prevalências 2,4) Inclui só quem teve IgA medida no hospital
Ludvigsson 2014a [22] Idem 2100 Idem Celíaca 6,7% vs 0,19%; DM1 5,9% vs 0,57% Viés de seleção (rastreio de celíaca)
Ludvigsson 2015 [23] Suécia 1980–2010 2320 Coorte (23 130 controlos) Cancro HR 1,31; gastrointestinal HR 1,64 Excesso concentrado no 1.º ano
Ludvigsson 2013 [49] Suécia 1980–2012 2495 Coorte (24 509 controlos) Mortalidade HR 1,8 Identificação hospitalar
Koskinen 1996 [50] Finlândia, dadores saudáveis identificados 1971–1980 159 (+45 com IgA diminuída) Seguimento de 20 anos Mais pneumonia, infeções respiratórias e autoimunidade na meia-idade; sem doença com risco de vida Sem grupo controlo emparelhado no resumo
Hauge 2018 [51] Dinamarca, dadores 177 1770 dadores controlo Antimicrobianos HR 1,19 (p = 0,05); infeções hospitalares HR 1,02 Dadores saudáveis por definição
Lemarquis 2025 [36] Islândia, coorte populacional (dadores e laboratório 1974–2017) 61 adultos 73 controlos emparelhados Mais sinusite, pneumonia, eczema e urticária; asma e rinoconjuntivite semelhantes Amostra pequena
Nasser 2025 [21] Brasil, centro terciário pediátrico (diagnóstico desde 1996) 51 sintomáticos Série sem controlos; seguimento médio 10 anos Infeções 98%, alergia 92%, autoimunidade 19,6%, neoplasia 5,8% Viés de gravidade; dados de processo

3.2. Infeções

As infeções são a manifestação mais frequente nos doentes sintomáticos e envolvem sobretudo as vias respiratórias: sinusite e pneumonias recorrentes por Streptococcus pneumoniae e Haemophilus influenzae, otite média menos frequentemente, e doença invasiva rara [10, 26]. Até um terço dos sintomáticos tem infeções recorrentes (virais, otite média, sinopulmonares e gastrointestinais); sépsis e meningite não são habituais [4]. Na coorte nacional sueca de 2100 doentes, a proporção com qualquer infeção registada em internamento ou ambulatório hospitalar foi 36,1% contra 18,8% nos controlos (razão de prevalências 2,4; IC95% 2,2–2,6), com excesso em infeções respiratórias (17,8% vs 6,3%; 3,2), gastrointestinais (6,0% vs 1,8%; 3,5), cutâneas (4,1% vs 2,2%; 1,9), urinárias (6,1% vs 3,4%; 1,8), otite e mastoidite (2,1% vs 1,1%; 2,0), sépsis (1,5% vs 0,45%; 3,4) e meningite (0,38% vs 0,12%; 3,2) [24]. Os valores absolutos de sépsis e meningite permanecem baixos, e a coorte inclui apenas pessoas a quem a IgA foi medida em hospital.

Nos dadores, identificados sem queixas, o excesso é menor. Na Islândia, tanto os dadores com DIgAS descoberto incidentalmente como os doentes de consulta tinham mais infeções que controlos emparelhados, com mais infeções virais respiratórias, laringite e conjuntivite [26]; na coorte populacional islandesa de 2025, os adultos tinham maior carga de sinusite e pneumonia [36]. Na Dinamarca, 177 dadores IgA-deficientes tiveram apenas uma tendência para mais prescrições de antimicrobianos (HR 1,19; p = 0,05), sem diferença em infeções hospitalares (HR 1,02), com pior saúde mental autorreportada num subgrupo de 28 e proteína C reativa mais alta num subgrupo de 10; os autores concluíram que não se justificam precauções específicas nestes dadores [51]. Numa série turca de 225 crianças com infeções sinopulmonares recorrentes, os imunodeficientes, incluindo os com DIgAS, tendiam a ter mais lesão pulmonar crónica, e as bronquiectasias são uma complicação possível [10, 26].

O padrão infeccioso agrava-se quando o DIgAS coexiste com défice de subclasses de IgG (sobretudo IgG2) ou com má resposta a polissacáridos, embora esta associação não tenha sido replicada de forma consistente [10, 26, 35]. Num estudo de crianças com infeções respiratórias, 9,3% tinham DIgA, 8,4% défice de subclasses e 1,4% ambos [4]. Em duas séries turcas pediátricas, o défice isolado de IgG3 ou IgG4 não se associou a maior frequência de infeções [52]. Numa coorte nacional israelita de 12 230 adultos com DIgAS e 48 920 controlos (2020–2022), a primeira infeção por SARS-CoV-2 não foi mais frequente (13,0% vs 14,0%; OR ajustado 1,03), mas a reinfeção (OR 1,15; IC95% 1,09–1,22) e a hospitalização por COVID-19 (OR 1,40; IC95% 1,22–1,60) foram mais frequentes, com as limitações de um estudo que exigia IgA medida e não distinguia hospitalizações incidentais [53].

3.3. Manifestações gastrointestinais

A Giardia lamblia é o parasita mais associado, causando diarreia crónica, má absorção e hiperplasia linfoide; a resposta ao metronidazol pode ser incompleta, e a defesa contra o rotavírus parece adequada [26]. Outras doenças gastrointestinais descritas incluem intolerância à lactose, doença celíaca, colite ulcerosa, doença de Crohn, hiperplasia nodular linfoide e neoplasia [5, 10]. A hiperplasia nodular linfoide, quando associada a giardíase, configura a síndrome de Herman e é considerada fator de risco de linfoma gastrointestinal [26]. Habitualmente localizada no intestino delgado, pode surgir em localizações atípicas: foi descrita uma obstrução subaguda rectossigmoideia por hiperplasia nodular linfoide como apresentação de DIgAS não diagnosticado [54].

A doença celíaca é a associação autoimune mais estudada. Na coorte sueca, 6,7% dos doentes com DIgA tinham doença celíaca contra 0,19% dos controlos, uma razão de prevalências próxima de 35 [22]. Inversamente, o DIgAS afeta 2–3% dos doentes celíacos (cerca de 1:40 a 1:50), contra 0,6% numa população espanhola citada [14, 26, 35, 55]. As estimativas de doença celíaca em crianças com DIgAS variam de 7,7% (Meini) e 8,7% (11 de 126 crianças de 2–20 anos, Lenhardt, todas com HLA-DQ2 ou DQ8) a 14% numa série italiana de 184 crianças e a 15–30% quando já existe outra doença autoimune [26, 35]; o GeneReviews cita 2–10% segundo o consenso dos Institutos Nacionais de Saúde (NIH) dos EUA de 2005 [14]. Nos EUA, os celíacos com DIgAS tinham mais outras doenças autoimunes que os celíacos sem DIgA [26]. Os doentes não produzem anticorpos IgA anti-gliadina, anti-transglutaminase ou antiendomísio, mas podem produzir os correspondentes IgG, o que condiciona o diagnóstico (secção 5.5) [10].

3.4. Alergia

A alergia é frequente, mas a sua magnitude depende da série. Numa revisão de 21 estudos com 534 doentes, a asma foi a manifestação mais descrita, seguida de rinite e dermatite atópica; a alergia afetou mais de 30% e foi a primeira manifestação em até 40%, embora o excesso face à população geral não esteja demonstrado devido à heterogeneidade das coortes [5]. As frequências descritas vão de 13% (127 doentes de 2–67 anos nos EUA) e 48% (126 crianças e adolescentes brasileiros) a 58% num estudo antigo e 84% numa série de 4–32 anos, e a IgE total está frequentemente aumentada [10, 26, 35]. Num estudo prospetivo sueco, as crianças com DIgAS tinham mais pseudocrupe no primeiro ano e mais hipersensibilidade alimentar referida aos 4 anos [10]. Entre 4700 jovens candidatos à força aérea italiana, 0,34% tinham DIgAS e nenhum tinha hiper-reatividade brônquica à metacolina [26]. Na Islândia, a asma foi igual à dos controlos e a rinoconjuntivite alérgica mais frequente na série de Swain; na coorte de 2025, predominou a atopia cutânea (eczema e urticária) [26, 36]. Em Istambul, 62,7% de 110 crianças de 4–18 anos tinham sensibilização alérgica, associada a história familiar de alergia, eosinofilia e IgE elevada, e menos frequente nas que tinham autoimunidade [56]; em dois centros turcos, 66,7% de 45 crianças tinham asma, rinite ou dermatite atópica [52]. A inflamação alérgica predispõe a sinusite e otite, pelo que o controlo da atopia faz parte da prevenção das infeções [4].

3.5. Autoimunidade

A autoimunidade afeta 3% a 79% dos doentes conforme a população e a doença considerada; as revisões situam a maioria das estimativas entre 5% e 30% [26, 35]. É mais frequente em adultos e em mulheres: num estudo de 2004, 28% tinham autoimunidade com mediana de idade de 29 anos, sendo a púrpura trombocitopénica imune (PTI) a mais comum, seguida de anemia hemolítica autoimune (AHAI), artrite idiopática juvenil (AIJ), tiroidite e LES; numa população mais jovem, a frequência foi de 19% [10]. Os familiares de primeiro grau também têm mais autoimunidade (10% vs 5%) [26]. Os autoanticorpos sem doença são frequentes: na série brasileira, 60,7% tinham autoanticorpos, sobretudo anticorpos antinucleares (67,7% dos positivos), anti-tiroglobulina e anti-peroxidase tiroideia (38,7% cada), surgindo a partir dos 3 anos [10, 21]. A tabela resume as razões de prevalência da coorte sueca [22].

Doença DIgA (%) Controlos (%) Razão de prevalências
Doença celíaca 6,7 0,19 ≈35
Diabetes tipo 1 5,9 0,57 ≈10
Artrite idiopática juvenil 0,76 0,09 8,9
Lúpus eritematoso sistémico 0,57 0,06 8,9
Doença inflamatória intestinal 3,9 0,81 5,0
Doença de Crohn 2,4 0,42 5,7
Colite ulcerosa 1,7 0,46 3,9
Hipotiroidismo 0,76 0,16 4,6
Artrite reumatoide 2,2 0,50 4,5
Hipertiroidismo 1,7 0,43 3,9
Miastenia gravis 0,05 0,02 3,0 (não significativo)

Uma revisão de geoepidemiologia classificou como forte a associação com LES, hiper e hipotiroidismo, DM1, doença inflamatória intestinal, artrite reumatoide, AIJ, espondilite anquilosante e vitiligo, como mais fraca a associação com esclerodermia, doença celíaca, hepatite autoimune, PTI e AHAI, e como mínima ou nula a associação com miastenia, líquen plano e esclerose múltipla [57]. A classificação da doença celíaca como associação fraca diverge da razão de prevalências de 35 da coorte sueca e das diretrizes de doença celíaca, que incluem o DIgA entre os grupos de risco; a diferença resulta provavelmente da forma de agregar estudos heterogéneos, e a coorte populacional sueca, apesar do viés de seleção, é a fonte quantitativa mais robusta [22, 55, 57]. Em séries pediátricas, a autoimunidade afetou 13,3% (tiroidite de Hashimoto, vitiligo, PTI) de 45 crianças turcas e 17,3% noutra série turca, e no seguimento prolongado de Koskinen a idade média de início foi 31 anos [21, 52]. As citopenias autoimunes (neutropenia, trombocitopenia) e as doenças lúpus-like e artríticas integram o espetro descrito pelos parâmetros práticos norte-americanos [4].

3.6. Neoplasias

Numa coorte de 386 doentes dinamarqueses e suecos, a incidência global de cancro não estava aumentada, com mais cancro gástrico sem significância [26]. Na coorte sueca de 2320 doentes com IgA <0,07 g/L (1980–2010), o cancro ocorreu em 61 por 10 000 pessoas-ano contra 47 nos 23 130 controlos (HR 1,31; IC95% 1,09–1,58), com excesso de cancro gastrointestinal (HR 1,64; IC95% 1,07–2,50) e um aumento não significativo de neoplasias linfoproliferativas (HR 1,68; IC95% 0,89–3,19); o excesso concentrou-se no primeiro ano após o diagnóstico (HR 2,80; IC95% 1,74–4,49), o que sugere viés de vigilância, e não foi explicado pela doença celíaca [23, 26]. Na série brasileira, 3 de 51 crianças tiveram neoplasia (duas histiocitoses de células de Langerhans e um linfoma de Hodgkin) [21].

3.7. Outras manifestações

Numa série norte-americana de 15 biópsias renais com ausência completa de imunofluorescência de fundo para IgA, só um doente tinha diagnóstico prévio de DIgAS; das 10 com imunoglobulinas disponíveis, 9 eram compatíveis com DIgAS, a maioria com lesão renal aguda com ou sem proteinúria e glomerulopatias de mecanismo imune, sobretudo nefrite lúpica [58]. A anemia perniciosa e a gastrite atrófica autoimune foram descritas em associação (secção 10) [59]. As reações a hemoderivados e a imunoglobulina são tratadas na secção 7.

3.8. História natural pediátrica: a série de São Paulo

A série do Instituto da Criança do Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo descreve a história natural de 51 crianças com DIgAS sintomático (IgA <0,07 g/L, IgG e IgM normais, idade >4 anos, excluídos outros EII, síndromes genéticas e causas medicamentosas), seguidas em média 10 ± 2,8 anos [21]. A mediana de idade do primeiro sintoma foi 1 ano e a do diagnóstico 6 anos. Quase todas tiveram infeções (98%), sobretudo pneumonia (94%), sinusite (cerca de 70%) e infeções gastrointestinais (54%), com início mediano de 1 ano; 92,1% tiveram alergia, com início mediano aos 5 anos (rinite 97,8% dos alérgicos, asma 67%, dermatite atópica 19,1%); 19,6% tiveram autoimunidade, com início mediano aos 8 anos (tiroidite em 60%, PTI e LES), sempre associada a outras manifestações [21]. A sequência infeções → alergias → autoimunidade foi estatisticamente significativa. Metade das crianças tinha hipergamaglobulinemia (IgG ou IgM acima do percentil 97,5), associada a autoimunidade e autoanticorpos, e 20 de 51 tinham IgE elevada sem correlação com alergia; foram raros os eventos graves (otomastoidite, sépsis, osteomielite) [21]. A evolução da IgA e a progressão para CVID desta série são descritas na secção 11.

4. Reconhecimento Clínico e Sinais de Alerta

O DIgAS é, na maioria das vezes, um achado: descobre-se no rastreio de dadores de sangue, na investigação de doença celíaca em que se mede a IgA total, ou depois de uma reação transfusional [26, 59]. A suspeita clínica deve surgir perante infeções sinopulmonares recorrentes, rinite alérgica ou asma graves, doença celíaca, tiroidite autoimune, citopenias autoimunes, AIJ ou LES, e a avaliação é obrigatória após anafilaxia a hemoderivados e quando existe história familiar de défices de imunoglobulinas [26]. O contexto etário orienta a interpretação: numa criança pequena com infeções de repetição, uma IgA baixa pode refletir apenas imaturidade ou hipogamaglobulinemia transitória da infância, e o diagnóstico definitivo só se estabelece depois dos 4 anos [21, 35]. Nos Países Baixos, quando a IgA foi padronizada por percentis para a idade, a DIgA foi encontrada em 2,9% das crianças com 2 ou mais anos e infeções respiratórias recorrentes contra nenhum de 189 controlos [60].

Contexto Sinal de alerta Atitude
Infância (≥4 anos) e adolescência Pneumonias, sinusites ou otites recorrentes; diarreia crónica ou giardíase; alergia respiratória grave Doseamento de IgA, IgG e IgM; se sintomático, subclasses de IgG e respostas vacinais [4, 26]
Doença celíaca suspeita ou em rastreio Qualquer pedido de serologia celíaca IgA total em simultâneo; se DIgA, serologia IgG [55, 61]
Doença autoimune Tiroidite, PTI, AHAI, AIJ, LES, DM1, doença inflamatória intestinal Considerar doseamento de IgA [26]
Transfusão Anafilaxia ou reação febril ou inflamatória grave e recorrente nos primeiros 15 minutos Doseamento de IgA por método sensível e discussão com medicina transfusional [25]
Antes de transfusões crónicas Início de programa transfusional (talassemia) Doseamento de imunoglobulinas para identificar DIgA [62]
Biópsia renal Ausência total de IgA de fundo na imunofluorescência Doseamento de imunoglobulinas [58]
Fármacos IgA baixa sob antiepiléticos, sulfassalazina, penicilamina, hidroxicloroquina ou anti-inflamatórios não esteroides Rever medicação e repetir após suspensão [4]
Fenótipo sindrómico Dismorfia, défice intelectual, ataxia, microcefalia ou cardiopatia com IgA baixa Investigar síndrome subjacente (secção 6) [15–17]

São sinais de agravamento, que obrigam a reavaliação imunológica, a queda de IgG ou IgM, a perda de respostas vacinais, as infeções graves ou invasivas, as bronquiectasias, a autoimunidade e as citopenias, porque podem anunciar a evolução para CVID [4, 63]. A situação de urgência própria desta condição é a reação anafilática a hemoderivados ou a imunoglobulina, tratada com adrenalina intramuscular (secção 7.7) [25]. Não existe rastreio neonatal para o DIgAS, e a IgA está fisiologicamente ausente ao nascer [26].

5. Diagnóstico: Critérios, Testes e Algoritmos

5.1. Critérios diagnósticos

As definições de referência coincidem no essencial. A definição de trabalho do registo ESID, transcrita por Swain e colaboradores, exige IgA sérica indetetável ou inferior a 7 mg/dL por nefelometria, idade superior a 4 anos, IgG e IgM normais, resposta vacinal normal e exclusão de causas secundárias de hipogamaglobulinemia e de defeitos de células T [26, 34]. O parâmetro prático norte-americano da American Academy of Allergy, Asthma and Immunology (AAAAI) e do American College of Allergy, Asthma and Immunology (ACAAI) de 2015 estabelece o diagnóstico acima dos 4 anos com IgA <7 mg/dL, IgG e IgM normais e exclusão de outras causas de hipogamaglobulinemia (afirmação SS96, grau C) [4]. A IUIS descreve o DIgAS como IgA ausente com os restantes isotipos, subclasses e anticorpos específicos normais [3]. O texto integral das definições ESID de 2019 não foi consultado; a transcrição secundária não esclarece se a definição inclui critérios de entrada clínicos, pelo que se usa a versão apresentada.

Entidade (definições ESID) IgA IgG e IgM Respostas vacinais e outros critérios
Défice seletivo de IgA Indetetável ou <7 mg/dL; >4 anos Normais Resposta vacinal normal; exclusão de causas secundárias e de defeitos T
Défice de IgA com défice de subclasses de IgG Indetetável ou <7 mg/dL; >4 anos Normais ou baixas-normais; ≥1 subclasse de IgG baixa Resposta normal a algumas vacinas; exclusões
Défice de anticorpos específicos (SPAD) Normal Normais, com subclasses normais Resposta a polissacáridos gravemente alterada; exclusão de defeitos T
CVID Marcadamente baixa IgG < −2 desvios-padrão para a idade, com ou sem IgM baixa; >4 anos Resposta vacinal gravemente alterada ou células B de memória com mudança de classe <70% do normal para a idade; exclusões
Défice de anticorpos não classificado Diminuição de ≥1 de IgG, IgA, IgM ou subclasse, ou resposta vacinal gravemente alterada — Não cumpre outra definição; exclusões

Fonte: transcrição da tabela 1 de Swain e colaboradores, adaptada das definições ESID [26]. A aplicação destas definições no registo ESID, com mais de 25 000 doentes, levou à reclassificação de 8% dos adultos e 27% das crianças inicialmente registados como CVID em 22 outros EII, o que mostra a utilidade de critérios explícitos quando não existe diagnóstico genético [34].

5.2. Doseamento da IgA e limites analíticos

O limiar de 7 mg/dL (0,07 g/L) foi escolhido porque corresponde ao limite inferior de deteção da maioria dos laboratórios clínicos [10]. Só métodos capazes de detetar valores inferiores distinguem a IgA ausente da IgA muito baixa: cerca de dois terços das pessoas com IgA <7 mg/dL têm IgA detetável a nível inferior e cerca de um terço parece ter ausência completa [4]. A prevalência medida depende do método e do limiar (2 a 10 mg/dL conforme o laboratório) [26], e os programas de dadores raros usam limiares muito mais baixos, habitualmente <0,05 mg/dL, para definir a DIgA absoluta [31]. Na série brasileira, a IgA foi doseada fora de infeções e repetida ao longo do seguimento (média de nove colheitas por doente, com intervalo mínimo de um ano) [21]; a padronização por percentis para a idade e para o ensaio, proposta nos Países Baixos, permite definir DIgA em crianças pequenas como IgA abaixo do percentil 2,5 [60]. Para rastreio em larga escala foram desenvolvidos testes rápidos de ponta de dedo e, no Japão, um reagente de aglutinação em látex com anticorpos monoclonais e limite de deteção de 0,4 mg/dL, cujos positivos são confirmados por ensaio imunoenzimático (ELISA) [64, 65].

5.3. O «défice parcial de IgA»: uma divergência terminológica

As fontes não concordam sobre o que chamar a uma IgA abaixo de −2 desvios-padrão para a idade mas superior a 7 mg/dL. Yel e Cinicola e colaboradores designam-na «défice parcial de IgA» e consideram-na frequente [5, 10]. O parâmetro prático de 2015 recomenda que estes doentes não recebam o diagnóstico de DIgA, porque não há associações clínicas consistentes nessa faixa (afirmação SS97, grau C) [4]. Na prática, a diferença é sobretudo de rótulo: a criança com IgA baixa mas detetável não preenche os critérios de DIgAS, mas deve ser reavaliada, porque a IgA pode subir ou descer; na série brasileira, 9 de 51 crianças com DIgAS passaram a ter IgA apenas parcialmente diminuída durante o seguimento [21].

5.4. Avaliação imunológica complementar

A investigação inicial de suspeita de imunodeficiência inclui hemograma com contagem diferencial, doseamento de imunoglobulinas, subpopulações de linfócitos T e resposta de anticorpos a imunizações prévias (tétano, difteria) [40]. No doente com DIgA sintomático, acrescentam-se as subclasses de IgG, as respostas a antigénios proteicos e polissacarídicos (pneumocócicos) e a imunofenotipagem das células B com memória com mudança de classe, porque o défice de subclasses, a má resposta a polissacáridos e a diminuição das células B de memória são mais frequentes nos sintomáticos e definem entidades diferentes ou maior risco [4, 26]. Os autoanticorpos (anticorpos antinucleares e anti-tiroideus) são úteis no seguimento, dada a frequência de autoimunidade [21]. A investigação de causas secundárias (fármacos, infeções, perdas proteicas) é parte obrigatória do diagnóstico [4, 26].

5.5. Doença celíaca no doente com DIgA

As provas serológicas de primeira linha da doença celíaca (IgA anti-transglutaminase tecidular, tTG-IgA; IgA antiendomísio, EMA-IgA; IgA anti-péptidos desamidados de gliadina, DGP-IgA) dependem da IgA e são falsamente negativas no DIgAS [14, 26]. Todas as diretrizes consultadas recomendam medir a IgA total e, perante DIgA, usar provas baseadas em IgG, com diferenças de pormenor. As siglas TGA-IgA, TTG-IgA e IgA-TG2 designam o mesmo teste (IgA anti-transglutaminase 2), tal como IgG-TG2, TTG-IgG e tTG-IgG para a versão IgG.

Diretriz Medição de IgA total Teste na DIgA Força e notas
Sociedade Europeia para o Estudo da Doença Celíaca (ESsCD) 2019 [55] Em simultâneo com a serologia (forte, evidência moderada) IgG-DGP ou IgG-TG2 no diagnóstico e no seguimento (forte, moderada); a combinação IgG-DGP com IgG-TG2 é considerada a melhor ferramenta DIgA no grupo de risco (risco 10–20 vezes maior); considerar outras causas de atrofia vilositária (giardíase, sobrecrescimento bacteriano, CVID)
American College of Gastroenterology (ACG) 2023 [61] Concomitante, se o doente nunca foi testado para DIgA IgG (DGP e/ou TTG); recomendação 8B: em crianças com DIgA, testes IgG (DGP-IgG ou TTG-IgG) (forte, qualidade moderada) Valor do DGP-IgG isolado com TTG-IgG negativo incerto (baixo valor preditivo positivo); via sem biópsia não aplicável à DIgA
Sociedade Europeia de Gastrenterologia, Hepatologia e Nutrição Pediátricas (ESPGHAN) 2020 [66] IgA total + TGA-IgA como combinação inicial Teste baseado em IgG só se a IgA total for baixa ou indetetável Via sem biópsia (TGA-IgA ≥10× o limite superior do normal e EMA-IgA positivo numa segunda amostra) depende de testes IgA e não se aplica à DIgA; o resumo consultado não define o valor de IgA «baixa»
GeneReviews, doença celíaca [14] Recomendada tTG-IgG e DGP-IgG (segundo ACG 2023) Tipagem HLA-DQ2/DQ8 negativa exclui praticamente a doença

Swain e colaboradores consideram a IgG anti-tTG o marcador sérico mais fiável na DIgAS, superior ao IgG anti-DGP, enquanto a ESsCD privilegia a combinação dos dois e a ACG reserva dúvidas sobre o DGP-IgG isolado [26, 55, 61]. A biópsia duodenal (pelo menos 4 fragmentos do duodeno distal e 1 do bulbo, sob dieta com glúten) permanece o padrão diagnóstico no doente com DIgA, porque a via sem biópsia das crianças depende de testes IgA [26, 66]. A tipagem HLA-DQ2/DQ8 tem elevado valor preditivo negativo e, na ESsCD, é o primeiro passo na criança assintomática de risco [14, 55]. No seguimento, as serologias IgG descem sob dieta sem glúten mas podem não normalizar apesar de dieta estrita, pelo que são pouco úteis para avaliar a adesão [26, 55]. Os ensaios multiplex com esferas de verificação de IgA detetam a DIgA sem pré-rastreio separado, com dados ainda limitados [55].

5.6. Anticorpos anti-IgA

Os anticorpos anti-IgA podem ser da classe IgG ou IgE e dirigidos contra a IgA em geral (anticorpos de classe) ou contra uma subclasse [67, 68]. Existem em 19% de 159 dadores finlandeses com DIgA grave (níveis estáveis em 19 anos de seguimento, sem relação com exposição prévia a IgA) e não foram encontrados nos que tinham IgA diminuída mas detetável [69]. Numa série norte-americana citada por Keller e colaboradores, estavam presentes em 79% dos doentes com DIgA absoluta (<0,05 mg/dL) e em 21% dos que tinham IgA muito baixa mas detetável [31]; no Japão, cerca de 32% dos IgA-deficientes têm anti-IgA, maioritariamente naturais [65]. Em França, com uma técnica comercial padronizada, a IgG anti-IgA foi encontrada em 30% de 10 doentes com DIgAS, 6% de 32 com outros EII e 2% de 46 controlos [70]. Os ensaios disponíveis (ELISA, citometria, imunoensaio enzimático fluorescente, gel de partículas) não estão padronizados, não existe consenso sobre o limiar clinicamente significativo nem padrão de referência, e o teste de anti-IgA de classe IgE, que seria o mais relevante para a anafilaxia, tem pouca disponibilidade [10, 30]. O valor preditivo de um anti-IgA positivo é limitado: é considerado necessário mas não suficiente para uma reação grave [31].

5.7. Testes genéticos e os seus limites

Não existe teste genético diagnóstico para o DIgAS isolado, cuja base é poligénica [8]. A tipagem HLA tem utilidade para a doença celíaca, não para o diagnóstico de DIgAS. A pesquisa de variantes de TNFRSF13B não deve ser usada como teste preditivo isolado: uma variante heterozigótica C104R ou A181E é um fator de suscetibilidade a interpretar com o fenótipo imunológico e não estabelece diagnóstico, e não há ensaio funcional que confirme doença atribuível a TNFRSF13B [3, 11, 41]. A análise genética tem indicação quando o fenótipo sugere outra entidade: IgA baixa com dismorfia, défice intelectual, ataxia ou cardiopatia (síndromes cromossómicas e monogénicas, secção 6), DIgA com autoimunidade grave de início precoce, como no LES por IFIH1, ou défice de anticorpos com progressão para CVID, situação em que se aplica a abordagem geral dos erros inatos da imunidade [43, 45]. Abolhassani e colaboradores propõem avaliação clínica e imunológica seguida de análise génica dirigida [43]. Um painel ou exoma negativo não exclui uma causa monogénica rara, e a deteção de grandes deleções (14q32, 18q, 22q11.2) exige métodos de número de cópias. Quando se reporta uma variante, o relatório deve indicar gene, transcrito com versão, nomenclatura HGVS, zigosidade e classificação segundo o American College of Medical Genetics and Genomics e a Association for Molecular Pathology (ACMG/AMP); a classificação ClinVar das variantes de TNFRSF13B é conflituosa, o que reforça a cautela [48].

5.8. Algoritmo prático

Passo Situação Atitude
1 IgA <7 mg/dL num doseamento Repetir fora de infeção; doseamento de IgG e IgM; confirmar idade >4 anos [4, 21]
2 Idade ≤4 anos Não diagnosticar; reavaliar após os 4 anos; considerar imaturidade ou hipogamaglobulinemia transitória [35]
3 IgG ou IgM baixas Não é DIgAS; avaliar CVID ou outro défice [26]
4 IgG e IgM normais Excluir fármacos, infeções (vírus da hepatite C, Epstein-Barr), perdas proteicas, distrofia miotónica e síndromes [4, 26]
5 Doente sintomático Subclasses de IgG, respostas a vacinas proteicas e polissacarídicas, células B de memória; se alteradas, reclassificar como DIgA com défice de subclasses ou SPAD [4, 26]
6 Todos Serologia celíaca baseada em IgG quando indicada; avaliação de autoimunidade e atopia [55, 61]
7 Transfusão previsível ou reação prévia IgA por método sensível e anti-IgA no serviço de sangue; registar o diagnóstico [25, 31]
8 Fenótipo sindrómico, autoimunidade grave precoce ou evolução para CVID Estudo genético dirigido [43]

5.9. Diagnóstico pré-natal e pré-implantação

O diagnóstico pré-natal e o teste genético pré-implantação não têm aplicação no DIgAS isolado, por não existir variante causal identificável. Só se colocam quando a IgA baixa faz parte de uma doença monogénica ou cromossómica com variante familiar conhecida.

6. Diagnóstico Diferencial

6.1. Outros défices de anticorpos

O diferencial essencial faz-se com as entidades que partilham a IgA baixa mas têm outro prognóstico e outra conduta. A hipogamaglobulinemia transitória da infância cursa com IgG e IgA diminuídas em crianças pequenas e é a razão principal para não diagnosticar DIgAS antes dos 4 anos [3, 35]. A CVID exige IgG baixa, IgA marcadamente baixa e má resposta vacinal ou células B de memória diminuídas; o DIgAS pode evoluir para CVID, ambas ocorrem nas mesmas famílias, e o diagnóstico de CVID é imunológico e não depende do genótipo de TNFRSF13B [11, 26, 40]. A CVID tem genes próprios, incluindo ICOS, CD19, CD20, CD81, TNFRSF13C/BAFF-R e TNFRSF13B [40, 71, 72]. Na coorte neozelandesa de CVID, os doentes Māori tinham bronquiectasias em 79% contra 38% dos caucasianos e mais DIgA completa, o que recorda que a IgA ausente numa CVID se associa a doença pulmonar mais grave [73]. O défice de IgA com défice de subclasses de IgG e o SPAD distinguem-se pelas subclasses e pelas respostas vacinais e mudam a indicação de imunoglobulina [26, 27].

6.2. Causas secundárias

A DIgA adquirida associa-se a fármacos, sendo a investigação da medicação recomendada (SS99, grau C): fenitoína, carbamazepina, ácido valproico, zonisamida, sulfassalazina, sais de ouro, penicilamina, hidroxicloroquina e anti-inflamatórios não esteroides, com reversibilidade frequente após suspensão [4]. Swain e colaboradores acrescentam os modificadores de doença antirreumáticos e os inibidores da enzima de conversão da angiotensina, e a disbiose induzida por antibióticos de largo espetro, com perda de APRIL e BAFF demonstrada em modelo murino e em lavado broncoalveolar de doentes de cuidados intensivos [26]. A DIgA medicamentosa é geralmente reversível, mas há casos persistentes, como sob ciclosporina, que podem corresponder a um DIgAS prévio [26]. Outras causas são as infeções pelo vírus da hepatite C e pelo vírus de Epstein-Barr, a distrofia miotónica e a enteropatia perdedora de proteínas [26]. A má absorção hereditária de folato (SLC46A1) cursa com IgG, IgM e IgA baixas em cerca de 25% dos doentes, corrigidas pelo folato [74].

6.3. Síndromes genéticas com IgA baixa

Entidade Gene/locus Herança Dado imunológico Traços distintivos Teste discriminante
DIgAS Poligénico/HLA Multifatorial IgA <7 mg/dL, IgG/IgM e respostas vacinais normais Maioria assintomática Doseamento repetido após os 4 anos
CVID Maioria desconhecida; TNFRSF13B bialélico, ICOS, TNFRSF13C, CD19… Variável IgG baixa, IgA baixa ± IgM baixa, má resposta vacinal Infeções graves, bronquiectasias, granulomas, linfoproliferação IgG, respostas vacinais, células B de memória [26, 40]
Deficiência de TACI TNFRSF13B (17p11.2) AR ou AD com penetrância incompleta IgG e IgA e/ou IgM baixas Autoimunidade, linfoproliferação Sequenciação em contexto de CVID, não de DIgAS isolado [3]
Deleção 22q11.2 22q11.2 AD/de novo Alterações humorais em 17%; DIgA em 13% (2–13% segundo o parâmetro prático) Malformações cardíacas conotruncais, fenda palatina; DIgA associada a autoimunidade, incluindo AIJ Microarray ou FISH [4, 17]
Ataxia-telangiectasia ATM AR IgA, IgG2 e IgG4 baixas; DIgA entre os défices mais comuns; cerca de 10% com IgA e IgG baixas e IgM normal ou alta (fenótipo hiper-IgM, menor sobrevida) Ataxia, telangiectasias Alfafetoproteína >10 ng/mL (habitualmente 200–1000; pouco fiável antes dos 2 anos) [15]
Nijmegen NBN AR Défice de IgG em 62% e de IgA em 57%; défice de subclasses mesmo com IgG normal Microcefalia progressiva, instabilidade cromossómica, células B, CD3 e CD4 reduzidas em 80–89% Sequenciação de NBN [16]
Kabuki KMT2D, KDM6A AD/ligada ao X Hipogamaglobulinemia e DIgA comuns; pode mimetizar CVID Fendas palpebrais longas com eversão do terço lateral da pálpebra inferior; autoimunidade (vitiligo, PTI, anemia hemolítica, diabetes) Sequenciação [18]
Deleção 18q 18q De novo/familiar IgA diminuída a ausente (ocasional), por vezes com défice de IgG4 Doença celíaca, vitiligo, alopecia areata, psoríase, diabetes, tiroidite Microarray [4, 75]
Duplicação Xq28 MECP2 Ligada ao X IgA e IgM baixas, IgG elevada, má resposta a polissacáridos Défice intelectual (99%) no sexo masculino, infeções recorrentes Microarray [76]
Wolf-Hirschhorn 4p16.3 De novo Défices de anticorpos (IgA/IgG2, IgA isolada, má resposta polissacarídica) em 69% das crianças estudadas (série de 1998) — Microarray [77]
Deleção 3q29 recorrente 3q29 AD/de novo DIgA em 3% e défice de IgG em 3% (dados de registo autorreportados) Perturbações neuropsiquiátricas (perturbação do espetro do autismo, esquizofrenia) Microarray [78]
Myhre SMAD4 AD Défices de IgG e IgA raros; benefício de imunoglobulina intravenosa (IgIV) em pelo menos 2 doentes Rigidez, fibrose e espessamento cutâneo, baixa estatura Sequenciação [79]
Okur-Chung CSNK2A1 AD Défice de IgG e/ou IgA em poucos doentes Atraso do desenvolvimento e défice intelectual Sequenciação [80]
Má absorção hereditária de folato SLC46A1 AR IgG, IgM e IgA baixas em cerca de 25% Convulsões; correção imunológica com folato Folato no líquido cefalorraquidiano, sequenciação [74]
Deficiência de RAC2 RAC2 AR IgG, IgA e IgM baixas; DIgA Infeções sinopulmonares, glomerulonefrite pós-estreptocócica, urticária Sequenciação [3]
Deleções das cadeias pesadas 14q32 AR Falta de ≥1 subclasse de IgG e/ou IgA e IgE Pode ser assintomática Análise de número de cópias [3, 10]
LES com DIgA por IFIH1 IFIH1 p.(Arg779His) AD, de novo DIgA LES precoce refratário, espasticidade Exoma; interferão α [45]

Nas síndromes, a IgA baixa é habitualmente uma manifestação acessória: a dismorfia, o atraso do desenvolvimento, a ataxia ou a cardiopatia dominam o quadro, e o diagnóstico faz-se com o teste citogenético ou molecular apropriado. Na ataxia-telangiectasia, a combinação de DIgA com défice de IgG2 associa-se a pior resposta polissacarídica, e o fenótipo hiper-IgM identifica um subgrupo com menor sobrevida [15]. No Nijmegen, o défice de subclasses pode existir com IgG total normal, e a vigilância humoral é mais intensa do que no DIgAS (a cada 6 semanas no primeiro ano e depois a cada 3–6 meses até iniciar IgIV) [16]. A frequência de DIgA na deleção 3q29 baseia-se num registo autorreportado e deve ser interpretada com cautela [78]. O capítulo GeneReviews de Wolf-Hirschhorn foi retirado e só tem valor histórico; os dados imunológicos provêm de uma série de 1998 [77].

7. Tratamentos e Estratégias de Gestão de Risco

7.1. Princípios gerais

Não existe tratamento que restaure a produção de IgA, e não há preparação de imunoglobulina enriquecida em IgA disponível [39, 81]. As pessoas assintomáticas ou diagnosticadas casualmente não precisam de tratamento; devem ser informadas sobre o diagnóstico, sobre as complicações possíveis e sobre a sua relevância numa eventual transfusão, e a identificação médica (pulseira ou cartão de alerta) é recomendada por várias fontes [10, 26]. Nos sintomáticos, o tratamento dirige-se às complicações (infeções, atopia, autoimunidade, doença celíaca), com monitorização ao longo do tempo para a deteção de novas complicações e de evolução para outro défice (SS98, grau C) [4, 26]. Os doentes com imunodeficiência primária devem ser seguidos por um imunologista clínico [40].

7.2. Infeções

As infeções agudas tratam-se com antibioterapia dirigida, de forma precoce e enérgica [4, 26]. Nas infeções sinopulmonares recorrentes que persistem apesar do controlo da alergia, da asma e da rinossinusite, o parâmetro prático norte-americano recomenda terapêutica antimicrobiana agressiva e/ou profilaxia (SS100, grau C), e Swain e colaboradores propõem profilaxia antibiótica diária, eventualmente sazonal, a manter se for eficaz [4, 26]. As fontes consultadas não definem um esquema de profilaxia (fármaco, dose e duração) específico para o DIgAS; aplicam-se por analogia os esquemas usados nos défices de anticorpos. A giardíase trata-se com metronidazol, com possibilidade de refratariedade, e recomenda-se reduzir a exposição ao parasita [26]. As bronquiectasias, quando presentes, justificam a vigilância e o tratamento próprios desta complicação [40].

7.3. Alergia e asma

A atopia deve ser tratada de forma vigorosa (SS101, grau C), porque a inflamação alérgica predispõe a sinusite e otite e a asma e a rinite associam-se a doença mais grave [4, 26]. O tratamento segue as diretrizes gerais de cada doença alérgica; as fontes consultadas não descrevem particularidades farmacológicas no DIgAS.

7.4. Autoimunidade e doença celíaca

As doenças autoimunes tratam-se segundo as respetivas diretrizes. Na doença celíaca, a diretriz da ACG recomenda dieta sem glúten estrita e seguimento vitalício [61]; no doente com DIgA, a monitorização da adesão pelas serologias IgG é limitada, porque estas podem não normalizar apesar de dieta estrita [55]. No LES causado pela variante de ganho de função de IFIH1, a doença manteve-se ativa apesar da imunossupressão, o que coloca estes doentes no âmbito das interferonopatias [45].

7.5. Imunoglobulina de substituição: indicações

A imunoglobulina de substituição não está indicada no DIgAS isolado. A revisão de evidência da AAAAI de 2017 classifica-a como «improvável de ser benéfica» (evidência IV, recomendação D), tal como nos défices isolados de IgE, IgG4 e IgM; se coexistir má produção de IgG específica, com ou sem défice de IgG2, o fenótipo deve ser tratado como défice de anticorpos específicos [27]. O parâmetro prático de 2015 admite que raros doentes possam beneficiar (SS102, grau C): o uso é controverso e a resposta mínima na maioria, e um ensaio terapêutico pode ser considerado quando as infeções recorrentes afetam a qualidade de vida apesar de antibioterapia e profilaxia agressivas, ou quando há intolerância ou hipersensibilidade a antibióticos [4]. Swain e colaboradores e a Immune Deficiency Foundation (IDF) restringem o benefício aos doentes com défice de anticorpos específicos ou de IgG2 e infeções graves recorrentes, sobretudo com bronquiectasias [26, 39]; Yazdani e colaboradores aceitam-na no fenótipo grave e justificado, com produto de conteúdo mínimo de IgA [81].

Situação Categoria AAAAI 2017 Evidência e grau
DIgAS isolado Improvável de ser benéfica IV, D [27]
Défice isolado de IgE, IgG4 ou IgM Improvável de ser benéfica IV, D [27]
Défice isolado de subclasses IgG1, IgG2 ou IgG3 com infeções recorrentes Pode trazer benefício III, C [27]
Défice de anticorpos específicos com IgG normal Provavelmente benéfica III, C [27]

Quando é usada, a via subcutânea é a preferida por Swain e colaboradores e pela IDF, porque pode reduzir o risco de anticorpos anti-IgA clinicamente relevantes e porque doentes que reagiram a IgIV toleraram imunoglobulina subcutânea (IgSC); na sua falta, usa-se a IgIV com menor conteúdo de IgA [4, 26, 27, 39]. A afirmação da IDF de que a anafilaxia à IgSC não foi relatada provém de material destinado a doentes [39]. Quando a IgG está baixa, a DIgA não contraindica a imunoglobulina (SS12, grau C), e a anafilaxia à IgIV é muito rara [4].

7.6. Produtos de imunoglobulina: conteúdo de IgA, posologia e rótulos

Todas as preparações de imunoglobulina contêm alguma IgA, e o rótulo do Gammagard S/D® afirma que a concentração de IgA que não provoca reação é desconhecida [82]. Nenhum produto tem indicação para o DIgAS isolado; os rótulos da Food and Drug Administration (FDA) dos EUA referem-se à imunodeficiência primária humoral (PI), e o relatório público europeu de avaliação (EPAR) da Agência Europeia de Medicamentos (EMA) às imunodeficiências primárias e secundárias; o uso num doente com DIgA associada a défice de anticorpos específicos ou de subclasses é uma decisão especializada dentro da indicação genérica de PI [82, 83]. As doses abaixo são as dos rótulos para PI e não doses validadas no DIgAS.

Produto (titular) Via e concentração IgA Dose em PI (rótulo) Contraindicação ou advertência ligada à DIgA Fonte
Gammagard S/D® (Takeda) IV, liofilizada, 5 g ou 10 g <1 µg/mL em solução a 5% 300–600 mg/kg a cada 3–4 semanas Contraindicada só após anafilaxia ao próprio produto; advertência: IgA-deficientes com anti-IgA têm maior risco de reações graves; débito máximo <3,3 mg/kg/min nos doentes de risco [82]
Gammagard Liquid ERC® (Takeda) IV ou SC, 10% ≤2 µg/mL IV: 300–600 mg/kg a cada 3–4 semanas; início a 0,5 mL/kg/h (0,8 mg/kg/min) durante 30 min, aumento a cada 30 min até 5 mL/kg/h (8 mg/kg/min); SC: dose inicial = 1,37 × dose IV anterior ÷ n.º de semanas entre doses IV Contraindicada só após anafilaxia ou hipersensibilidade sistémica grave ao próprio produto; aviso em caixa: trombose, disfunção e insuficiência renal aguda [83]
Deqsiga® (Takeda; mesmo produto na UE) IV Baixo (EPAR) Administração a cada 3–4 semanas na imunodeficiência «Não deve ser usado em pessoas com DIgA seletiva que desenvolveram anticorpos anti-IgA»; reações alérgicas graves até 1 em 100 [84]
Privigen® (CSL Behring) IV, 10% ≤25 µg/mL — (não extraída) Contraindicada em IgA-deficientes com anti-IgA e história de hipersensibilidade; adrenalina disponível [85]
Hizentra® (CSL Behring) SC, 20% ≤50 µg/mL — (não extraída) Contraindicada em DIgA com anti-IgA e história de hipersensibilidade; também hiperprolinemia tipo I/II e anafilaxia ao polissorbato 80 [86]

O efeito adverso que define a gestão no DIgA é a hipersensibilidade: preparações depletadas de IgA (0,4–2,9 µg/mL) foram melhor toleradas por doentes que tinham reagido a produtos com mais IgA, mas houve anafilaxia apesar do baixo teor [82]. A gestão consiste em escolher produto de baixo teor de IgA ou a via subcutânea, iniciar a débito lento, ter adrenalina disponível e observar o doente; as reações graves exigem suspensão e avaliação especializada [27, 82, 85]. Os restantes efeitos de classe (trombose, disfunção renal) seguem os avisos dos rótulos [83].

Produto EUA (FDA) UE (EMA) Consequência prática
Gammagard Liquid ERC® / Deqsiga® Autorização inicial em 2025 («Initial U.S. Approval: 2025»; comunicado da empresa de 30 de junho de 2025); PI humoral em adultos e crianças ≥2 anos; comercialização prevista para 2026 Autorização válida na União Europeia (UE) em 2 de maio de 2025 como Deqsiga®; imunodeficiência primária e secundária com infeções graves ou recorrentes, e imunomodulação (PTI, Guillain-Barré, Kawasaki, polineuropatia desmielinizante inflamatória crónica, neuropatia motora multifocal); comercialização prevista para 2027 O rótulo norte-americano não contraindica o uso em DIgA com anti-IgA (só hipersensibilidade prévia ao produto); a EMA mantém a contraindicação de classe
Gammagard S/D® PI ≥2 anos, leucemia linfocítica crónica B, PTI crónica do adulto, Kawasaki (data inicial não extraída) — Produção termina no fim de dezembro de 2027, sendo substituído pela formulação líquida
Privigen®, Hizentra® PI e outras indicações (datas iniciais não extraídas) — Contraindicação explícita em DIgA com anti-IgA e história de hipersensibilidade

Fontes da tabela: rótulos e EPAR [82–86] e comunicado da empresa [87]. O comunicado da Takeda refere que o Gammagard Liquid ERC® não está indicado especificamente para a sensibilidade à IgA, mas pode ser considerado por juízo clínico, e que o risco de anafilaxia se mantém [87]. Os ensaios do Deqsiga® incluídos no EPAR foram feitos em doentes com imunodeficiência primária e PTI, não em DIgAS: em 22 doentes com imunodeficiência primária a taxa de infeções não graves foi 0,48 por doente-mês, sem infeções graves, e num estudo de 12 meses com 61 doentes foi 0,07 por doente-ano [84]. O acesso em Portugal e no Brasil a estas formulações de baixo teor de IgA não foi documentado nas fontes consultadas.

7.7. Transfusão, anticorpos anti-IgA e anafilaxia

A relação entre DIgA, anticorpos anti-IgA e reações transfusionais foi descrita em 1968 e levou durante décadas à recomendação de componentes de dadores IgA-deficientes ou lavados [29, 30]. A evidência acumulada mostra que o risco real é muito baixo. As estimativas antigas de anafilaxia mediada por anti-IgA situam-se em 1:20 000 a 1:47 000 transfusões [26]. Na hemovigilância francesa de 2004–2014, entre 9074 reações de hipersensibilidade em mais de 5,7 milhões de doentes transfundidos, 18 doentes tinham possível DIgA ou IgG anti-IgA, uma frequência máxima de 1 por 871 911 transfusões; numa revisão de mais de 10 milhões de transfusões, só 3 de 229 reações anafiláticas ou alérgicas graves foram confirmadas como mediadas por IgA (dados citados por Keller e colaboradores) [31]. A diretriz da British Society for Haematology (BSH) de 2023 sublinha que a hemovigilância não mostra maior incidência de DIgA em doentes com anafilaxia, que não há evidência de papel causal do anti-IgA e que as reações em doentes com DIgA têm mais frequentemente características inflamatórias (febre, calafrios, mialgias) de início rápido, nos primeiros 15 minutos [25].

O papel do anti-IgA é discutido. É considerado necessário mas não suficiente: numa série norte-americana, houve reações de hipersensibilidade em dois terços dos doentes com anti-IgA e em nenhum sem anti-IgA, e o modelo atual combina a predisposição do recetor (basófilos e mastócitos ativados, IgE passiva, inflamação) com mediadores do componente (IgA, haptoglobina, CCL5, frações do complemento) [31]. Para a imunoglobulina terapêutica, Rachid e Bonilla concluíram que o papel causal dos anti-IgA IgG ou IgE permanece controverso, dependendo da concentração, do isotipo, da especificidade, do método, do conteúdo de IgA do produto e da via [67]; Collet e colaboradores reuniram 38 doentes com IgG anti-IgA e hipersensibilidade à imunoglobulina e 9 com anti-IgA e boa tolerância, documentaram ativação do complemento após a infusão e propuseram uma pseudoalergia mediada pelo complemento como explicação alternativa [70]. A revisão da AAAAI acrescenta que a IgE anti-IgA pode causar anafilaxia e a IgG anti-IgA reações por ativação do complemento, mas que a grande maioria dos doentes com IgA baixa, com ou sem IgG anti-IgA, recebe IgIV sem dificuldade, e que na CVID a IgG anti-IgA (10–22%) não se correlaciona com reações [27]. Numa série do Québec de 272 componentes de dadores IgA-deficientes, a frequência de reações alérgicas minor não diferiu entre dadores com e sem anti-IgA (1,15% vs 2,04%) e não houve anafilaxia [88].

As recomendações divergem. A BSH 2023, que substituiu a diretriz de 2012 da British Committee for Standards in Haematology [89], adota uma abordagem baseada na história de reação, e Keller e colaboradores, pelo grupo de dadores raros da International Society of Blood Transfusion (ISBT), propõem uma abordagem baseada na história e no anti-IgA; a IDF e Yel recomendam componentes lavados ou de dadores IgA-deficientes para todos os doentes com DIgAS que necessitem de transfusão; o parâmetro prático norte-americano considera o risco «pouco claro, provavelmente pequeno» e regista práticas variáveis [4, 10, 25, 31, 39].

Situação BSH 2023 [25] Proposta ISBT (Keller 2026) [31] IDF e Yel 2010 [10, 39]
Anafilaxia transfusional ou reações febris ou inflamatórias graves e recorrentes nos primeiros 15 min Dosear IgA; se DIgA diagnosticada após reação, discutir com especialista em medicina transfusional (2C) Investigar com IgA sensível e anti-IgA Pesquisar anti-IgA idealmente
DIgA confirmada (<0,07 g/L) com história de reação Componentes lavados (eritrócitos lavados; plaquetas lavadas ressuspensas em solução aditiva) para transfusão eletiva; plasma IgA-deficiente da reserva nacional se necessário; transfusão vital não deve ser atrasada: usar componentes padrão sob observação direta (1C) Com anti-IgA detetável: componentes celulares lavados e plasma de dadores IgA-deficientes de programas de dadores raros Eritrócitos lavados ou produtos de dadores IgA-deficientes
DIgA conhecida sem história de reação Componentes padrão com monitorização mais frequente; se alergia ou anafilaxia noutros contextos, discutir com especialista (2C) Sem anti-IgA: componentes padrão; com anti-IgA sem reação: consulta de medicina transfusional antes de pedir produtos raros Eritrócitos lavados para todos

A heterogeneidade da prática foi documentada em dois inquéritos internacionais publicados em 2026. No inquérito do Biomedical Excellence for Safer Transfusion (BEST), 55% dos médicos responderam que a prática local é fornecer produtos IgA-deficientes apenas a doentes com história de reação alérgica grave e anti-IgA confirmado (67% na América, 44% na Europa); mais de 80% testam anti-IgA nos IgA-deficientes confirmados, mas cerca de 20% (30% na Europa) não testam antes de pedir produtos; não há consenso sobre o limiar de anti-IgA nem padrão de referência; e 45% pediram pelo menos um tipo de produto IgA-deficiente em cinco anos [30]. No inquérito da ISBT a 35 programas de dadores raros de 28 países, 17 programas de 11 países (incluindo Itália, Espanha, Suíça, Reino Unido, EUA, Canadá e Brasil) consideram a DIgA absoluta um fenótipo raro, 14 rastreiam ativamente dadores (limiar mais comum <0,05 mg/dL), 922 dadores estavam registados nos programas com esse limiar, e os pedidos em 2019–2023 foram poucos e maioritariamente satisfeitos com produtos lavados [31]. No Brasil, responderam o Hospital Sírio-Libanês (rastreio ativo de dadores) e o Hemocentro da Unicamp (estudos familiares) [31]. As plaquetas lavadas têm validade de 4–6 horas e perda plaquetária, e as alternativas incluem plaquetas em solução aditiva ou com redução de patogénios, com menos proteína plasmática [31]. Cerca de dois terços dos serviços aceitariam plasma ou plaquetas do grupo A com anti-B de título baixo na falta de componentes isogrupo ou AB IgA-deficientes [30].

A anafilaxia trata-se com adrenalina intramuscular, mesmo em doentes com trombocitopenia ou coagulopatia (1A), e a transfusão deve fazer-se apenas onde o doente possa ser observado por equipa treinada (1C) [25]. Numa série alemã de 10 adultos com anti-IgA (9 com CVID e 1 com DIgA e hemoglobinúria paroxística noturna), a indução de tolerância por infusões controladas de IgG reduziu ou eliminou o anti-IgA e permitiu IgIV regular até 10 anos e transfusões de componentes normais sem complicações; a interrupção e reexposição provocaram reações [90]. Esta abordagem baseia-se numa série pequena e não é prática corrente. Antes de programas transfusionais crónicos, como na talassemia, o GeneReviews recomenda doseamento de imunoglobulinas para identificar a DIgA, e o capítulo de má absorção hereditária de folato menciona eritrócitos lavados nos doentes com DIgA [62, 74].

7.8. Vacinação

As fontes concordam em que as vacinas inativadas são seguras e devem ser administradas, incluindo a pneumocócica e a da gripe, e divergem quanto às vacinas vivas.

Fonte Vacinas de rotina Vacinas vivas Vacinas adicionais
Infectious Diseases Society of America (IDSA) 2013 (publicada em 2014) [91] Todas as do calendário anual dos Centros de Controlo e Prevenção de Doenças (CDC), se o resto do sistema imune for normal (forte, evidência baixa) Contraindicada apenas a vacina oral contra a poliomielite (forte, baixa) Gripe inativada anual; monitorizar respostas pode ajudar a avaliar o grau de imunodeficiência (fraca, moderada); verificar imunidade celular antes de vacinas vivas quando há suspeita de defeito associado
CDC/Comité Consultivo sobre Práticas de Imunização (ACIP) [92] Restantes vacinas de rotina se não contraindicadas Contraindicadas a oral contra a poliomielite, bacilo de Calmette-Guérin (BCG), dengue (DEN4CYD) e febre-amarela, com a nota de que não há dados que sustentem a DIgA como contraindicação para a febre-amarela; outras vacinas vivas parecem seguras Pneumocócica; Haemophilus influenzae tipo b (12–59 meses, se incompletamente vacinados); zóster recombinante (≥19 anos); resposta possivelmente atenuada
Swain e colaboradores 2019 [26] Pneumocócica e gripe para todos, mesmo assintomáticos Evitar vacinas vivas atenuadas; oral contra a poliomielite, BCG e febre-amarela contraindicadas, sobretudo com defeitos associados (défice de IgG) Conjugada pneumocócica no SPAD
AAAAI/ACAAI 2015 [4] — Evitar vacinas vivas só na agamaglobulinemia e na CVID Pneumocócica recomendada no DIgAS, no défice de subclasses e no défice de anticorpos específicos

A posição mais fundamentada para o DIgAS sem outro defeito é a da IDSA, que contraindica apenas a vacina oral contra a poliomielite, já não usada nos EUA; a lista do CDC/ACIP é mais restritiva mas reconhece a ausência de dados para a febre-amarela, e a posição de Swain e colaboradores aplica-se sobretudo aos doentes com defeitos associados [26, 91, 92]. Os défices de anticorpos aparentemente minor podem coexistir com defeitos da imunidade celular, como na síndrome de DiGeorge, o que deve ser verificado antes de vacinas vivas [91]. Os conviventes devem receber todas as vacinas, incluindo sarampo-parotidite-rubéola, varicela, rotavírus e gripe [92]. Na criança com SPAD ou ataxia-telangiectasia, a IDSA recomenda a vacina pneumocócica conjugada de 13 valências e, a partir dos 2 anos, a polissacarídica de 23 valências pelo menos 8 semanas depois, com segunda dose 5 anos mais tarde [91].

7.9. Populações especiais: gravidez, lactação, perioperatório e transição

Na coorte sueca de 613 mães com DIgA (1172 partos únicos, 1973–2010) comparadas com 5758 controlos, o peso ao nascer foi 79 g inferior, a gestação 1,4 dias mais curta, o parto pré-termo não diferiu significativamente (5,8% vs 5,2%; OR 1,13), o recém-nascido leve para a idade gestacional foi mais frequente (4,3% vs 2,8%; OR 1,48; IC95% 1,04–2,10), tal como a cesariana (16,9% vs 11,9%; OR 1,51), sem diferença no índice de Apgar; os excessos atenuaram-se quando se excluíram as mulheres com doença autoimune [93]. Em 1985, anticorpos anti-IgA2 isolados foram encontrados em 20% de 61 grávidas IgA-deficientes contra 7,5% das grávidas sem défice, diminuindo após o parto, e os filhos de mães IgA-deficientes (e não de pais) tinham IgA abaixo da média, sobretudo quando a mãe tinha anti-IgA; a hipótese de um efeito transplacentário não foi replicada nas fontes consultadas [68]. Uma eventual transfusão periparto segue as recomendações da secção 7.7. As fontes consultadas não descrevem dados sobre amamentação no DIgAS.

No contexto perioperatório, o diagnóstico de DIgA deve constar do processo e ser comunicado ao serviço de sangue quando se prevê transfusão, aplicando-se as recomendações da secção 7.7 [25, 31]. Na transição para a idade adulta, a vigilância deve deslocar-se das infeções e da alergia para a autoimunidade, que predomina no adulto, e para a possível evolução para CVID [10, 26].

7.10. Ensaios clínicos

Não existem ensaios terapêuticos dirigidos ao DIgAS em curso. A pesquisa no ClinicalTrials.gov de outubro de 2026 encontrou apenas um ensaio de intervenção dirigido à condição, de 2001–2004, e um estudo observacional de hipersensibilidade a imunoglobulina com uma coorte de doentes com DIgAS; a pesquisa negativa não prova a inexistência de outros estudos [94, 95].

Estudo População n Duração Desfecho primário Resultado
NCT00024934 (National Cancer Institute, NCI), fase 1 [94] DIgAS 20 2001–2004 Fase 1 de escalonamento de dose do estimulador de linfócitos B (BLyS/BAFF) subcutâneo (desfecho não descrito na fonte consultada) Concluído; sem resultados publicados no registo
NCT05269082 (Takeda), observacional [95] Doentes ≥2 anos com risco de hipersensibilidade (≥4 anos com DIgAS, IgA <7 mg/dL), estratificados por anti-IgA 72 Abril–setembro de 2022 Hipersensibilidade in vitro (ativação celular, citocinas) à formulação a 10% de baixo teor de IgA comparada com Gammagard S/D® Concluído; sem resultados no registo
NCT06125457, observacional [94] DIgAS e transmissão de COVID-19 120 2022–2023 Epidemiologia Estado desconhecido

A evidência terapêutica do DIgAS assenta, portanto, em estudos observacionais e em consensos de peritos com graus C e D. As recomendações sobre imunoglobulina, profilaxia antibiótica e transfusão não derivam de ensaios aleatorizados nesta população, e os ensaios dos produtos de imunoglobulina foram feitos em doentes com imunodeficiência primária com IgG baixa. As associações das coortes suecas e israelitas são razões de prevalência ou de risco que devem ser lidas à luz das taxas absolutas, baixas para os desfechos graves.

7.11. Novidades dos últimos 6–12 meses (outubro de 2025 a outubro de 2026)

Novidade Tipo e nível de evidência Conteúdo Implicação
Inquéritos BEST e ISBT (Vox Sanguinis, setembro de 2026) [30, 31] Inquéritos internacionais; proposta de peritos Heterogeneidade das práticas transfusionais; proposta de abordagem baseada em anti-IgA e história de reação Apoia a abordagem restritiva da BSH; pedido de padrões e recomendações harmonizadas
Reagente de rastreio de dadores (Japão, 2026) [65] Método laboratorial publicado Aglutinação em látex, limite 0,4 mg/dL; 24 977 dadores → 4 confirmados, 3 com <0,05 mg/dL Rastreio automatizado de dadores raros
Reavaliação de TNFRSF13B (novembro de 2025) e série turca (agosto de 2026) [41, 42] Estudos genéticos observacionais Heterozigotia insuficiente; contribuintes adicionais Não usar variantes TACI como teste preditivo isolado
Coorte islandesa (novembro–dezembro de 2025) [36] Estudo translacional Assinatura sérica com IL-18 e perda de recetor de IL-18 nas células B Biomarcadores candidatos; sem aplicação clínica
COVID-19 em Israel (2026) [53] Coorte retrospetiva Mais reinfeção e hospitalização, não mais primeira infeção Reforça a vacinação
Microbiota e IgA (2026) [37, 38] Observacional com modelo animal; pré-clínico Bifidobacterium e produção de IgA; enteropatia ao glúten dependente da microbiota em ratinhos Hipóteses; sem ensaio de intervenção
Gammagard Liquid ERC® / Deqsiga® [83, 84, 87] Autorizações (FDA e UE em 2025); comercialização prevista em 2026 (EUA) e 2027 (UE) Imunoglobulina líquida com IgA ≤2 µg/mL Alternativa ao Gammagard S/D®, cuja produção termina em 2027

7.12. Recomendações das diretrizes e divergências entre fontes

As recomendações das diretrizes e consensos consultados foram integradas nas secções anteriores; a tabela reúne as seis divergências identificadas e a leitura adotada.

Tema Posições Leitura adotada
Vacinas vivas IDSA: só a oral contra a poliomielite contraindicada; CDC/ACIP: também BCG, dengue e febre-amarela (sem dados para esta); Swain: evitar vivas, sobretudo com defeitos associados [26, 91, 92] Calendário completo no DIgAS isolado com imunidade celular normal; restringir quando há défice associado
Componentes sanguíneos IDF e Yel: lavados ou de dadores IgA-deficientes para todos; BSH 2023 e ISBT: só com história de reação, com ou sem anti-IgA [10, 25, 31, 39] Abordagem baseada na história de reação e no anti-IgA, sem atrasar transfusão vital
«Défice parcial de IgA» Termo aceite por Yel e Cinicola; recusado como diagnóstico pelo parâmetro prático de 2015 [4, 5, 10] Não diagnosticar DIgAS acima de 7 mg/dL; reavaliar
Força da associação com doença celíaca Revisão de geoepidemiologia: associação fraca; coorte sueca: razão de prevalências ≈35 [22, 57] Associação forte, coerente com as diretrizes de doença celíaca
Contraindicação da imunoglobulina de baixo teor de IgA FDA (Gammagard Liquid ERC®): só hipersensibilidade prévia ao produto; EMA (Deqsiga®): contraindicação na DIgA com anti-IgA [83, 84] Seguir o rótulo da jurisdição; na UE, a presença de anti-IgA contraindica o produto
Papel do anti-IgA IgG Rótulos de Privigen® e Hizentra®: contraindicação com anti-IgA e história de hipersensibilidade; revisões: papel causal controverso, ativação do complemento como alternativa [27, 67, 70, 85, 86] O anti-IgA isolado não impede a imunoglobulina; a história de reação orienta a escolha de produto e via

8. Opções Reprodutivas e Aconselhamento Familiar

8.1. Modelo de herança e risco de recorrência

O DIgAS não segue um padrão mendeliano na maioria das famílias: é habitualmente esporádico, mas foram observados padrões autossómicos recessivos e dominantes, e a herança é globalmente poligénica e multifatorial, com o maior contributo conhecido na região HLA [5, 8]. O aconselhamento assenta, por isso, em riscos empíricos. Cerca de 20–25% dos doentes têm história familiar de DIgAS ou de CVID, e a IDF refere transmissão familiar em cerca de 20% dos casos [4, 39]. Na Finlândia, 7,2% dos familiares de primeiro grau de 35 casos índice tinham DIgAS, e na Suécia a concordância foi de 31% em gémeos monozigóticos e 13% em dizigóticos [26]. A heritabilidade foi estimada em 0,49 numa coorte sueca [8]. O parâmetro prático norte-americano refere um possível predomínio masculino [4].

No único estudo de familiares de primeiro grau incluído nas fontes consultadas, o risco observado (7,2%) foi várias vezes superior à prevalência em dadores, e, como na população com DIgAS em geral, é de esperar que a maioria dos familiares afetados seja assintomática [10, 26]. A mesma família pode incluir pessoas com DIgAS e com CVID, e a variante de TNFRSF13B pode estar presente em familiares com ambos os fenótipos e em familiares saudáveis [5, 9]. Um estudo de 1985 encontrou IgA abaixo da média em 21 de 27 filhos de mães IgA-deficientes, mas não de pais, sobretudo quando a mãe tinha anti-IgA na gestação; a hipótese de efeito transplacentário não foi confirmada por estudos posteriores incluídos nas fontes consultadas [68].

8.2. Testes em familiares

Não existe teste genético preditivo ou de portador para o DIgAS isolado, e a pesquisa de variantes de TNFRSF13B não serve para esse fim [3, 8, 41]. O doseamento de imunoglobulinas nos familiares sintomáticos (infeções recorrentes, autoimunidade) é razoável, dada a agregação familiar de DIgAS e CVID, e o resultado tem relevância prática para eventuais transfusões [4, 26]. A frequência de autoimunidade é maior nos familiares de primeiro grau de doentes com DIgAS (10% vs 5%) [26].

8.3. Diagnóstico pré-natal, pré-implantação e menores

O diagnóstico pré-natal e o teste genético pré-implantação não se aplicam ao DIgAS isolado; só têm lugar quando a IgA baixa integra uma doença monogénica ou cromossómica com variante familiar identificada (secção 6). Nos menores, o doseamento de IgA só é interpretável depois dos 4 anos e deve ser motivado por sintomas ou por necessidade clínica, como a investigação de doença celíaca ou a preparação para transfusão [4, 35, 55].

8.4. Conteúdos do aconselhamento

O aconselhamento deve explicar que o DIgAS é frequente e quase sempre benigno, que o diagnóstico definitivo exige idade superior a 4 anos e exclusão de outras causas, que o risco de recorrência é empírico e baseado em agregação familiar e que não existe teste genético útil para a forma isolada. Deve ainda explicar o significado para transfusões e imunoglobulina e a importância de transmitir o diagnóstico a profissionais de saúde, a necessidade de vigilância de autoimunidade e de doença celíaca, a possibilidade de evolução para CVID e o facto de uma variante heterozigótica de TNFRSF13B encontrada num painel ser um fator de risco e não um diagnóstico [11, 25, 26, 63].

9. Considerações Especiais: Diversidade Populacional e Epidemiologia

9.1. Prevalência e o que cada estudo mede

A prevalência do DIgAS varia com a ascendência, com a população estudada (dadores de sangue, grávidas, crianças em idade escolar, doentes de consulta ou de registos hospitalares) e com o método e o limiar de deteção, que vão de menos de 1 a 10 mg/dL [10, 26]. Os estudos em dadores medem uma população adulta saudável, o que subestima os doentes mais graves; as séries de consulta sobrestimam a carga clínica; e as coortes de registo hospitalar, como as suecas, incluem apenas quem teve a IgA medida. A Orphanet classifica a entidade como não rara na Europa e não regista estimativa [2]; a prevalência é provavelmente subestimada [10].

Região ou população Prevalência População e método Fonte
Ascendência norte-europeia ≈1:600 Estimativa citada nos estudos genéticos europeus [6, 8]
Ascendência europeia (serviços de sangue) ≈1:500–1:800 Estimativa citada no inquérito BEST [30]
EUA, brancos 1:300–1:700 Parâmetro prático AAAAI/ACAAI [4]
EUA 1:223–1:1000 (comunidade); 1:333–1:3000 (dadores) Estudos citados por Yel [10]
América do Norte ≈1:500 IDF [39]
Canadá, grávidas 1:450 (IgA <1 mg/dL) 28 000 grávidas; idêntica em dadores de ambos os sexos [68]
Espanha, dadores 1:163 Citada por Swain e Yel (fonte primária: Pereira 1997) [26, 96]
Península Arábica 1:143 Citada por Yel [10]
Nigéria 1:252 Citada por Yel [10]
Inglaterra 1:875 Citada por Yel [10]
Lituânia, crianças de 11–13 anos 0,4% (IC95% 0,16–1,02%), 1:250 1000 crianças de escolas aleatórias; teste rápido de ponta de dedo [64]
Itália, candidatos à força aérea 0,34% 4700 jovens [26]
Islândia 26 casos em 15 663 rastreados (1974–1979); 7 em 4004 dadores (1999–2001) Rastreio de dadores e laboratório [36]
Brasil (São Paulo), dadores e grávidas 1:965 (IgA <5 mg/dL) 11 576 pessoas saudáveis; imunodifusão dupla e radial [19]
Brasil, asma grave 3,8% Estudo local citado [21]
China 1:2295 (39 015 dadores); 1:2600–1:5300; 1:4100 Dadores; estudos citados [10, 21, 26]
Chineses (outra estimativa) 1:3229 Citada [36]
Japão, dadores 1:14 840 (IgA <10 mg/dL); 1:18 500 (<5 mg/dL); 1:31 800 (<1 mg/dL) 222 597 dadores voluntários; dupla difusão e imunodifusão radial [20]
Japão (2026) ≈1:14 000 Estimativa citada no estudo do reagente de rastreio [65]
Países Baixos, crianças ≥2 anos com infeções respiratórias recorrentes 2,9% vs 0% em controlos IgA <P2,5 para a idade [60]
Doentes celíacos 2–3% (≈1:40–1:50) Séries clínicas e diretrizes [14, 35, 55]

Fora dos EUA e da Europa, as estimativas da Península Arábica, de Espanha e da Nigéria estão entre as mais altas, e as da Ásia Oriental entre as mais baixas, o que se relaciona em parte com a frequência dos haplótipos HLA de risco [10, 26]. As proporções de doentes sintomáticos variam entre 10% e 35% conforme a série [21].

9.2. Populações fundadoras e variação genética

A região HLA explica a maior parte da variação conhecida. O haplótipo 8.1 é mais frequente no norte da Europa, e o haplótipo DRB1*01:02-DQB1*05:01 é mais frequente no sul da Europa e no Irão [35]. Na China, a menor frequência dos haplótipos de risco na população geral foi proposta como explicação para a prevalência mais baixa [26]. As populações sueca e islandesa, com registos nacionais e rastreios históricos de dadores, fornecem a maior parte dos dados de associação genética e de história natural [7, 22, 36]. Na Nova Zelândia, os doentes Māori com CVID têm mais DIgA completa e bronquiectasias [73].

9.3. Portugal e Brasil

As fontes consultadas não descrevem dados de prevalência em Portugal; esta ausência não demonstra que não existam estudos publicados. No Brasil, a prevalência em dadores e grávidas de São Paulo foi de 1:965, semelhante à de outros países segundo os autores [19]; a série pediátrica do Instituto da Criança da Universidade de São Paulo descreve a história natural de 51 crianças sintomáticas [21]; uma série brasileira de 126 crianças e adolescentes encontrou alergias respiratórias e dermatite atópica em 48% [10]; e dois programas de dadores raros (Hospital Sírio-Libanês e Hemocentro da Unicamp) responderam ao inquérito internacional sobre DIgA [31].

9.4. Populações especiais

Nas crianças pequenas, a IgA baixa é fisiológica e o diagnóstico só se estabelece depois dos 4 anos [35]. Nas grávidas, a coorte sueca mostrou mais recém-nascidos leves para a idade gestacional e mais cesarianas, atenuados quando se excluiu a autoimunidade (secção 7.9) [93]. Nos dadores de sangue IgA-deficientes, a saúde física não difere da dos outros dadores e não se justificam precauções específicas [51]; os seus componentes, com ou sem anti-IgA, foram transfundidos com segurança numa série canadiana [88]. Os doentes com transfusões crónicas (talassemia) devem ter as imunoglobulinas doseadas antes do início do programa [62].

9.5. Redes de referência e associações de doentes

A rede europeia de referência pertinente é a ERN RITA (European Reference Network on Rare Immunodeficiency, Autoinflammatory and Autoimmune Diseases) [28]. A ESID mantém o registo e as definições de trabalho [97]. As associações de doentes incluem a International Patient Organisation for Primary Immunodeficiencies (IPOPI) [98], a Associação Portuguesa de Doentes com Imunodeficiências Primárias (APDIP) [99], a Immune Deficiency Foundation nos EUA [39] e a PID UK no Reino Unido [40]. Não foi possível verificar o sítio do grupo brasileiro de imunodeficiências.

10. Caso Clínico Ilustrativo

Yoshino e Kosugi descreveram em 2025 um homem japonês de 70 anos, com antecedentes de cirurgia por carcinoide gástrico e por cancro do sigmoide, que se apresentou com dois meses de fadiga, mal-estar, anorexia e glossodinia [59]. Na clínica local tinha hemoglobina de 5,2 g/dL, e a endoscopia digestiva alta não mostrou úlcera nem neoplasia. No hospital estava ictérico, com anemia macrocítica (hemoglobina 5,0 g/dL; volume globular médio 113,5 fL; reticulócitos 3,21×10⁴/µL), plaquetas 5,8×10⁴/µL, desidrogenase láctica 3220 U/L, bilirrubina total 2,2 mg/dL (direta 0,8 mg/dL) e teste de Coombs direto negativo [59].

Foi transfundido concentrado eritrocitário após prova cruzada. Trinta minutos depois do início, surgiram febre de 39,4 °C e calafrios, a transfusão foi suspensa e o episódio interpretado como reação febril não hemolítica; as hemoculturas foram negativas e o antibiótico foi suspenso ao quarto dia [59]. O esfregaço mostrou neutrófilos hipersegmentados e esquizócitos, com haptoglobina baixa, mas ADAMTS13, C3 e C4 normais, anticorpos antinucleares e anticardiolipina negativos e tomografia sem adenopatias ou neoplasia, o que excluiu a microangiopatia trombótica e levou ao diagnóstico de pseudomicroangiopatia por défice de vitamina B12. A endoscopia mostrou gastrite atrófica do corpo e do fundo (figura 1 do artigo: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12257979/figure/f1-amjcaserep-26-e947678/), e as biópsias revelaram metaplasia intestinal parcial no antro, perda de glândulas fúndicas (figura 2, hematoxilina-eosina: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12257979/figure/f2-amjcaserep-26-e947678/), hiperplasia de células positivas para cromogranina A (figura 3: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12257979/figure/f3-amjcaserep-26-e947678/) e hiperplasia de células G antrais com perda de células produtoras de gastrina no corpo (figura 4: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12257979/figure/f4-amjcaserep-26-e947678/). Os anticorpos anti-célula parietal e anti-fator intrínseco eram negativos, e a anemia perniciosa foi diagnosticada pela histologia [59].

O doente recebeu vitamina B12 intravenosa, 500 µg em dias alternados, sem novas transfusões; a hemoglobina subiu para 7,4 g/dL à alta (dia 11) e 10,2 g/dL ao dia 28, e a vitamina B12 passou a intramuscular semanal no primeiro mês e trimestral depois, com normalização da hemoglobina [59]. A IgA sérica estava abaixo do limite do ensaio, e no dia 20 após a alta foi confirmada IgA <3 µg/dL com anticorpos anti-IgA de classe IgG positivos, estabelecendo-se o diagnóstico de DIgAS. Foi aconselhado o uso de pulseira de alerta médico, que o doente recusou [59].

O caso ilustra três aspetos do artigo. Primeiro, o DIgAS é frequentemente diagnosticado só depois de uma reação transfusional ou num rastreio de dadores, mesmo em idade avançada [26, 59]. Segundo, a reação descrita foi febril e não anafilática, o tipo de reação que a BSH 2023 associa mais frequentemente à DIgA [25]. Terceiro, a associação a uma doença autoimune (gastrite atrófica com anemia perniciosa) é compatível com o espetro autoimune do DIgAS, embora a ligação causal não tenha sido demonstrada e a genética não tenha sido estudada [59]. Os autores recomendam produtos de dadores IgA-deficientes ou componentes lavados na presença de anti-IgA; esta conduta é mais restritiva que a da BSH 2023, que reserva os componentes lavados para doentes com história de reação, e coincide com a proposta da ISBT para doentes com anti-IgA e reação documentada, que este doente tinha [25, 31, 59].

11. Prognóstico e Seguimento a Longo Prazo

11.1. Prognóstico

O prognóstico é bom quando o DIgAS não se associa a doença significativa [10, 39]. No seguimento de 20 anos de 159 dadores finlandeses inicialmente saudáveis com DIgA grave e 45 com IgA diminuída, houve mais pneumonias, infeções respiratórias recorrentes e doença autoimune na meia-idade (vitiligo, hipotiroidismo autoimune, intolerância ao leite e possivelmente artrite reumatoide associados à DIgA grave), e 80% (163 de 204) tiveram infeções, alergia medicamentosa, doença autoimune ou atópica, mas a DIgA num adulto saudável não previu doença grave com risco de vida [50]. Na coorte sueca de 2495 doentes identificados por medição hospitalar de IgA (1980–2012), houve 102 mortes por 10 000 pessoas-ano contra 62 nos 24 509 controlos (HR 1,8; IC95% 1,6–2,1), com excesso máximo no primeiro ano (HR 3,6), persistência nos anos 1–9 (HR 1,9), atenuação aos 10–15 anos (HR 1,5; p = 0,054) e ausência de excesso aos 15–25 anos (HR 1,1); a mortalidade relativa foi maior nos mais jovens [49]. Estes números refletem doentes com motivo clínico para medição da IgA e não a população com DIgAS em geral.

A evolução da IgA não é fixa. Na série brasileira, 9 de 51 crianças passaram a ter défice apenas parcial (idade média 10,6 anos) e 4 destas normalizaram a IgA (idade média 13 anos); em crianças, o défice pode resolver [10, 21]. A progressão para CVID ocorre em cerca de 5% dos doentes segundo uma revisão, e ocorreu em 2 de 51 crianças brasileiras (aos 12 e aos 18 anos) [5, 21]. Aghamohammadi e colaboradores descreveram quatro doentes com DIgA e autoimunidade que evoluíram para CVID e recomendam vigiar todos os sintomáticos, especialmente com défice de subclasses de IgG ou autoimunidade, para iniciar imunoglobulina atempadamente e prevenir infeções graves e insuficiência pulmonar [63]. A progressão para CVID implica pior prognóstico e mudança de conduta [10]. Nos défices primários de anticorpos, o diagnóstico tardio, a substituição inadequada ou a infeção não tratada de forma enérgica favorecem bronquiectasias [40].

11.2. Vigilância

As fontes não definem intervalos de vigilância padronizados para o DIgAS; recomendam reavaliação regular, ajustada aos sintomas [4, 26, 39]. A tabela organiza a vigilância a partir das recomendações e da prática descrita.

Exame ou avaliação Início Intervalo Limiar de ação Fonte
Avaliação clínica (infeções, alergia, autoimunidade, sintomas digestivos) Diagnóstico Regular; mais frequente nos sintomáticos Novas complicações [4, 26]
IgA, IgG e IgM séricas Diagnóstico Periódico, fora de infeções (intervalo mínimo de um ano na série brasileira) Queda de IgG ou IgM: avaliar CVID; IgA detetável ou normal: reclassificar [21, 63]
Subclasses de IgG e respostas vacinais Doentes sintomáticos Quando há infeções recorrentes ou graves Défice: reclassificar e considerar imunoglobulina [4, 27]
Serologia celíaca baseada em IgG Sintomas ou grupo de risco Repetição periódica na criança assintomática de risco (ESsCD) Positiva: biópsia duodenal [55, 61]
Autoanticorpos (antinucleares, anti-tiroideus) A partir dos 3 anos na série brasileira Periódico Positividade: vigilância clínica dirigida [21]
Avaliação de hiperplasia nodular linfoide e neoplasia gastrointestinal Sintomas digestivos persistentes Sem intervalo padronizado (cápsula ou trânsito sugeridos) Lesões: investigação de linfoma [23, 26]
Registo do diagnóstico para transfusão Diagnóstico Uma vez, atualizado após reações Reação prévia: componentes lavados [25, 31]

12. Resumo e Considerações Finais

O DIgAS define-se por IgA sérica inferior a 0,07 g/L depois dos 4 anos, com IgG e IgM normais, respostas vacinais normais e exclusão de causas secundárias e de defeitos de células T. É a imunodeficiência primária mais frequente em populações de ascendência europeia, com prevalência de cerca de 1:600 e variação de 1:143 na Península Arábica a cerca de 1:18 500 no Japão, e não tem causa monogénica identificada: a heritabilidade de cerca de 0,49 resulta sobretudo da região HLA (haplótipo 8.1, DQB1*02, DRB1*01:02, com DRB1*15:01 protetor) e de loci partilhados com a autoimunidade (IFIH1, CLEC16A, PVT1, ATG13–AMBRA1, AHI1). As variantes heterozigóticas de TNFRSF13B são fatores de risco para CVID e não causas de DIgAS, e não devem ser usadas como teste preditivo.

A maioria das pessoas afetadas é assintomática. Nos doentes identificados clinicamente, as coortes mostram mais infeções sinopulmonares e gastrointestinais, alergia, doença celíaca (6,7% contra 0,19% na coorte sueca) e outras doenças autoimunes, um aumento modesto de cancro gastrointestinal e um excesso de mortalidade concentrado nos primeiros anos após o diagnóstico; os doentes identificados como dadores saudáveis têm um excesso muito menor. A doença celíaca exige serologia baseada em IgG sempre que a IgA total é deficiente, e a medição da IgA total deve acompanhar qualquer pedido de serologia celíaca.

Não há tratamento específico. As complicações tratam-se segundo as respetivas diretrizes, com profilaxia antibiótica nos doentes com infeções recorrentes e controlo enérgico da atopia; a imunoglobulina de substituição não está indicada no DIgAS isolado e reserva-se para os doentes com défice associado de anticorpos específicos ou de subclasses e infeções graves, preferindo a via subcutânea ou produtos com baixo teor de IgA, cujos rótulos divergem entre a FDA e a EMA quanto à presença de anti-IgA. O risco de anafilaxia transfusional por anti-IgA é muito baixo, e as diretrizes mais recentes reservam os componentes lavados ou de dadores IgA-deficientes para doentes com história de reação, sem atrasar uma transfusão vital, embora persista heterogeneidade internacional. As vacinas inativadas são recomendadas; a contraindicação de vacinas vivas varia entre fontes, sendo a vacina oral contra a poliomielite a única contraindicação comum.

O seguimento visa detetar autoimunidade, doença celíaca e a evolução para CVID, que ocorre numa minoria e muda o prognóstico, enquanto em algumas crianças a IgA pode normalizar. Não existem ensaios terapêuticos dirigidos ao DIgAS, e a investigação recente centra-se na microbiota, em biomarcadores séricos e na harmonização das práticas transfusionais.

13. Referências Bibliográficas

  1. Rockey JH, Hanson LA, Heremans JF, Kunkel HG. Beta-2A aglobulinemia in two healthy men. J Lab Clin Med. 1964;63:205-212. PMID: 14125107.
  2. Orphanet. Immunoglobulin A deficiency (ORPHA:69127) [Internet]. Paris: INSERM; [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.orpha.net/en/disease/detail/69127
  3. Poli MC, Aksentijevich I, Bousfiha AA, Cunningham-Rundles C, Hambleton S, Klein C, et al. Human inborn errors of immunity: 2024 update on the classification from the International Union of Immunological Societies Expert Committee. J Hum Immun. 2025;1(1):e20250003. doi:10.70962/jhi.20250003. PMID: 41608114. PMC12829761.
  4. Bonilla FA, Khan DA, Ballas ZK, Chinen J, Frank MM, Hsu JT, et al. Practice parameter for the diagnosis and management of primary immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2015;136(5):1186-205.e1-78. doi:10.1016/j.jaci.2015.04.049. PMID: 26371839.
  5. Cinicola BL, Pulvirenti F, Capponi M, Bonetti M, Brindisi G, Gori A, et al. Selective IgA Deficiency and Allergy: A Fresh Look to an Old Story. Medicina (Kaunas). 2022;58(1):129. doi:10.3390/medicina58010129. PMID: 35056437. PMC8781177.
  6. Ferreira RC, Pan-Hammarström Q, Graham RR, Fontán G, Lee AT, Ortmann W, et al. High-density SNP mapping of the HLA region identifies multiple independent susceptibility loci associated with selective IgA deficiency. PLoS Genet. 2012;8(1):e1002476. doi:10.1371/journal.pgen.1002476. PMID: 22291608. PMC3266887.
  7. Ferreira RC, Pan-Hammarström Q, Graham RR, Gateva V, Fontán G, Lee AT, et al. Association of IFIH1 and other autoimmunity risk alleles with selective IgA deficiency. Nat Genet. 2010;42(9):777-780. doi:10.1038/ng.644. PMID: 20694011.
  8. Bronson PG, Chang D, Bhangale T, Seldin MF, Ortmann W, Ferreira RC, et al. Common variants at PVT1, ATG13-AMBRA1, AHI1 and CLEC16A are associated with selective IgA deficiency. Nat Genet. 2016;48(11):1425-1429. doi:10.1038/ng.3675. PMID: 27723758. PMC5086090.
  9. Pan-Hammarström Q, Salzer U, Du L, Björkander J, Cunningham-Rundles C, Nelson DL, et al. Reexamining the role of TACI coding variants in common variable immunodeficiency and selective IgA deficiency. Nat Genet. 2007;39(4):429-430. doi:10.1038/ng0407-429. PMID: 17392797. PMC2931279.
  10. Yel L. Selective IgA deficiency. J Clin Immunol. 2010;30(1):10-16. doi:10.1007/s10875-009-9357-x. PMID: 20101521. PMC2821513.
  11. GeneGuidance. TNFRSF13B — curadoria clínica do gene (versão de 2026-09-26).
  12. Orphanet. OBSOLETE: TACI-related selective deficiency of IgA (ORPHA:99974) [Internet]. Paris: INSERM; [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.orpha.net/en/disease/detail/99974
  13. Orphanet. Common variable immunodeficiency phenotype due to homozygous TACI deficiency (ORPHA:696907) [Internet]. Paris: INSERM; [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.orpha.net/en/disease/detail/696907
  14. Taylor AK, Lebwohl B, Snyder CL, Green PHR. Celiac Disease. 2008 Jul 3 [updated 2025 Dec 4]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1727/
  15. Veenhuis S, van Os N, Weemaes C, Kamsteeg EJ, Willemsen M. Ataxia-Telangiectasia. 1999 Mar 19 [updated 2023 Oct 5]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK26468/
  16. Varon R, Demuth I, Chrzanowska KH. Nijmegen Breakage Syndrome. 1999 May 17 [updated 2022 Aug 18]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1176/
  17. McDonald-McGinn DM, Hain HS, Emanuel BS, Zackai EH. 22q11.2 Deletion Syndrome. 1999 Sep 23 [updated 2020 Feb 27]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1523/
  18. Adam MP, Hannibal M. Kabuki Syndrome. 2011 Sep 1 [updated 2019 Feb 28]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK62111/
  19. Carneiro-Sampaio MM, Carbonare SB, Rozentraub RB, de Araújo MN, Riberiro MA, Porto MH. Frequency of selective IgA deficiency among Brazilian blood donors and healthy pregnant women. Allergol Immunopathol (Madr). 1989;17(4):213-216. PMID: 2816663.
  20. Kanoh T, Mizumoto T, Yasuda N, Koya M, Ohno Y, Uchino H, et al. Selective IgA deficiency in Japanese blood donors: frequency and statistical analysis. Vox Sang. 1986;50(2):81-86. doi:10.1111/j.1423-0410.1986.tb04851.x. PMID: 3485858.
  21. Nasser NMF, Pastorino AC, de Moura TCL, Morgenstern B, Dorna MB, Castro APBM. Understanding the natural history of selective IgA deficiency. J Pediatr (Rio J). 2025;101(4):569-575. doi:10.1016/j.jped.2025.03.002. PMID: 40169156. PMC12276590.
  22. Ludvigsson JF, Neovius M, Hammarström L. Association between IgA deficiency & other autoimmune conditions: a population-based matched cohort study. J Clin Immunol. 2014;34(4):444-451. doi:10.1007/s10875-014-0009-4. PMID: 24584841.
  23. Ludvigsson JF, Neovius M, Ye W, Hammarström L. IgA deficiency and risk of cancer: a population-based matched cohort study. J Clin Immunol. 2015;35(2):182-188. doi:10.1007/s10875-014-0124-2. PMID: 25589342.
  24. Ludvigsson JF, Neovius M, Hammarström L. Risk of Infections Among 2100 Individuals with IgA Deficiency: a Nationwide Cohort Study. J Clin Immunol. 2016;36(2):134-140. doi:10.1007/s10875-015-0230-9. PMID: 26739713.
  25. Soutar R, McSporran W, Tomlinson T, Booth C, Grey S. Guideline on the investigation and management of acute transfusion reactions. Br J Haematol. 2023;201(5):832-844. doi:10.1111/bjh.18789. PMID: 37211954.
  26. Swain S, Selmi C, Gershwin ME, Teuber SS. The clinical implications of selective IgA deficiency. J Transl Autoimmun. 2019;2:100025. doi:10.1016/j.jtauto.2019.100025. PMID: 32743511. PMC7388344.
  27. Perez EE, Orange JS, Bonilla F, Chinen J, Chinn IK, Dorsey M, et al. Update on the use of immunoglobulin in human disease: A review of evidence. J Allergy Clin Immunol. 2017;139(3S):S1-S46. doi:10.1016/j.jaci.2016.09.023. PMID: 28041678.
  28. European Reference Network on Rare Immunodeficiency, Autoinflammatory and Autoimmune Diseases (ERN RITA) [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://ern-rita.org/
  29. Vyas GN, Perkins HA, Fudenberg HH. Anaphylactoid transfusion reactions associated with anti-IgA. Lancet. 1968;2(7563):312-315. doi:10.1016/s0140-6736(68)90527-8. PMID: 4173734.
  30. Bazin R, Goldman M, Eichbaum QG, Apelseth TO, Latour C, Lewin A, et al. International survey on the management of IgA deficiency: The BEST Collaborative Study. Vox Sang. 2026;121(9):1385-1392. doi:10.1111/vox.70311. PMID: 42272328. PMC13563477.
  31. Keller MA, Powley T, Lomas-Francis C, Nance S, Peyrard T, Sareneva I, et al. Survey of national and regional rare donor programmes regarding Immunoglobulin A deficiency. Vox Sang. 2026;121(9):1330-1337. doi:10.1111/vox.70313. PMID: 42337837. PMC13563473.
  32. Castigli E, Wilson SA, Garibyan L, Rachid R, Bonilla F, Schneider L, et al. TACI is mutant in common variable immunodeficiency and IgA deficiency. Nat Genet. 2005;37(8):829-834. doi:10.1038/ng1601. PMID: 16007086.
  33. Salzer U, Chapel HM, Webster AD, Pan-Hammarström Q, Schmitt-Graeff A, Schlesier M, et al. Mutations in TNFRSF13B encoding TACI are associated with common variable immunodeficiency in humans. Nat Genet. 2005;37(8):820-828. doi:10.1038/ng1600. PMID: 16007087.
  34. Seidel MG, Kindle G, Gathmann B, Quinti I, Buckland M, van Montfrans J, et al. The European Society for Immunodeficiencies (ESID) Registry Working Definitions for the Clinical Diagnosis of Inborn Errors of Immunity. J Allergy Clin Immunol Pract. 2019;7(6):1763-1770. doi:10.1016/j.jaip.2019.02.004. PMID: 30776527.
  35. Poddighe D, Capittini C. The Role of HLA in the Association between IgA Deficiency and Celiac Disease. Dis Markers. 2021;2021:8632861. doi:10.1155/2021/8632861. PMID: 35186163. PMC8856801.
  36. Lemarquis AL, Sigurgrimsdottir H, Theodors FP, Karnsund I, Einarsdottir HK, Jorgensen G, et al. Serologic IL-18 increase with B-cell IL-18R loss characterizes selective IgA deficiency. Front Immunol. 2025;16:1687720. doi:10.3389/fimmu.2025.1687720. PMID: 41562052. PMC12812701.
  37. Koenen MH, de Jonge MI, Hermsen M, van Weelden GH, Olde Olthof S, van der Gaast-de Jongh CE, et al. Bifidobacterium-driven immunoglobulin A production in pediatric patients with IgA deficiency and recurrent respiratory tract infections. Microbiome. 2026;14(1):137. doi:10.1186/s40168-026-02382-0. PMID: 42129858. PMC13173950.
  38. Ball RAW, Mohammed AD, Jolly A, Johnson K, Sklenicka S, Kucherina M, et al. IgA deficiency reveals a microbiota-dependent pathway to gluten sensitivity. Gut Microbes. 2026;18(1):2724175. doi:10.1080/19490976.2026.2724175. PMID: 42758655. PMC13596903.
  39. Immune Deficiency Foundation. Selective IgA deficiency [Internet]. Towson (MD): IDF; adaptado do Patient & Family Handbook for Primary Immunodeficiency Diseases, 6th ed., 2019 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://primaryimmune.org/understanding-primary-immunodeficiency/types-of-pi/selective-iga-deficiency
  40. Firth HV, Hurst JA. Oxford Desk Reference: Clinical Genetics and Genomics. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2017. p. 464–471 (Immunodeficiency and recurrent infection).
  41. Abolhassani H, Caballero-Oteyza A, Yang M, Proietti M, Delavari S, Maffucci P, et al. Re-evaluation of the contribution of TNFRSF13B variants to antibody deficiency. J Hum Immun. 2025;1(4):e20250016. doi:10.70962/jhi.20250016. PMID: 40959164. PMC12435966.
  42. Cicek B, Gurel DI, Yaz I, Dal ST, Bildik HN, Erman B, et al. Clinical Heterogeneity of TNFRSF13B Variants: A Monogenic Cause or a Genetic Modifier? Immunology. 2026. doi:10.1111/imm.70192. PMID: 42601324.
  43. Abolhassani H, Aghamohammadi A, Hammarström L. Monogenic mutations associated with IgA deficiency. Expert Rev Clin Immunol. 2016;12(12):1321-1335. doi:10.1080/1744666x.2016.1198696. PMID: 27266541.
  44. GeneGuidance. IFIH1 — curadoria clínica do gene (versão de 2026-09-26).
  45. Van Eyck L, De Somer L, Pombal D, Bornschein S, Frans G, Humblet-Baron S, et al. Brief Report: IFIH1 Mutation Causes Systemic Lupus Erythematosus With Selective IgA Deficiency. Arthritis Rheumatol. 2015;67(6):1592-1597. doi:10.1002/art.39110. PMID: 25777993.
  46. Fekrvand S, Abolhassani H, Rezaei N. An overview of early genetic predictors of IgA deficiency. Expert Rev Mol Diagn. 2024;24(8):715-727. doi:10.1080/14737159.2024.2385521. PMID: 39087770.
  47. Freeman PJ, Hart RK, Gretton LJ, Brookes AJ, Dalgleish R. VariantValidator: Accurate validation, mapping, and formatting of sequence variation descriptions. Hum Mutat. 2018;39(1):61-68. doi:10.1002/humu.23348. PMID: 28967166. PMC5765404.
  48. National Center for Biotechnology Information. ClinVar [Internet]. Bethesda (MD): NLM; VCV 5302, 5303, 322029, 137622, 474954, 261566 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar/
  49. Ludvigsson JF, Neovius M, Hammarström L. IgA deficiency and mortality: a population-based cohort study. J Clin Immunol. 2013;33(8):1317-1324. doi:10.1007/s10875-013-9948-4. PMID: 24122027.
  50. Koskinen S. Long-term follow-up of health in blood donors with primary selective IgA deficiency. J Clin Immunol. 1996;16(3):165-170. doi:10.1007/bf01540915. PMID: 8734360.
  51. Hauge SC, Jensen CK, Nielsen LK, Pedersen OB, Pedersen OB, Sørensen E, et al. The association of IgA deficiency on infection rate, self-perceived health, and levels of C-reactive protein in healthy blood donors. APMIS. 2018;126(3):248-256. doi:10.1111/apm.12807. PMID: 29484746.
  52. Güngören EY, Çalışkan N, Özkalkan B, Karadağ İK, Özçeker D, Çimen SS. Insights into the clinical spectrum of selective IgA deficiency: Data from two centers. Allergol Immunopathol (Madr). 2025;53(6):32-37. doi:10.15586/aei.v53i6.1472. PMID: 41229040.
  53. Hazzan R, Abu Ahmad N, Tatour M, Bisharat N, Neeman Z. Selective IgA Deficiency and COVID-19 Outcomes: A Nationwide Retrospective Cohort Study. J Clin Med. 2026;15(7):2487. doi:10.3390/jcm15072487. PMID: 41976788. PMC13074005.
  54. Forouzanfar E, Nair B, Vijayadurai P, Anantharachagan A. Subacute large bowel obstruction as an unusual presentation of selective IgA deficiency. J Allergy Clin Immunol Glob. 2026;5(4):100723. doi:10.1016/j.jacig.2026.100723. PMID: 42211874. PMC13213789.
  55. Al-Toma A, Volta U, Auricchio R, Castillejo G, Sanders DS, Cellier C, et al. European Society for the Study of Coeliac Disease (ESsCD) guideline for coeliac disease and other gluten-related disorders. United European Gastroenterol J. 2019;7(5):583-613. doi:10.1177/2050640619844125. PMID: 31210940. PMC6545713.
  56. Ulaş S, Al S, Naiboğlu S, Turan I, Kalay G, Kapçı N, et al. Selective IgA deficiency and allergic diseases: Clinical and immunological evaluation. Allergol Immunopathol (Madr). 2025;53(5):78-86. doi:10.15586/aei.v53i5.1374. PMID: 40923423.
  57. Odineal DD, Gershwin ME. The Epidemiology and Clinical Manifestations of Autoimmunity in Selective IgA Deficiency. Clin Rev Allergy Immunol. 2020;58(1):107-133. doi:10.1007/s12016-019-08756-7. PMID: 31267472.
  58. Wang B, Singh H, Ellis M, Barisoni L, Howell DN. Hidden in the Absence: Clinicopathologic Insights on Kidney Diseases Associated With Selective IgA Deficiency. Lab Invest. 2025;105(7):104163. doi:10.1016/j.labinv.2025.104163. PMID: 40199423.
  59. Yoshino Y, Kosugi N. Selective IgA Deficiency Complicated with Pernicious Anemia Diagnosed After Febrile Non-Hemolytic Transfusion Reaction. Am J Case Rep. 2025;26:e947678. doi:10.12659/ajcr.947678. PMID: 40629683. PMC12257979.
  60. Koenen MH, Bosma M, Roorda UA, Wopereis FM, Roos A, van der Vries E, et al. A novel method to standardise serum IgA measurements shows an increased prevalence of IgA deficiency in young children with recurrent respiratory tract infections. Clin Transl Immunology. 2021;10(11):e1344. doi:10.1002/cti2.1344. PMID: 34745609. PMC8556141.
  61. Rubio-Tapia A, Hill ID, Semrad C, Kelly CP, Greer KB, Limketkai BN, et al. American College of Gastroenterology Guidelines Update: Diagnosis and Management of Celiac Disease. Am J Gastroenterol. 2023;118(1):59-76. doi:10.14309/ajg.0000000000002075. PMID: 36602836.
  62. Langer AL. Beta-Thalassemia. 2000 Sep 28 [updated 2023 Jul 20]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1426/
  63. Aghamohammadi A, Mohammadi J, Parvaneh N, Rezaei N, Moin M, Espanol T, et al. Progression of selective IgA deficiency to common variable immunodeficiency. Int Arch Allergy Immunol. 2008;147(2):87-92. doi:10.1159/000135694. PMID: 18520152.
  64. Urbonas V, Sadauskaite J, Cerkauskiene R, Kaminskas A, Mäki M, Kurppa K. Population-Based Screening for Selective Immunoglobulin A (IgA) Deficiency in Lithuanian Children Using a Rapid Antibody-Based Fingertip Test. Med Sci Monit. 2016;22:4773-4778. doi:10.12659/msm.898269. PMID: 27920422. PMC5144930.
  65. Watanabe-Okochi N, Sato A, Okuyama A, Tomiyoshi G, Suzuki Y, Watanabe Y, et al. A novel reagent for the screening of Immunoglobulin A-deficient blood donors. Vox Sang. 2026;121(9):1322-1329. doi:10.1111/vox.70305. PMID: 42227027. PMC13563489.
  66. Husby S, Koletzko S, Korponay-Szabó I, Kurppa K, Mearin ML, Ribes-Koninckx C, et al. European Society Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition Guidelines for Diagnosing Coeliac Disease 2020. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2020;70(1):141-156. doi:10.1097/mpg.0000000000002497. PMID: 31568151.
  67. Rachid R, Bonilla FA. The role of anti-IgA antibodies in causing adverse reactions to gamma globulin infusion in immunodeficient patients: a comprehensive review of the literature. J Allergy Clin Immunol. 2012;129(3):628-634. doi:10.1016/j.jaci.2011.06.047. PMID: 21835445.
  68. Petty RE, Sherry DD, Johannson J. Anti-IgA antibodies in pregnancy. N Engl J Med. 1985;313(26):1620-1625. doi:10.1056/nejm198512263132602. PMID: 3877874.
  69. Koskinen S, Tölö H, Hirvonen M, Koistinen J. Long-term follow-up of anti-IgA antibodies in healthy IgA-deficient adults. J Clin Immunol. 1995;15(4):194-198. doi:10.1007/bf01541089. PMID: 7593466.
  70. Collet A, de Chambure DP, Moitrot E, Breyne G, Mirgot F, Rogeau S, et al. Non-allergic Hypersensitivity Reactions to Immunoglobulin Preparations in Antibody Deficiencies: What Role for Anti-IgA IgG and Complement Activation? Clin Rev Allergy Immunol. 2024;67(1-3):47-57. doi:10.1007/s12016-024-09007-0. PMID: 39436576. PMC11638320.
  71. GeneGuidance. TNFRSF13C — curadoria clínica do gene (versão de 2026-09-26).
  72. GeneGuidance. ICOS — curadoria clínica do gene (versão de 2026-09-26).
  73. Ameratunga R, Byrnes CA, Jordan A, Steele R, Allan C, Woon ST, et al. Common Variable Immune Deficiency Disorders (CVID) in the Indigenous Māori of Aotearoa (New Zealand) Are Associated With a High Prevalence of Bronchiectasis and Complete IgA Deficiency. Scand J Immunol. 2025;102(5):e70068. doi:10.1111/sji.70068. PMID: 41267378.
  74. Goldman ID. Hereditary Folate Malabsorption. 2008 Jun 17 [updated 2026 Mar 25]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1673/
  75. Jones KL, Jones MC, del Campo M. Smith's Recognizable Patterns of Human Malformation. 8th ed. Philadelphia: Elsevier; 2022. p. 58–59 (Deletion 18q syndrome).
  76. Jones KL, Jones MC, del Campo M. Smith's Recognizable Patterns of Human Malformation. 8th ed. Philadelphia: Elsevier; 2022. p. 96–99 (Xq distal duplication or disomy [MECP2]).
  77. Battaglia A, Carey JC, South ST. Wolf-Hirschhorn Syndrome – RETIRED CHAPTER, FOR HISTORICAL REFERENCE ONLY. 2002 Apr 29 [updated 2015 Aug 20]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1183/ PMID: 20301362.
  78. Mulle JG, Gambello MJ, Sanchez Russo R, Murphy MM, Burrell TL, Klaiman C, et al. 3q29 Recurrent Deletion. 2016 Sep 22 [updated 2021 Jul 1]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK385289/ PMID: 27656750.
  79. Lin AE, Brunetti-Pierri N, Lindsay ME, Schimmenti LA, Starr LJ. Myhre Syndrome. 2017 Apr 13 [updated 2024 Dec 12]. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK425723/
  80. Chung W, Okur V. Okur-Chung Neurodevelopmental Syndrome. 2022 Jun 9. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993-2026. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK581083/
  81. Yazdani R, Azizi G, Abolhassani H, Aghamohammadi A. Selective IgA Deficiency: Epidemiology, Pathogenesis, Clinical Phenotype, Diagnosis, Prognosis and Management. Scand J Immunol. 2017;85(1):3-12. doi:10.1111/sji.12499. PMID: 27763681.
  82. Takeda Pharmaceuticals America. GAMMAGARD S/D (immune globulin intravenous [human]) — prescribing information [Internet]. DailyMed setid bf8df9fd-bfdd-47c2-84d2-d91e50947bf6; revised 2/2025 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://dailymed.nlm.nih.gov/dailymed/drugInfo.cfm?setid=bf8df9fd-bfdd-47c2-84d2-d91e50947bf6
  83. Takeda Pharmaceuticals America. GAMMAGARD LIQUID ERC (immune globulin infusion [human], 10%) — prescribing information. Initial U.S. approval 2025 [Internet]. DailyMed setid 1341fd31-0754-47f0-a4d6-7255056b6541 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://dailymed.nlm.nih.gov/dailymed/drugInfo.cfm?setid=1341fd31-0754-47f0-a4d6-7255056b6541
  84. European Medicines Agency. Deqsiga (human normal immunoglobulin): EPAR — medicine overview. EMA/81025/2025 [Internet]. Amsterdam: EMA; 2025 May 16 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.ema.europa.eu/en/medicines/human/EPAR/deqsiga
  85. CSL Behring AG. PRIVIGEN (immune globulin intravenous [human], 10% liquid) — prescribing information [Internet]. DailyMed setid 7e5649da-75be-4a42-8eeb-4aeba562c401 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://dailymed.nlm.nih.gov/dailymed/drugInfo.cfm?setid=7e5649da-75be-4a42-8eeb-4aeba562c401
  86. CSL Behring AG. HIZENTRA (immune globulin subcutaneous [human], 20% liquid) — prescribing information [Internet]. DailyMed setid 7b58f5ff-0316-49a3-b585-1f6003ddb953; revised 04/2023 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://dailymed.nlm.nih.gov/dailymed/drugInfo.cfm?setid=7b58f5ff-0316-49a3-b585-1f6003ddb953
  87. Takeda. Takeda announces U.S. FDA approval of GAMMAGARD LIQUID ERC, the only ready-to-use liquid immunoglobulin therapy with low immunoglobulin A content [comunicado de imprensa]. Osaka/Cambridge (MA): Takeda; 2025 Jun 30 [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.takeda.com/newsroom/newsreleases/2025/gammagard-immunoglobulin/
  88. Robitaille N, Delage G, Long A, Thibault L, Robillard P. Allergic transfusion reactions from blood components donated by IgA-deficient donors with and without anti-IgA: a comparative retrospective study. Vox Sang. 2010;99(2):136-141. doi:10.1111/j.1423-0410.2010.01326.x. PMID: 20345516.
  89. Tinegate H, Birchall J, Gray A, Haggas R, Massey E, Norfolk D, et al. Guideline on the investigation and management of acute transfusion reactions. Prepared by the BCSH Blood Transfusion Task Force. Br J Haematol. 2012;159(2):143-153. doi:10.1111/bjh.12017. PMID: 22928769.
  90. Salama A, Kardashi R, Arbach O. Long-Term Treatment and Transfusion of Normal Blood Components Following Tolerance Induction in Patients with Anti-IgA Anaphylactic Reactions. Transfus Med Hemother. 2014;41(5):381-387. doi:10.1159/000366240. PMID: 25538541. PMC4264496.
  91. Rubin LG, Levin MJ, Ljungman P, Davies EG, Avery R, Tomblyn M, et al. 2013 IDSA clinical practice guideline for vaccination of the immunocompromised host. Clin Infect Dis. 2014;58(3):e44-100. doi:10.1093/cid/cit684. PMID: 24311479.
  92. Centers for Disease Control and Prevention, Advisory Committee on Immunization Practices. General Best Practice Guidelines for Immunization: Altered Immunocompetence [Internet]. Atlanta: CDC; [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.cdc.gov/vaccines/hcp/imz-best-practices/altered-immunocompetence.html
  93. Ludvigsson JF, Neovius M, Stephansson O, Hammarström L. IgA deficiency, autoimmunity & pregnancy: a population-based matched cohort study. J Clin Immunol. 2014;34(7):853-863. doi:10.1007/s10875-014-0069-5. PMID: 25005830.
  94. National Cancer Institute (NCI). A Phase I Dose Escalation Study of B-Lymphocyte Stimulator (BLyS) Administered Subcutaneously in Patients With Selective IgA Deficiency. ClinicalTrials.gov identifier NCT00024934 [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT00024934
  95. Takeda. In Vitro Assessment of Hypersensitivity to TAK-880 Compared to Gammagard S/D in Blood From Patients at Increased Risk of Developing Hypersensitivity Reactions. ClinicalTrials.gov identifier NCT05269082 [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://clinicaltrials.gov/study/NCT05269082
  96. Pereira LF, Sapiña AM, Arroyo J, Viñuelas J, Bardají RM, Prieto L. Prevalence of selective IgA deficiency in Spain: more than we thought. Blood. 1997;90(2):893. doi:10.1182/blood.v90.2.893. PMID: 9226194.
  97. European Society for Immunodeficiencies, Registry Working Party. ESID Registry – Working definitions for clinical diagnosis of PID (versão com códigos OMIM, Orpha e HPO, novembro 2019) [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://esid.org/working-parties/registry-working-party/diagnosis-criteria/
  98. International Patient Organisation for Primary Immunodeficiencies (IPOPI) [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://ipopi.org/
  99. Associação Portuguesa de Doentes com Imunodeficiências Primárias (APDIP) [Internet]. [citado 2026 Out 10]. Disponível em: https://www.apdip.pt/

← All articles